Name: 細胞間の接触でタンパク質間相互作用の分析計蛍光の変動 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-12-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 43 s
Description: 学ぶ 蛍光変動分光法による細胞間タンパク質相互作用の解析手法。生細胞で固定や破壊をせずリアルタイムに解析でき、細胞接着や認識に関与する受容体の動態を観察できます。

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この作品は、ドイツ研究振興協会 (DFG) によってを部分的に支持された 254850309 を付与します。著者は、論文の批判的な読みの Madlen リュクネールをありがとうございます。

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著者が明らかに何もありません。

ここで説明した実験手順により、蛋白質蛋白質の調査は細胞間の接触、蛍光揺らぎ分光技術、すなわち sFCCS、ccN & B でトランス相互作用これらのメソッドは、それぞれ 1 つまたは他の融合蛋白質を表現する 2 つの隣接セルとの接触で興味の蛋白融合した 2 つのスペクトル分離 FPs によって放射される蛍光変動の統計的分析を含みます。トランス錯体の存在は、近隣の PMs のタンパク質の共同の拡散の程度を調査によって定量化されます。サンプル準備、データ集録および解析の詳細なプロトコルに加えてこの資料は神経細胞接着タンパク質 APLP1 のアッセイの成功のアプリケーションの実験的証拠を提供します。APLP1 が特定、細胞間の接触でエネルギートランス相互作用を経ることを示す.さらに、亜鉛イオンは、トランス相互作用の多価のプラットフォームを提供し、このように、強化されたトランス結合を誘発する細胞間の接触で APLP1 クラスターの形成を促進します。
破壊的な生化学的...

多くの生物学的プロセスは、細胞間相互作用、例えば細胞間接着1,の2,3細胞融合4細胞認識5のサイトで発生します。このようなイベントは、多細胞生物の細胞間コミュニケーション、例えば、免疫反応時の開発時に特に重要です。これらのプロセスは通常表面、すなわち、隣接する細胞の膜 (PM) にローカライズされてで規制された空間と時間が正確に特定細胞間接触の相互作用を受ける蛋白質によって仲介されます。多くの場合、これらの相互作用は直接ホモ - または血液タンパク質トランス相互作用がイオンまたは細胞外リンカー1として配位子を伴うことがあります。基本的な重要性のプロービング生きている細胞のネイティブ環境で直接これらの特定タンパク質の相互作用アッセイの欠如があります。多くのメソッドいずれか必要セル中断 (co 免疫沈降6など生化学的アッセイなど)、固定 (例えば、いくつかの超解像光学顕微鏡検査の技術や細胞の電子顕微鏡観察7の連絡先)、または、非特定の例えば、集約接着アッセイ8,9/。この問題を克服するためには、蛍光共鳴エネルギー移動 (FRET)10または蛍光補完11に基づく蛍光技術を実施しています。ただし、fluorophores が付いて十分に小さい距離を達成するためにこれらのメソッド、蛋白質10、トランス相互作用と干渉する可能性がある細胞側の蛍光ラベルが必要です。
細胞間の接触でタンパク質間相互作用の代替蛍光を用いた測定を紹介します。このアプローチを組み合わせた蛍光相互相関方法 (スキャン蛍光相互相関分光法 (sFCCS)、相関数と明るさ (ccN と B)) との蛋白質の融合コンストラクトを発現する細胞の混合例えば、接着受容体、関心。2 つの相互作用する細胞の調査受容体が細胞内から 2 つのスペクトル分離蛍光タンパク質 (FPs) が付いています (図 1 aを参照)。
採用方法は、共焦点レーザー走査型顕微鏡の焦点音量を介し蛍光融合タンパク質の拡散運動による蛍光揺らぎの統計分析に基づいています。詳しくは、アッセイは、細胞間の接触の両方の近隣の PMs の興味の蛋白質の共同の拡散をプローブします。タンパク質は、トランス相互作用を受ける、これらトランス錯体は蛍光蛋白質両方のスペクトル チャネルに発光、両エミッタの蛍光相関変動の原因を運ぶ。その一方で、バインディングが発生しない PMs が直面しているタンパク質の数値変動は独立して相関の変動を引き起こしてないになります。買収は、2 つの方法で実行できます: 1) sFCCS 細胞間接触の間でライン状のスキャンに基づいており、プローブ接触領域にあるスポットでの相互作用を効果的に。蛍光変動の時空間分析を通じて sFCCS 情報を提供もダイナミクスすなわち、蛋白質複合体; の拡散係数2) ccN &amp; B は、細胞間の接触領域で取得されるイメージのシーケンスの画素単位の分析に基づいています。プローブする能力を持ってする、ダイナミクスに関する情報は提供されません全体に沿ってマップ相互作用領域 (1 つの焦点面を使用) にお問い合わせください。両方の方法は、分子の明るさ、すなわち、平均蛍光信号は時間単位で単一拡散蛋白質複合体によって放出され、したがって、タンパク質複合体の化学量論の見積もりを提供の分析と組み合わせること細胞間の接触。
この記事では、試料調製、測定器の校正、データ集録および解析商業共焦点レーザー走査型顕微鏡の提示の分析を実行するための詳細なプロトコルを提供します。実験は、フォトンカウンティングまたはアナログ検出器、高開口数と目的を備えてあらゆる楽器で実行できます。さらに、プロトコルの重要な手順について説明し、artefactual 信号の変動、例えば、検出器雑音、退色や細胞の動きを引き起こしているいくつかのプロセスの補正方式を用意しています。もともと付着性のセル間の相互作用をプローブを開発し、アッセイ懸濁細胞の変更可能性がありますまたは適応モデル膜システム、例えば、巨大リポソーム (Guv) または巨大なプラズマ膜小胞 (GPMVs) できるように、異なる脂質環境や組織の骨格12,13の不在には相互作用の定量化。
走査蛍光相互相関分光蛍光相互相関分光法14の修正版は、脂質膜15の遅い拡散ダイナミクスを調べるために設計されました。それは興味の蛍光蛋白質を含んでいる午後に垂直なライン スキャン取得に基づいています。2 つの異なる分類された蛋白質種の相互作用を調査するには、買収はスペクトル分離 fluorophores のレーザーの 2 の行と 2 つの検出ウィンドウを使用して 2 つのスペクトル チャネルで実行されます。PM の蛋白質の遅い拡散ダイナミクスによる (D≤ ~ 1 μ m2/s)、15の行に行から励起方式を交互にクロス話無料測定を実行できます。分析から始まります: block-wise ~ 1000 行、2) 最大蛍光信号、すなわち、 PM 位置各ブロック内の位置の測定の平均と 3) シフトに基づく水平細胞運動のためのアルゴリズムの修正を配置 1)ための共通の起源12,15、各チャンネルで個別にすべてのブロック。その後、PM に対応するピクセルの自動選択は、すべて整列ライン (すなわちセンター ± 2.5σ) の合計のガウス近似から中央の領域を選択するによって実行されます。各ラインの信号の統合により、各チャンネルの膜の蛍光時間シリーズF(t) (g = グリーン チャンネル、r = 赤のチャネル)。ピクセル サイズが十分に小さくなど注意してください &lt; 200 nm のポイントの形状広がり関数と PM の位置に対応する、その中心を見つけます。実質的な退色の存在下で各チャンネルの蛍光時間シリーズが二重指数関数でモデル化し、し、次の数式を修正:16
<img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq2.jpg">.   (1)
この数式は、振幅とF(t)c、裸眼F(t)から得られるパラメーターの推定値と比較しての相関分析から得られた拡散時の両方に効果的に補正に注意してくださいすることが重要です。自動・相互相関関数、(各種/艦砲射撃) 蛍光性の信号が計算されます。
<img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq3v2.jpg">、(2)
<img alt="Equation 3" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq4v2.jpg">、(3)
どこ δFは私私F(t) = <img alt="Image 1" src="/files/ftp_upload/58582/58582img1.jpg"> Fは私(t)<img alt="Image 2" src="/files/ftp_upload/58582/58582img2.jpg">と私= g、r。
二次元拡散モデルは、すべての相関関数 (CFs) を装着されています。
<img alt="Equation 4" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq7.jpg">.  (4)
ここで、 Nは、各チャネルの拡散時間観測量とτd蛍光タンパク質の数を表します。このモデルは、記述されている実験の設定で PM におけるタンパク質の拡散は x-z 平面で発生した蛍光相関の一般的に使用される構成とは対照的分光法 (FCS) 実験膜プロービング考慮共焦点容積17の x y 平面に拡散。腰 w0と構造因子 S、伸長を記述する wz z、S の焦点の容積の wz/w0を =、スペクトルと同様の染料と同じ光設定実行ポイント FCS 校正測定から得られる拡散係数の既に使用可能な値を使用してD染料:
<img alt="Equation 5" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq8.jpg">、(5)。
τd、染料がデータを 3次元拡散モデルをフィッティングから得られる色素の測定平均拡散時間を考慮する分数すべてN分子のTのアカウント切り替え、時定数と三重項状態ττ:
<img alt="Equation 6" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq9.jpg">.  (6)
最後に、拡散係数 (D)、分子の明るさの値 (ε) と sFCCS データ (rel.cc.) の相対的な相互相関は次のように計算されます。
<img alt="Equation 7" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq10.jpg">、(7)
<img alt="Equation 8" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq11.jpg">、(8)
<img alt="Equation 9" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq12.jpg">、(9)
相互相関関数の振幅Gクロス(0) と<img alt="Equation 14" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq14.jpg">は、 i番目のチャネル チャネルの自己相関関数の振幅。
この定義の相対の相関、すなわち方程式 9 で意味の代わりにmaxを使用して、異なる濃度で現在 2 つの蛋白質種の複合体の最大数が制限されている考慮、種は低い数値で提示します。
相関数と明るさは、瞬間の分析に基づいてサンプルでは、固定位置で時間をかけて得た画像のスタックの各ピクセルの蛍光強度通常 100 〜 200 から成るフレーム、スペクトルの 2 つのチャンネル (g = グリーン チャンネル、r = 赤のチャネル)。時間平均<img alt="Image 1" src="/files/ftp_upload/58582/58582img1.jpg">私<img alt="Image 2" src="/files/ftp_upload/58582/58582img2.jpg">私と分散<img alt="Equation 16" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq16.jpg">、各ピクセルのスペクトル チャネルで分子明るさ εiと番号の私n の計算 (私= g、 r)18。
<img alt="Equation 10" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq20.jpg">、(10)
<img alt="Equation 11" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq21.jpg">.(11)
真フォトンカウンティング検出器の理想的な場合に与えられた方程式が適用されることに注意してくださいすることが重要です。アナログ検出システムでは、次の方程式は19,20を適用されます。
<img alt="Equation 12" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq22.jpg">、(12)
<img alt="Equation 13" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq23.jpg">.  (13)
ここで、S は検出された光子と記録されたデジタル カウントの変換係数<img alt="Equation 24" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq24.jpg">読み出しノイズは、オフセット検出器強度オフセットを参照します。一般に、これらの量は、安定した照明19、例えば、反射金属表面または乾燥色素溶液の強度の関数として検出器分散を測定に基づいて、任意の検出器型の校正する必要があります。オフセットは、励起光のないサンプルの計数率を測定することによって決定できます。検出器関連する差異の線形回帰を実行することによって<img alt="Equation 25" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq25.jpg">対強度 (私) プロット、S と<img alt="Equation 24" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq24.jpg">19決定をすることができます。
<img alt="Equation 14" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq27.jpg">.  (14)
最後に、相互相関明るさは、各ピクセルの計算し、21として一般的に定義されます。
<img alt="Equation 15" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq28.jpg">、(15)
どこ<img alt="Equation 29" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq29.jpg">クロス分散です<img alt="Equation 30" src="/files/ftp_upload/58582/58582eq30.jpg">。
長寿命の変動をフィルターするためにすべての ccN &amp; B 計算次のフィルタ リングされていない、独立して各ピクセル22有蓋車されます。簡単に言えば、 niε は私(私= g、 r) Bccは 8-15 フレームなどのセグメントをスライド式で計算されます。こうして得られた値を平均して最終的なピクセルの数と明るさの値を取得できます。
化学量論の分析 細胞間の接触でタンパク質複合体の化学量論組成を推定するために、sFCCS や ccN &amp; B データの各スペクトル チャネルで分子の明るさを別々 に分析できます。SFCCS、各チャネルの測定あたり 1 つの輝度値を取得します。CcN &amp; B は、細胞間の接触に対応するすべてのピクセルの輝度のヒストグラムが得られるし、測定の代表的な明るさとして平均 (または中央値) の値を使用できます。単量体の参照について同じ分析を実行する直接検出された蛋白質複合体の平均のオリゴマーの状態を取得するすべての明るさの値を正規化することができます。この時点で、オリゴマーの状態を過小評価可能性があります非蛍光性 FPs の存在を修正することが重要です。これは通常 1 色 sFCS または番号を使用して参照のホモ二量体蛋白質23,24の明るさと明るさ (N &amp; B) を測定することによって実行されます。

<table><tbody><tr><td>DMEM 増殖培地</td><td>PAN-Biotech</td><td>P04-01548</td><td></td></tr><tr><td>DPBS w/o: Ca2+ and Mg2+</td><td>PAN-Biotech</td><td>P04-36500</td><td></td></tr><tr><td>DPBS w: Ca2+ and Mg2+</td><td>PAN-Biotech</td><td>P04-35500</td><td></td></tr><tr><td>トリプシン EDTA</td><td>PAN-Biotech</td><td>P10-023100</td><td></td></tr><tr><td>ターボフェクト トランスフェクション試薬</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>R0531</td><td></td></tr><tr><td>HEK293T細胞</td><td>DSMZ</td><td>ACC 635</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 NHS Ester</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A20000</td><td></td></tr><tr><td>Rhodamine B</td><td>Sigma-Alderich</td><td>83689-1G</td><td></td></tr><tr><td>Plasmid DNA</td><td>Addgene</td><td>NA</td><td>参考文献12(Dunsing et. al., MBoC 2017)を参照、すべてのプラスミドの詳細な説明については、</td></tr><tr><td>6ウェルプレート</td><td>Starlab</td><td>CC7672-7506</td><td></td></tr><tr><td>35-mm ガラス底皿</td><td>CellVis</td><td>D35-14-1.5-N</td><td></td></tr><tr><td>ツァイス LSM780 共焦点</td><td>カールツァイス</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>MATLAB ソフトウェアパッケージ</td><td>MathWorks</td><td>&nbsp;2015b&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>ノイバウアー細胞計数室</td><td>Marienfeld</td><td>640110</td><td></td></tr></tbody></table>

細胞間の接触でタンパク質間相互作用の分析計蛍光の変動

A Fluorescence Fluctuation Spectroscopy Assay of Protein-Protein Interactions at Cell-Cell Contacts

さまざまな生物学的プロセスには、通常隣接セル界面における相互作用するタンパク質を介した細胞間相互作用が含まれます。関心のだけほとんど試金は、具体的には徹底的な細胞に直接そのような相互作用が可能 します。細胞間の接触で、隣接する細胞の表面に発現するタンパク質の結合を測定するアッセイを紹介します。この試金は 2 つの手順で構成されています: 共焦点レーザー走査型顕微鏡を用いた細胞間の接触で蛍光揺らぎ分光測定が続く異なる蛍光タンパク質を融合した興味の蛋白質を発現する細胞の混合します。我々 は細胞間でアミロイドの前駆物質のような蛋白質 1 (APLP1) の相互作用を測定することによって生物学的文脈でこのアッセイの可能性を実証します。(走査蛍光相互相関分光法、相関数と明るさ解析) 蛍光ベースの技術と計測器の校正を使用してデータ集録の詳細なプロトコルを提供します。さらに、データ分析および識別して退色や細胞の動きのためのそれらなどの外部のスプリアス信号のバリエーションを修正する方法で重要な手順をについて説明します。
一般に、提示されたアッセイはホモ - または同一または異なる種類の細胞間に細胞間の接触、有性タンパク質間相互作用に適用され、商業共焦点レーザー走査型顕微鏡に実装することができます。重要な要件は、いくつかの分以上興味の蛋白質の拡散の動力学を調査するための十分なする必要がありますシステムの安定性です。

最初のテスト蛋白質蛋白質の相互作用アッセイのすなわちsFCCS/ccN &amp; B 測定 (図 1)、続いてスペクトルの異なる蛍光タンパク質を発現する細胞の混合で実行されるがタンパク質細胞細胞の接触 (すなわち、ネガティブ コントロール) で対話します。したがって、HEK 293 t 細胞における-パルミトイル-mEYFP (myr-ヤシ-mEYFP) または - mCardinal を表現する混合、sFCCS は細胞間接触 (図 2A) の間で行われました。理想的な場合、各チャネルの蛍光信号 PM でタンパク質の拡散運動の結果としての安定した平均の周り変動するなっておよび焦点のボリュームで蛋白質の数の統計情報の変化。対話しない蛋白質のため両方のチャネルに変動は互いから独立して、スペクトルの相関ゼロの周り変動にみられます。確かに、典型的な測定 (<strong class="xfi...

このプロトコルでは、直接細胞内の細胞接合における局在蛋白質すなわち細胞間相互作用を仲介する蛋白質間の相互作用を調査する変動蛍光分光法に基づくアプローチについて説明します。測定器の校正、データ集録および解析、修正可能なアーチファクトのソースを含む詳細なガイドラインを提供します。

A variety of biological processes involves cell-cell interactions, typically mediated by proteins that interact at the interface between neighboring ...

この方法は、どの受容体が細胞間接触の接着または認識を媒介するか、特定のリガンドがそれらの相互作用を引き起こすかどうかなど、細胞間相互作用分野の主要な質問を理解するのに役立ちます。この技術の主な利点は、細胞の固定または破壊を必要としない生細胞で直接そのような相互作用を調査することができるということです。この方法は、培養細胞間の相互作用を調べるのに使用されるが、それはまた、他のシステム単膜小胞または小さなモデル生物に適用することができる。一般に、この方法の初心者は、細胞の動きと遅い信号変動を注意深く検査することによって、数分間にわたって取得できるほど安定していることを確認する必要があります。まず、トランスフェクションの前日に6ウェルプレートの少なくとも4つのウェルに適切な数の細胞を播種する。10%FBSおよび1%L-グルタミンを添加したDMEM培地中の37°C5%の二酸化炭素で細胞を培養する。目的のタンパク質に対するトランスフェクトプラスミドの基本的な実験を行うために、緑色または黄色の蛍光タンパク質と赤色蛍光タンパク質を別々のウェルに融合させた。4時間後、成長培地を取り除き、洗浄中の細胞の剥離を防ぐために、ウェルエッジにPBSを落とすマグネシウムとカルシウムを添加したPBSの1ミリリットルでそれぞれを穏やかに洗います。その後、PBSを削除します。細胞の剥離を容易にするために各井戸に約50マイクロリットルのEDTA溶液を滴下する。摂氏37度で2分間インキュベートした後、ゆっくりと6ウェルプレートを横に振って細胞を取り外します。次に、各ウェルに950マイクロリットルの成長培地を加え、上下に数回ピペットして細胞を再中断し、すべての細胞をウェルボトムから取り外します。再懸濁後に大きな細胞集合体が存在しないかどうかを視覚的に確認して、セルが適切に再懸濁され、互いに切り離されていることを確認します。1つのウェルのセル溶液を対応するウェルに移します。上下に数回ピペットを入れ、やさしく混ぜます。その後、混合細胞を35ミリメートルのガラス底皿に種を入れ、播種した細胞を摂氏37度で5%の二酸化炭素で1日培養します。レーザー走査型共焦点顕微鏡ソフトウェアで、光路を設定します。スペクトルクロストークを回避するには、mEGFP または mEYFP と mCherry または mCardinal を順番に励起して検出する 2 つの別々のトラックを選択し、すべてのラインをトラック切り替え を選択します。検出には、両方のチャネルに適切なフィルタを使用します。混合細胞を含む皿をサンプルホルダーに置きます。温度の平衡を確保し、焦点ドリフトを減らすために10分待った後、位置指定メニューの透過光を使用して細胞に焦点を合わせます。互いに接触している赤と緑のセルのペアを検索します。次に、[切り抜き] ボタンを使用して、セル間接触に垂直なスキャン パスを選択します。ズームして 50 ~ 200 ナノメートルのピクセル サイズを達成し、[スキャン モードでライン] を選択します。フレームサイズを 128 x 1 ピクセルに設定します。スキャン速度を最大許容値に設定します。次に、サイクルを 100,000 から 500,000 に設定します。この後、適切なレーザーパワーを選択します。検出器をフォトンカウントモードに設定します。[実験の開始] を押して、取得を開始します。生データ ファイルを生データ形式で RGB TIF イメージにエクスポートします。このファイルには、画像のGとRというチャンネルに緑色と赤のチャンネルデータをそれぞれ含むキモグラフが含まれます。次に、適切な解析ソフトウェアを使用して TIF ファイルをインポートし、分析を実行します。500 ~ 1000 行のブロックでセグメント単位の時間平均を実行して、ラインを整列します。各ブロックの膜位置を決定します。次に、すべてのブロックを同じ横位置にシフトします。時間軸に沿ってすべての直線を合計し、ガウス関数を使用して平均強度プロファイルに適合します。膜位置のプラスマイナス2.5シグマ内のすべてのピクセルとして膜に対応するピクセルを定義し、各行のこれらのピクセルの強度を合計して各時点の蛍光シグナル値を取得します。写真の漂白が観察される場合は、二重指数関数を有する膜蛍光時系列を適合させ、適切な補正式を適用することにより、漂白補正を適用する。適切な方程式に従って、自動相関関数と相互相関関数を計算します。分析の信頼性を向上させ、アーティファクトを回避するために、合計測定の10〜20等分のセグメントの計算を実行します。各セグメントの蛍光時系列と相関関数を検査し、明らかに歪んだセグメントを除去します。最後に、歪みのないセグメントをすべて平均します。データを分析する際は、各セグメントの強度時系列と相関関数を慎重に検査して、膜周辺の細胞内小胞による歪みを避けます。ミリストル化パルミトレート-mEYFPまたはmCardinalを発現するHEK 293T細胞の強度画像をここに示す。ゼロに近い相対相互相関が観察され、自己相関関数は、血漿膜中のミリストリ化パルミトレートmEYFPおよびmCardinalの拡散に対して10〜20ミリ秒の特徴的な減衰時間を示す。膜固定ヘテロダイマーを発現するHEK293T細胞のsFCCS測定の相互相関関数は、有糸球体-mCardinal-mEYFPは正の振幅を有し、自己相関関数と同様の減衰時間を示した。APLP1-mEYFPとAPLP1-mCardinal発現細胞の間の細胞間接触に対するsFCCS測定は、0.45の正の相対相互相関をもたらした。細胞と細胞の接触でのAPLP1クラスタ全体の測定値から得られたsFCCS相関関数は、大きなラグタイムにおける振動の大きな減衰時間から明らかなように、ダイナミクスを大幅に減少させた。亜鉛イオン添加の際、相対相互相関は平均値0.8に増加した。さらに、分子の明るさは、小さなオリゴマーから各細胞上の10〜50個のモノマーからなるより大きなマルチマーに有意に増加した。一時的な不安定性は負の値を持つ相互相関関数、または高い偽陽性の相互相関をもたらす可能性があります。対応する相関関数は、通常、大部分のセグメントの相関関数とは大きく異なります。sFCCS相互相関数と明るさを補完するアプローチとして、タンパク質とタンパク質の相互作用を検出するために使用することができます。この手順を試みる間、トランスフェクトされた細胞の混合は重要なステップであることを覚えておくことが重要です。細胞を穏やかに混合し、トランスフェクション効率を最適化して、接触する赤と緑の細胞を見つける機会を増やします。その開発後、この技術は、免疫学的シナプスにおけるシグナル伝達分子の相互作用を探求するために免疫学の分野の研究者によって使用されています。

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Research

JoVE Journal

Biochemistry

生物化学

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