2018年6月28日
発光細菌クオラムセンシングなどのメカニズムのさまざまな光の生産を調節します。この手法では、生物発光における原位置調査および細胞密度に発光の相関をことができます。人工の発光性大腸菌システムはluxオペロン、ルクスのタンパク質及びその相互作用の特性をことができます。
この方法は、生物発光分野における重要な質問に答えるのに役立ちます。例えば、生物発光細菌の最大光強度のための最適な増殖条件を見つけ、調節メカニズムを決定することなどです。この技術の主な利点は、さまざまな菌株や生物に使用できる簡単なセットアップと、シンプルで迅速な調整の可能性です。
この方法に従うと、ルクスオペロンの特性を把握できます。また、細菌、環境、報告システム、センサーなどの他のシステムにも適用できます。まず、100ミリリットルのLB培地にカナマイシンを接種し、グリセロールストックからルクスオペロン形質転換大腸菌BL21細胞を接種するか、形質転換プレートから直接接種して、一晩培養します。
培養物を摂氏37度、120RPMで一晩インキュベートします。翌日、800ミリリットルのLBカナマイシン培地に8ミリリットルの一晩培養液を接種します。細胞密度がOD600が0.6〜0.8に達するまで、培養物を摂氏37度、インキュベーターシェーカーで120RPMでインキュベー
トします。インキュベーション温度を28°Cに下げ、0.1ミリモルのIPTGを添加してタンパク質発現を誘導します。次に、細胞が輝き始めるまで細胞を観察します。テキストプロトコルに従って培地を調製した後、人工海水培地寒天プレート上で細菌の生物発光株を縞模様にし、摂氏24〜30度で一晩インキュベートします。
プレートから100ミリリットルの人工海水培地に単一のコロニーを接種することにより、一晩培養を準備します。次に、培養物を摂氏24〜30度、120RPMで一晩インキュベートします。翌日、800ミリリットルの人工海水培地に8ミリリットルの一晩培養液を接種します。
細菌細胞を摂氏24〜30度、120RPMでインキュベートし、細胞が輝き始めるまで観察します。目的の生物発光細菌株、または改変大腸菌株を寒天プレートに線抜きし、培養物を摂氏28度で一晩インキュベートします。オーバーナイトプレートから3ミリリットルの培地に1つのコロニーを接種し、細胞を摂氏28度、180RPMで約1〜2時間インキュベー
トします。液体培養物を1〜10希釈した場合の細胞密度を650ナノメートルで測定します。次に、OD650が0.05の1ミリリットルの培養物の比率と体積を計算します。計算された量の培養物と培地を、底がガラスの24ウェルの黒い壁のプレートにピペットで移します。
ルクスオペロン全体を含むpET28aベクターが失われないように、そしてそれが修飾大腸菌株で発現されるように、サンプルに1マイクロリットルのカナマイシンと1マイクロリットルのIPTGを添加します。次に、測定中の蒸発を防ぐために、プレートに蓋をします。最後に、摂氏28度に設定されたプレートリーダーとテキストプロトコルにあるスクリプトを使用して、データポイント間で揺れながら10分ごとに吸光度と生物発光の測定を行います。
この図は、大腸菌BL21細胞、空のpET28aベクターを含むBL21細胞、およびpET28aベクターを含むBL21細胞のOD250測定値を比較したもので、ルクスリブオペロンインサートは挿入されていますが、誘導はされていません。発光に関する3つの参照測定値はすべて、遅延、指数関数的、および定常的な成長段階を伴うシグモイド成長曲線を示していますが、T7プロモーターの漏れにより300分後に発光を示す後者のサンプルを除いて、発光はありません。ここでは、大腸菌で発現するルクスオペロンと生物発光細菌株であるphotobacterium mandapamensis 27561の成長曲線と光強度を、LBまたは人工海水培地で摂氏28度で比較しました。
改変大腸菌株とP.mandapamensisは、LB培地だけでなく人工海水培地でも増殖し、どちらも発光を示します。しかし、LB媒体では、P.Mandapamensisはまったく発光しません。驚くべきことに、改変された大腸菌株は、生物発光細菌よりも高い最大光強度を示します。
この実験では、大腸菌ベースのルクスリブオペロンの遺伝子発現を24時間にわたって測定し、その寿命を分析しました。発光は19時間半続き、徐々に減少が観察された細菌株よりもはるかに長く、10時間後の発光は非常に低かった。その開発後、この技術は、生物発光の分野の研究者が大腸菌などのモデル生物のルクスオペロンを探索する道を開きました。
このビデオを見れば、生物発光細菌の扱い方をよく理解できるはずです。
本記事では、クオーラムセンシングによる発光調節および人工的なE. coliシステムにおけるluxオペロンの特性評価に焦点を当て、生物発光細菌を研究するための手法について解説します。
この手法により、設計された微生物システムにおけるluxオペロン機能の標準化された定量的な評価が可能となり、合成生物学におけるターゲットの検証やバイオセンサーの開発を支援します。生物発光の測定を本来のクオラムセンシング調節から分離することで、遺伝子構築物のメカニズム的なリスク低減のための制御されたプラットフォームを提供します。本アプローチは、遺伝子発現ダイナミクスとタンパク質複合体機能に関する予測的な信頼性を提供し、探索ワークフローにおける初期段階の継続/中止(go/no-go)の判断に寄与します。
この手法は、遺伝子構築物の検証からアッセイ開発に至る探索的連続性の中に組み込まれており、バイオセンサーの最適化に向けた「設計・構築・評価」の反復的なサイクルを可能にします。