2018年8月15日
人間と動物の歯のエナメル質炭酸の安定炭素・酸素同位体分析は、個々 の食事と環境復元のためのプロキシとして使用されています。ここでは、私たちは詳細な説明し、映像記録一括と順次歯エナメル質サンプリングとして考古学と古生物学的試料の前処理。
この方法は、家畜の食事、動物管理戦略、動物の移動性など、考古学、古生物学、生態学における重要な質問に答えることができます。この技術の主な利点は、比較的非破壊的であり、埋葬環境の化学変化に対して適度に耐性のある材料に焦点を当てていることです。この方法に不慣れな人は、人間や動物の古生物学的および考古学的遺跡をサンプリングするための利用可能な視覚補助がないため、苦労するでしょう。
この方法の視覚的なデモンストレーションは、考古学的資料で学ぶのが難しく、実践が限られているため、非常に重要です。バルクサンプリングを開始するには、テキストプロトコルに概説されているようにハンドヘルドドリルをセットアップし、先端が均一な形状のきれいなダイヤモンドドリルをドリルセットアップにチャックで取り付けます。ドリルを使用して、歯の外面を優しく磨いてきれいにします。
次に、1.5ミリリットルの微量遠心チューブを適度に正確なバランスで風袋引きします。次に、ドリルの下にきれいなアルミホイルまたは計量紙を置き、エナメル粉末を収集します。ドリルを使用して、穏やかで均一な摩耗を実現し、成長軸全体に平行な溝を作成します。
穿孔するサンプル粉末の量は、分析に使用する機器、前処理プロトコル、および歯のサイズによって異なることに注意してください。得られたエナメル粉末を回収し、1.5ミリリットルの微量遠心チューブに移します。サンプル番号とエナメル質の重量の両方を実験ノートと電子データベースに記録します。
各歯をドリルで穴を開けた後、0.5モルの塩酸を使用して、頑丈な組織で使用済みのドリルビットをクリーニングします。ドリルビットを新しい頑丈なティッシュで有機溶剤で再度洗います。ドリル自体を真空または圧縮空気で清掃します。
掘削セッションが完了したら、専用の掃除機またはちりとりとブラシを使用してワークスペースを徹底的に清掃します。メタノールでサンプリングスペースを拭き取ります。真空または圧縮空気を使用してドリルを清掃します。
シーケンシャルサンプリングの場合は、まず外側の歯のエナメル質の非常に薄い層を取り除き、歯の表面をきれいにします。サンプリングラインの幅はドリルビットの直径によって決まるため、サンプルに適したドリルビットを選択してください。穴あけを開始するには、歯のエナメル質をドリルビットに押し付け、圧力をかけます。
歯の成長軸に垂直な頬面に沿って、エナメル質と根の接合部からクラウンの上部までドリルで穴を開けます。エナメル質と根元の接合部の位置で、頂点からクラウンの基部までドリルで穴を開けると、エナメル層全体に溝ができます。穴あけが完了したら、サンプルの重量を量って十分なエナメル粉末があることを確認し、重量を記録します。
歯ごとに穴あけプロセスを数回繰り返し、連続する各ラインは前のサンプルラインと平行で、約1〜2ミリメートル離れています。この後、キャリパーを使用して、エナメル質とルートの接合部からの各サンプリングラインの距離を測定します。比較のために各距離を記録します。
まず、ピペットを使用して、エナメル質1ミリグラムあたり0.1ミリリットルの濃度で各サンプルに0.1モル酢酸を追加します。サンプルを振とうするか、攪拌機を使用して攪拌します。攪拌したサンプルを10分間放置します。
サンプルを13, 700 gで2分間遠心分離します。清潔なピペットを使用して、酢酸を1ミリリットルの超純水に置き換え、振とうまたは攪拌機を使用して攪拌します。再び13,700gで2分間遠心分離します。
超純水の交換と遠心分離をさらに2回繰り返します。サンプルの中立性をテストします。サンプルが中性に達していない場合は、中性に達するまで洗浄プロセスを繰り返します。
次に、ピペットを使用して、上清を乱さずに残りの液体を取り除きます。各マイクロ遠心チューブに1センチメートル×1センチ四方のパラフィルムをプレカットして置きます。鋭利なものを使用して、パラフィルムに小さな穴を開けてサンプルが適切に乾燥することを確認し、チューブを冷凍庫に一晩置きます。
翌日、サンプルを凍結乾燥機に移し、残っている液体をすべて取り除きます。サンプルが乾いたら、パラフィルムをはがし、微量遠心分離機の蓋を閉めます。チューブのラベルを確認し、必要に応じてチューブに注釈を付けます。
この研究では、漸進的なエナメル質バイオアパタイトサンプルを調製します。各増分サンプル位置には番号が付けられ、各位置とエナメル質-ルート接合部との間の距離が測定されます。代表的な2頭のヒツジから得られた多様な炭素と酸素の安定同位体の結果は、これらの動物が異なる環境に生息していたことを裏付けています。
ヒツジAは熱帯の草原に生息し、1ミルあたり3.3〜5.1の狭い範囲で酸素18の増加を示します。これは、同位体値が類似しており、降水量の強い季節的変化がない水源からの水の摂取を示唆しています。対照的に、温暖で乾燥した草原の草原に生息するヒツジBは、酸素18の値を持ち、変動の振幅は大きく、1ミルあたりマイナス5.2からマイナス13.1
の範囲です。これは、降水量の季節変動が強いことを示しています。安定した炭素同位体値は、ヒツジAの食事が主にC4植物で構成されているのに対し、ヒツジBの食事は主にC3植物で構成されていることを示唆しています。熱帯雨林環境からの人間の歯の酸素18と炭素13の増分値は、非常に制約されています。
これらの値は2 per milの範囲に収まり、エナメル質鉱化の期間中、採餌戦略にばらつきがないことを示唆しています。この手順を試みる際には、交換不可能な古いサンプルをドリルする前に、現代の歯でシーケンシャルサンプリングを練習することを覚えておくことが重要です。シーケンシャルサンプリングは、習熟度に達するまでに数時間の練習が必要な場合があります。
古代のサンプルの場合、サンプリングプロセスに耐えられる歯を選択することが重要です。保存状態が悪い歯や崩れやすい歯は、詳細な逐次サンプリングに役立つ可能性は低いです。この手順に続いて、ストロンチウム同位体分析などの他の方法を試して、人間と動物の移動性を理解することができます。
その開発後、この技術は、考古学と古生物学の分野の研究者が、さまざまな地域や時代にわたる動物の群れと移動戦略を探求する道を開きました。ドリルや酢酸での作業は非常に危険である可能性があるため、この手順を実行するときは、常にゴーグル、手袋、フェイスマスクなどの予防措置を講じる必要があることを忘れないでください。
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この記事では、食事と環境の再構築のためのプロキシとして機能する歯のエナメル質炭酸塩の安定炭素および酸素同位体分析の詳細な説明を提供します。この方法は考古学、古生物学、生態学で特に有用です。
Stable carbon and oxygen isotope analysis of tooth enamel carbonate enables high-resolution reconstruction of dietary and environmental histories, supporting mechanistic de-risking in early discovery and translational research. The method's nondestructive nature and resistance to diagenetic alteration make it a robust tool for generating reliable biological readouts from limited or irreplaceable samples. Its adoption enhances predictive confidence in studies requiring precise temporal and environmental context for biological specimens.
This method integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling robust environmental and dietary profiling at the sample level, supporting both hypothesis testing and translational alignment.