Name: 電気穿孔法によるマウス膀胱尿路上皮にプラスミド DNA 配信法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-03T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 38 s
Description: 学ぶ電気穿孔法によるマウス膀胱尿路上皮へのプラスミドDNA配信法。尿道カテーテル挿入と電気穿孔を組み合わせた遺伝子導入技術で、膀胱がん研究や遺伝子治療のための自家性マウスモデル構築に有用です。

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エレクトロポレーション システムのセットアップのヘルプ、箱陳教授、博士越張とケンディ ホアンに感謝します。この作品は、Z.A.W. にサンタ ・ クルスがん給付グループと NIH からの補助金によって支えられました。

ガイドラインと規制機関動物ケアおよび使用委員会 (IACUC) カリフォルニア大学サンタクルスからに従ってここで説明したすべての手順を行った。
1 プラスミドとツールの準備
<ol><li>それぞれの膀胱を使って、DNA のプラスミッド (1 μ g/μ L) の少なくとも 20 μ L を準備します。</li>
	<li>1.5 mL 容マイクロ チューブにおけるプラスミド溶液 20 μ L にトリパン ブルーの 1 μ L を追加します。よく混ぜてピペット。</li>
	<li>オートクレーブすべて手術機器および 70% のエタノールでワークスペースを滅菌します。スプレー手術器具や手袋の 70% エタノール頻繁または無菌状態を維持するために次の手順を実行するときにガラス ビーズ滅菌器を使用します。</li>
</ol>2. 麻酔動物
<ol><li>イソフルランと動物を麻酔するのにテーブル トップ麻酔システムを使用します。O2タンクをオンにし、1 L/分の酸素流量計を調整します。</li>
	<li>誘導室に大人の女性 c57bl/6 j マウスを配置します。オンにし、誘導のための 3% にイソフルラン気化器を調整します。マウスは、先制鎮痛法の誘導室からマウスの除去時に皮下麻酔 2 分管理ブプレノルフィン鎮痛剤 (0.1 mg/kg) 以内でなければなりません。 注: このプロトコルでメスのマウスとして使用されます、尿道カテーテル留置中に操作しやすくしています。雄マウスのプロトコルも動作しますが、ステップ 3 を実行するときに余分な注意が必要です。</li>
	<li>乾燥を防ぐためには、動物の目に眼軟膏を適用します。鼻の円錐形の鼻と加熱パッドの上を向いてハイパーカプニアのマウスを置きます。イソフルラン鼻の円錐形を通過させる空気回路のスイッチをオンにします。</li>
	<li>頭と粘着テープで鼻の円錐形を抑制します。メンテナンスのための 2% にイソフルラン気化器を調整します。</li>
	<li>粘着テープで手足を拘束します。動物は深い麻酔で、その後の腹部領域を剃るようにつま先ピンチ テストを実行します。</li>
</ol>3. 尿の枯渇と膀胱洗浄
<ol><li>(24 G、2.11 cm の長さ、0.045 cm の外径) カテーテルに潤滑剤を適用し、その外表面が完全に覆われていることを確認します。</li>
	<li>尿道開口部にカテーテルを挿入し、その時点で尿をカテーテルを通じて流出、膀胱に達するまでゆっくりと差し込みます。尿枯渇のため腹部を優しく押します。<ol>
<li>かどうか、カテーテルが正しく挿入されて、膀胱に自動尿流出を観察することによって確認してください。尿道と膀胱壁の穿孔を回避し、必要な場合は、潤滑剤を複数回適用。</li>
	</ol>
</li>
	<li>廃棄物ビーカーにピペットで尿を破棄します。</li>
	<li>まだ膀胱内のもう一方の端をカテーテルの外側の端にリン酸緩衝生理食塩水 (PBS) の 80 μ L をピペットします。慎重に 1 mL 注射器をカテーテルに接続します。PBS を膀胱内に注入する注射器を軽く押します。カテーテルを膀胱内に空気の泡を作成するを避けるためにいくつかの PBS を残します。</li>
	<li>注射器を削除します。膀胱から排出する PBS を待ちます。PBS を避難する腹部を優しく押します。</li>
	<li>廃棄物のビーカーにピペットでカテーテルで PBS を破棄します。</li>
	<li>さらに 2 回の PBS (ステップ 3.4 3.6) を洗浄を繰り返します。 注意: 洗濯手順中に軽く動作するように重要です。カテーテルまたは自動の障害で血液流出液を尿道を貫通は通常を示します。エレクトロポレーション効率が低下するにも、気泡を導入することを避けるために重要です。</li>
</ol>4. プラスミド配信
<ol><li>70% エタノールをマウスの腹腔に適用し、膀胱の上腹部の皮膚に 1 cm の縦切開をするメスを使用します。</li>
	<li>、カテーテルの外側の端に少なくとも 20 μ L のプラスミド プラス トリパン ブルー溶液をピペット、注射器を取り付けます。</li>
	<li>膀胱内にプラスミド溶液を注入します。膀胱が青に変わったら、注入は成功します。カテーテルを膀胱内に空気の泡を作成するを避けるためにいくつかの液体を残します。</li>
	<li>ピンセットを使用して外部の尿道口をつかむ、カテーテルと注射器を取り外します。文字列を使用して、外部の尿道口を締めます。文字列に 2 つのループを作るし、2 つのノットで結びます。 注: は、尿道の締付プラスミド液体の逆流を防止するために重要です。</li>
	<li>次のパラメーターでエレクトロポレーション ジェネレーターをオンに: 33 v 系、50 ms の稼働時間、および 950 ms 間隔時間。</li>
	<li>ピンセットで膀胱を押し、2 つの電極と膀胱をピンチします。フットペダル、エレクトロポレーションを実行するを押してください。 注: 各ペダル プッシュ後 5 回短い間隔で発生する電気パルスが設定されます。マウスは、このプロセスでけいれんがあります。配信の効率を増やすことができます足のペダルを 2 回以上押すが、あまりにも多くの電気パルスは尿路の組織の整合性を損なうことができます。<ol>
<li>火花が生成されます、ピンセットと電極との間の接触を避けてください。</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. 回復
<ol><li>滅菌手術用縫合糸やクリップの出店を腹部、皮膚を縫合します。傷にヨウ素を適用します。</li>
	<li>イソフルラン システムから動物を削除します。手術後の痛みを軽減するため皮下にブプレノルフィン鎮痛剤 (0.1 mg/kg) を管理します。</li>
	<li>加熱パッドで動物を飼うし、完全復旧後自宅のケージにそれを返します。通常の機動性、飲酒や摂食行動と感染の兆候切開が癒されるし、クリップを削除するまでに、少なくとも一度毎日動物を確認します。動物の痛みの症状を表示は、グルーミング、増加攻撃性と発声を削減など、ブプレノルフィン鎮痛薬の後の注射を管理します。</li>
</ol>

<ol><li>Sharpless, N. E., Depinho, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mighty+mouse%3A+genetically+engineered+mouse+models+in+cancer+drug+development%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Drug+Discov%22%5BJournal%5D)">The mighty mouse: genetically engineered mouse models in cancer drug development.</a> Nat Rev Drug Discov. 5 (9), 741-754 (2006).</li>
<li>Heyer, J., Kwong, L. N., Lowe, S. W., Chin, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-germline+genetically+engineered+mouse+models+for+translational+cancer+research%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Cancer%22%5BJournal%5D)">Non-germline genetically engineered mouse models for translational cancer research.</a> Nat Rev Cancer. 10 (7), 470-480 (2010).</li>
<li>Maddalo, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+engineering+of+oncogenic+chromosomal+rearrangements+with+the+CRISPR%2FCas9+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">In vivo engineering of oncogenic chromosomal rearrangements with the CRISPR/Cas9 system.</a> Nature. 516 (7531), 423-427 (2014).</li>
<li>Xue, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPR-mediated+direct+mutation+of+cancer+genes+in+the+mouse+liver%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">CRISPR-mediated direct mutation of cancer genes in the mouse liver.</a> Nature. , (2014).</li>
<li>Sanchez-Rivera, F. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+modelling+of+cooperating+genetic+events+in+cancer+through+somatic+genome+editing%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Rapid modelling of cooperating genetic events in cancer through somatic genome editing.</a> Nature. 516 (7531), 428-431 (2014).</li>
<li>Romero, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Keap1+loss+promotes+Kras-driven+lung+cancer+and+results+in+dependence+on+glutaminolysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">Keap1 loss promotes Kras-driven lung cancer and results in dependence on glutaminolysis.</a> Nat Med. 23 (11), 1362-1368 (2017).</li>
<li>Platt, R. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPR-Cas9+knockin+mice+for+genome+editing+and+cancer+modeling%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">CRISPR-Cas9 knockin mice for genome editing and cancer modeling.</a> Cell. 159 (2), 440-455 (2014).</li>
<li>Yin, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome+editing+with+Cas9+in+adult+mice+corrects+a+disease+mutation+and+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Genome editing with Cas9 in adult mice corrects a disease mutation and phenotype.</a> Nat Biotechnol. 32 (6), 551-553 (2014).</li>
<li>Yang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+dual+AAV+system+enables+the+Cas9-mediated+correction+of+a+metabolic+liver+disease+in+newborn+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">A dual AAV system enables the Cas9-mediated correction of a metabolic liver disease in newborn mice.</a> Nat Biotechnol. 34 (3), 334-338 (2016).</li>
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<li>Ramesh, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+pretreatment+agents+to+enhance+adenovirus+infection+of+bladder+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Ther%22%5BJournal%5D)">Identification of pretreatment agents to enhance adenovirus infection of bladder epithelium.</a> Mol Ther. 10 (4), 697-705 (2004).</li>
<li>Yamashita, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Syn3+provides+high+levels+of+intravesical+adenoviral-mediated+gene+transfer+for+gene+therapy+of+genetically+altered+urothelium+and+superficial+bladder+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Syn3 provides high levels of intravesical adenoviral-mediated gene transfer for gene therapy of genetically altered urothelium and superficial bladder cancer.</a> Cancer Gene Ther. 9 (8), 687-691 (2002).</li>
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<li>Saito, T., Nakatsuji, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+gene+transfer+into+the+embryonic+mouse+brain+using+in+vivo+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Efficient gene transfer into the embryonic mouse brain using in vivo electroporation.</a> Dev Biol. 240 (1), 237-246 (2001).</li>
<li>Boutin, C., Diestel, S., Desoeuvre, A., Tiveron, M. C., Cremer, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+in+vivo+electroporation+of+the+postnatal+rodent+forebrain%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Efficient in vivo electroporation of the postnatal rodent forebrain.</a> PLoS One. 3 (4), e1883(2008).</li>
<li>Saito, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+electroporation+in+the+embryonic+mouse+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">In vivo electroporation in the embryonic mouse central nervous system.</a> Nat Protoc. 1 (3), 1552-1558 (2006).</li>
<li>Molotkov, D. A., Yukin, A. Y., Afzalov, R. A., Khiroug, L. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+delivery+to+postnatal+rat+brain+by+non-ventricular+plasmid+injection+and+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Gene delivery to postnatal rat brain by non-ventricular plasmid injection and electroporation.</a> J Vis Exp. (43), (2010).</li>
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</ol>

著者は競合する関心を宣言しません。

エレクトロポレーションは細胞膜透過性を高め、遺伝子電子伝達系16のための強力な技術です。電気穿孔法による生活を齧歯動物への遺伝子導入は神経生物学分野17,18,19,20,21によく使用されています。他の多くの器官の潜在的な応用は広範囲にわたって検討されていません。私たちの知る限り、ここで説明した手法は膀胱尿路上皮に電気穿孔法による正常な遺伝子デリバリーの最初の報告です。アデノ ウイルス、レンチ ウイルスによる感染方法にいくつかの利点を提供しています。まず、エレクトロポレーション法は、安全、簡単かつ遺伝的ウイルスベクターが使用され、特定の臓器サイト体内に DNA プラスミドの配信は比較的簡単なために採用するより安いです。第二に、それはウイルスのベクト...

遺伝子組み換えマウス モデル (GEMMs) は、動物の開発、遺伝子機能生体内、および疾患進行1,2メカニズムに関する知識の拡大に重要な役割を演奏されています。生殖 GEMMs は伝統的に 2 つの方法で開発されています。最初の偽妊娠女性に受精卵移植による続く DNA のプラスミッドの前核注入によるトランスジェニック マウスの作成です。他のアウト/ノックアウト ・ ノックイン マウス胚性幹細胞での相同組み換えによる生成とキメラの開発です。興味の特定の組織や細胞の種類の遺伝子のノックアウト条件付きにはには、複数世代の Cre、flox のサイトと遺伝子組み換え遺伝子の繁殖が含まれます。全体のプロセスが高価な目標は、組織に複数の遺伝子を対象とする場合は特に、時間のかかることができます。最近では、クラスター化された空間定期的に短い回文繰り返し (CRISPR) などの遺伝子編集技術はモデリング3、土着の癌組織特異遺伝子変異を誘導するマウスの複数の器官に適用されています。 4,5,6,7または8,9その場で正しい病気の突然変異。これらの研究では、gRNA ベクトル配信通常器官または流体の尾静脈注射のアデノ ウイルスやレンチ ウイルス感染によって達成されました。利便性と癌の伝統的な Cre Lox 基づくマウス モデルと比較してこれらの器官のモデリングの効率、肺と肝臓への CRISPR コンポーネントの配信の相対的な容易さが大幅に向上します。
膀胱尿路上皮はほとんど膀胱腫瘍が発生します。膀胱尿路上皮癌モデリングや遺伝子治療への DNA ベクターの配信は、ウイルス感染の10、11の付着のための障壁として機能する頂尿路上皮表面にグリコサミノグリカン層によって妨げられています。Syn3 などドデシル-β-d-maltoside いくつかの前処理剤は、この障壁を破壊し、アデノ ウイルス感染効率12,13,14を高めるために使用されています。アデノ随伴ウイルス (通気) することができます効果的に膀胱に感染するかどうかは報告されていません。全体的にみて、非ウイルス性に基づいて配信方法が望ましいでしょう。ここでは、尿道カテーテル法, エレクトロポレーションによるマウス尿路への効率的な DNA プラスミド配信のラボで開発手法について述べる.我々 のアプローチは、グリコサミノグリカン レイヤーまたはウイルス産生の化学的前処理を含まない、それ自体が大幅 DNA プラスミドのマウス膀胱尿路への導入を簡略化し、様々 な体内調査を促進する必要があります。膀胱疾患。

<table><tbody><tr><td>BD 1mL TB シリンジ</td><td>フィッシャー</td><td>148232E</td><td></td></tr><tr><td>ブプレノルフィン</td><td>シグマ</td><td>B9275-50MG</td><td></td></tr><tr><td>デュモン ピンセット</td><td>ロボズ サージカル インストル</td><td>RS-5005</td><td>手術前に 70% エタノールで治療</td></tr><tr><td>ECM830 SQ ウェーブ エレクトロポレーター</td><td>ハーバード装置</td><td>450052</td><td></td></tr><tr><td>エクセル インターナショナル ディスポーザブル セーフレット I.V. カテーテル</td><td>フィッシャー科学</td><td>的な14-841-21</td><td>24G、2.11 cmの長さ、0.045 cmの外径</td></tr><tr><td>極細マイクロ解剖はさみ</td><td>Roboz Surgical Instr</td><td>RS-5135</td><td>手術前に70%エタノールで治療</td></tr>する <tr><td>イソフルラン</td><td>獣医 1</td><td>501017</td><td></td></tr><tr><td>K&H小動物用加熱休息マット、9 By 12インチ</td><td>アマゾン</td><td>N / a</td><td>ヒートマットをペーパータオルで覆う</td></tr><tr><td>眼科軟膏</td><td>フィッシャー</td><td>NC0849514</td><td></td></tr><tr><td>PBS、pH7.4</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ 10010049</td><td></td></tr><tr><td>ピペットチップ 200 & マイクロ;L</td><td>USA Scientific</td><td>1111-0206</td><td></td></tr>ピ<tr><td>ペットチップ、ユニバーサルフィット; 0.1 to 10 & micro;L</td><td>フィッシャー</td><td>02707438(CS)</td><td></td></tr><tr><td>ピペットマン NEO P2</td><td>ギルソン</td><td>F144561</td><td></td></tr><tr><td>ピペットマン NEO P200N</td><td>ギルソン</td><td>F144565</td><td></td></tr><tr><td>プラスミド CAG-GFP</td><td>Addgene</td><td>16664</td><td></td></tr><tr><td>プラチナ ピンセット 5 mm</td><td>ハーバード 装置</td><td>450489</td><td>直径 5 mm</td></tr> は<tr><td>さみ</td><td>ロボズ サージカル インストレーション</td><td>RS-5880</td><td>治療手術使用前の70%エタノール</td></tr><tr><td>ストリングコード</td><td>アマゾン</td><td>n/a</td><td>マンダラ クラフト 150D 210D 0.8mm 1mm レザー ソーイング ステッチ フラットワックス 糸 ストリングコード</td></tr><tr><td>テープ、スコッチ</td><td>フィッシャー</td><td>19047257</td><td></td></tr><tr><td>セリオゲル 獣医用潤滑剤</td><td>PBS アニマルヘルス</td><td>353-736</td><td></td></tr><tr><td>トリパンブルー ステイン</td><td>ライフ テクノロジー</td><td>ズ 15250061</td><td></td></tr><tr><td>V-1 テーブルトップシステム麻酔</td><td>VetEquip</td><td>901806</td><td></td></tr><tr><td>Vicryl バイオレット縫合糸 18インチ FS-2 カッティング 5-0</td><td>フィッシャー</td><td>NC0578475</td><td></td></tr><tr><td>ウォルグリーン ポビドン ヨウ素 10%</td>ウォル<td>グリーン</td><td>953982</td><td></td></tr><tr><td>創傷クリップ</td><td>フィッシャー</td><td>018045</td><td></td></tr><tr><td>創傷クリップ アプライヤー</td><td>フィッシャー</td><td>01804</td><td></td></tr></tbody></table>

電気穿孔法によるマウス膀胱尿路上皮にプラスミド dna 配信法

Novel Method of Plasmid DNA Delivery to Mouse Bladder Urothelium by Electroporation

遺伝子組み換えマウス モデル (GEMMs) は、癌などの人間の病気の開始そして進行のメカニズムを生物学的知見を明らかに非常に貴重です。遺伝子発現形質転換および条件付きノックアウト マウスが頻繁に使用されているまたは特定のティッシュかセルでアブレーション タイプの生体。ただし、生殖マウス モデルの生成は、時間がかかり、高価にすることができます。遺伝子編集技術及びウイルス感染によってプラスミド DNA を提供することの実現可能性の最近の進歩は、いくつかの臓器の非生殖土着マウス癌モデルの急速な生成を有効にしています。膀胱は、ウイルスベクター尿路を覆うグリコサミノグリカン層の存在のために、アクセスするは難しいされている器官です。ここでは、マウス膀胱尿路上皮の体内に DNA プラスミドの効率的な配信のためのラボで開発された手法について述べる.PCAG GFP プラスミドの膀胱内注入および外科的露出膀胱のエレクトロポレーション、膀胱尿路上皮細胞一過性発現のために具体的には DNA のプラスミッドを配信できることを示す.本手法は過剰発現とマウス膀胱における遺伝子のノックダウンのため迅速かつ便利な方法を提供します、膀胱がんや他の泌尿器科疾患の GEMMs を構築に適用することができます。

膀胱尿路上皮への遺伝子導入の成功を示すためには、エレクトロポレーションに pCAG GFP15プラスミドを使用しました。尿道を通って注入されたプラスミドのトリパン ブルー溶液 20 μ L と 5 の電気パルスを投与します。48 時間後は、マウス膀胱を解剖し、負の制御 (図 1 a) GFP シグナルを示さなかったエレクトロポレーションを受けていない膀胱に対し解離蛍光顕微鏡下で GFP 蛍光のパッチを観察しました。サイトケラチン (CK) 5、CK18、断面化された膀胱組織の免疫蛍光染色を行った場合、GFP 抗体、我々 は GFP は信号の中間、傘で現在、基底細胞が、筋肉ではなく層 (図 1 b) を発見尿路にプラスミド配信の良い特異性を示します。尿路上皮細胞の約 15% は GFP+、およびそのようなクローンの性質は癌腫瘍は通常個々 のセルから開始以来のモデリングに最適なはず。</p...

マウス膀胱の生体内で尿道カテーテル法, エレクトロポレーションによる尿路上皮細胞への DNA のプラスミッドの配信手法について述べる.膀胱疾患の土着のマウス ・ モデルを生成するための迅速かつ便利な方法を提供しています。

電気穿孔法によるマウス膀胱尿路上皮にプラスミド DNA 配信法

Genetically engineered mouse models (GEMMs) are extremely valuable in revealing novel biological insights into the initiation and progression mechanisms ...

この方法の全体的な目標は、DNA プラスミドを生体内の生きたマウスの膀胱尿路上皮に導入し、遺伝子の過剰発現またはゲノム編集を行うことです。この方法は、さまざまな遺伝子変異が膀胱がんの進行をどのように促進するかなど、膀胱がん分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、ウイルスベクターに関連する安全性の懸念や技術的な障壁なしに、遺伝子を膀胱に迅速かつ便利に送達する方法を提供することです。最初に思いついたのは、DNA送達に人工的な関連ウイルスを使おうとするこの方法でしたが、膀胱にはうまくいきませんでした。この技術の意味合いは、エレクトロポレーションが尿路上皮細胞へのDNAプラスミドの効率的な送達を達成できるため、遺伝子治療にも及ぶ可能性があります。この手順を実演するのは、私の研究室のOfir StefansonとYueli Liuです。この手順を開始するには、すべての手術器具をオートクレーブし、70%エタノールでワークスペースを滅菌します。手術器具と手袋に70%エタノールを頻繁にスプレーして、その後の手順を実行して無菌状態を維持します。.まず、マウスに麻酔をかけ、手術部位を剃ります。尿を枯渇させるには、カテーテルに潤滑剤を塗布し、その外面が完全に覆われていることを確認します。次に、カテーテルをマウスの尿道開口部に挿入し、膀胱に到達するまでゆっくりと押します。腹部をやさしく押して、尿の枯渇を助けます。その後、ピペットで尿を廃棄物ビーカーに捨て、次に80マイクロリットルのPBSをカテーテルの外側の端にピペットで入れ、もう一方の端はまだ膀胱に入れます。次に、1mmシリンジをカテーテルに慎重に取り付けます。シリンジをそっと押して、PBSを膀胱に注入します。膀胱に気泡が生じないように、カテーテルにPBSをいくらか残しておきます。その後、シリンジを取り外し、PBSが膀胱から排出されるのを待ちます。腹部をそっと押してPBSを排出し、ピペットでカテーテル内のPBSを廃棄物ビーカーに捨てます。PBS洗浄をさらに2回繰り返します。トランスフェクションする膀胱ごとに、1マイクロリットルあたり1マイクログラムで少なくとも20マイクロリットルのDNAプラスミドを調製します。次に、20マイクロリットルのプラスミド溶液に1マイクロリットルのトリパンブルーを加え、1.5ミリリットルの微量遠心チューブとピペットでよく混ぜます。プラスミドを送達するには、70%エタノールを腹部に塗布します。.膀胱の上の腹部の皮膚を開くために、1センチメートルの垂直切開を行います。次に、筋肉層を切って膀胱を露出させます。プラスミドとトリパンブルー溶液を少なくとも20マイクロリットルをカテーテルの外側端にピペットで入れ、シリンジに取り外します。.次に、プラスミド溶液を膀胱に注入します。膀胱が青色に変われ

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Biology

生物学

発展途上のマウス脳への遺伝子導入法は、ユニークな手術法と電極の特殊な形状を用いて記述されます。このユニークな手法は、脳の発達の研究に多くの神経科学者を支援する時間的および空間的にプラスミドDNAのトランスフェクションすることができます。...

マウス子宮内でエレクトロポレーション：制御時空間遺伝子導入

このビデオでは、マウスモデルの膀胱を空にしてすすぐカテーテルベースの手順について説明します。調製したマウスは、その後の実験手順に使用できます。...

マウスモデルにおける尿の枯渇と膀胱のすすぎ:マウスの膀胱を空にして洗浄するためのカテーテルベースの手順

このビデオでは、尿道カテーテル法とエレクトロポレーション技術を組み合わせて、マウスの膀胱の尿路上皮にDNAプラスミドを送達する様子を実演しています。記載された手順により、マウス膀胱癌モデルの生成が可能になります。...

マウス膀胱の尿路上皮へのDNAプラスミドの送達:マウス膀胱の尿路上皮細胞にDNAプラスミドを効率的に送達するためのエレクトロポレーションベースの手順により、遺伝子操作モデルを生成する

このビデオでは、核酸トランスフェクションのためのマウス腎臓の腎盂へのプラスミドの流体力学的注入のプロトコルを紹介します。この技術は、高い静水圧の原理を利用してプラスミドを特定の部位に強力に駆動し、組織損傷を引き起こさずにプラスミドの臓器特異的な送達を可能にします。...

流体力学的腎骨盤注射:マウスモデルの腎臓細胞にDNAを直接送達する技術

このビデオは、マウス胚の小脳ニューロン細胞にプラスミドDNAを子宮内エレクトロポレーションを使用して送達する方法を示しています。この方法は、正常な脳の発達における遺伝子のin...

子宮内エレクトロポレーションに基づく遺伝子導入:マウス胚の胚性小脳細胞にプラスミドDNAを注入する技術

このビデオでは、蛍光タンパク質をコードするプラスミドDNAをマウスの初代小脳顆粒細胞前駆体に導入するエレクトロポレーション技術を実演しています。...

エレクトロポレーションを介したIn vitro遺伝子導入:蛍光レポータータンパク質をコードするプラスミドを培養細胞に導入するための電気パルス技術

起源の臓器への癌細胞の移植は、新規治療法を評価するための有用な前臨床モデルとして役立つことができる。 MB49膀胱癌細胞は、膀胱内注入後の膀胱内に成長させることができる。このプロトコルは、腫瘍移植およびアデノウイルス引渡しのために、マウスの膀胱のカテーテル法を示しています。...

遺伝子送達研究のための同所膀胱癌モデル

軟膜表面はますます注目を受けているCNSにおけるユニークな前駆ゾーンです。ここで、我々の詳細を修飾エレクトロポレーション法を使用して、この前駆ゾーンの迅速な遺伝子操作のための方法。この手順は、細胞系統および細胞分化に関与するシグナル伝達経路の細胞および分子研究のために使用することができ、娘細胞の運命および特性を解明する。...

新生児軟膜表面エレクトロ

この記事では、精子形成のユニークなプロセスを研究するために精巣マウス細胞のトランスフェクション技術としてインビボでマウス精巣のマイクロインジェクションやエレクトロポレーションについて説明します。提示されたプロトコルは、ガラスキャピラリーの準備、輸出管を経由してマイクロインジェクション、エレクトロポレーションによるトランスフェクションの工程を含む。...

マウス精巣の生体内マイクロインジェクションやエレクトロポレーションで

プラスミドDNAの骨格筋へのエレクトロポレーションは、マウスの筋収縮性を損なうことなく遺伝子発現を調節する実行可能な方法である。...

マウス骨格筋へのプラスミドDNAのエレクトロポレーション

大量の組換えアデノウイルスを生成するための方法が記載されており、次いで、それを使用して天然のげっ歯類の尿路上皮を形質導入し、導入遺伝子の発現または内因性遺伝子産物のダウンレギュレーションを可能にすることができる。...

アデノウイルスを介した形質導入を用いた天然膀胱尿路上皮における導入遺伝子の発現

学ぶ電気穿孔法によるマウス膀胱尿路上皮へのプラスミドDNA配信法。尿道カテーテル挿入と電気穿孔を組み合わせた遺伝子導入技術で、膀胱がん研究や遺伝子治療のための自家性マウスモデル構築に有用です。

電気穿孔法によるマウス膀胱尿路上皮にプラスミド DNA 配信法

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