Name: 希少コドンリッチマーカーを用いてアミノ酸過剰生産者を同定 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-06-24T13:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 41 s
Description: 学ぶ希少コドンリッチマーカーを用いたアミノ酸過剰生産者の同定法。従来の毒性アナログ法に代わる高感度・高精度・高スループットな手法で、様々な微生物への応用が可能です。

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この研究は、中国国家自然科学財団(助成金第21676026号)、中国国家鍵研究開発プログラム(助成金第2017YFD0201400)、中国ポストドクター科学財団(助成第2017M620643号)が共同で支援した。UCLA進歩研究所(蘇州)の作品は、江蘇省と蘇州工業団地からの内部助成金によって支えられました。

1. 希少コドン豊富なマーカー遺伝子を発現するプラスミドの構築
<ol><li>標的アミノ酸に対する一般的なコドンの適切な数を含むマーカー遺伝子を選択します。 注:L-ロイシンの場合、29個のロイシンコドンを含むカナマイシン耐性遺伝子カンRは、そのうち27個が一般的なコドンであり、選択システム13の構築に使用される。19個のロイシンコドンのうち17個の一般的なコドンを含むgfp遺伝子、または14個のロイシン共通コドンを収容する紫色のタンパク質コード遺伝子プランサーパープル(ppg)がスクリーニングシステムに使用されます(補足表1)).</li>
	<li>マーカー遺伝子の一般的なコドンを同義の希少コドンに置き換えます。L-ロイシンの場合は、カンR、gfp、またはppgのコドンを希少なコドンCTAに置き換え、カンR-RC、gfp-RC、またはppg-RCを生成し、それぞれ13 ( 補足表1) 注:マーカー遺伝子の希少なコドンの頻度は、選択またはスクリーニングシステムのストリンジェンシーに影響を与えます。一般に、希少なコドンの数を増やすと、選択またはスクリーニングシステムのストリンジェンシーが増加します。適切な選択またはスクリーニング強度を達成するために、希少なコドンの異なる数を収容する一連のマーカー遺伝子を設計し、その効果を比較します。</li>
	<li>遺伝子合成のためのGeneDesign 14(http://54.235.254.95/gd/)などのツールを使用して、希少なコドン豊富なマーカー遺伝子のビルディングブロックを生成します。あるいは、市販の遺伝子合成サービスからマーカー遺伝子を注文する。<ol>
<li>[GeneDesign] ページで、[ビルディング ブロックの設計(一定の長さの重なり)]を選択します。</li>
		<li>シーケンスボックスに希少なコドンが豊富なマーカー遺伝子の配列を貼り付けます。</li>
		<li>アセンブリオリゴ間のオーバーラップ長を定義します。デフォルトの40 bpは、ほとんどのシーケンスで正常に動作することを念頭に置いてください。 注: 他のパラメータの設定の詳細については、オンラインマニュアルを参照してください。</li>
		<li>[デザイン]ビルディングブロックボタンをクリックし、ページに記載されているオリゴヌクレオチドを並べ替えます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)ベースの正確な合成15により希少コドン修飾遺伝子を合成する。</li>
	<li>希少なコドンが豊富なカンR-RCをベクトルpET-28a、gfp-RCをpSB1C3に、ppg-RCをCPB-37-441 16にリゲートする。 注: pET-28a および pSB1C3 プラスミド マップは、SnapGene オンラインプラスミド データベース (補足表1) で入手できます。CPB-37-441プラスミドマップはATUM発色タンパク質ウェブサイトで入手できます。<ol>
<li>氷上で、組み立てミックスのモル比1:1~7.5 μLのベクトルとマーカーフラグメントを合計体積10μLに加えます(材料の表を参照)。サンプルを50°Cで1時間インキュベートします。</li>
		<li>組立製品の5μLを50μLの有能な細胞(材料の表を参照)に30sの42 °Cで変換します。</li>
		<li>SOC(カタボライト抑圧付き超最適なスープ)培地で1時間37°Cの培地で細胞を回収し、LB(リソジェニーブロス)寒天培地にプレートし、一晩37°Cでインキュベートします。</li>
		<li>コロニーをLB培地に接種し、37°Cで8時間インキュベートします。</li>
		<li>好ましい市販キットを用いてプラスミドを単離する。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 選択条件の最適化
<ol><li>有能な細胞17に変異形成に使用される親株を作る。</li>
	<li>野生型カンRを運ぶプラスミドの1μLを有する有能な細胞の50 μLを変換し、希少なすべてのロイシンコドンを置き換えたすべてのロイシンコドンを含むプラスミドを有するプラスミドで別の有能な細胞のセットを変換するコドンCTA。</li>
	<li>SOC培地の950 μLを加え、1時間37°Cで250rpmでシェーカーでサンプルをインキュベートします。</li>
	<li>50μg·mL-1カナマイシンを含むLB寒天培地上の細胞培養のプレート100μLを、コロニーが現れるまで約8時間37°Cでインキュベートする。</li>
	<li>野生型カンRとロイシン希少コドンリッチカンR-RC29を入れたコロニーを選び、50μg mL-1カナマイシンを含む5倍希釈LB培地(0.2x LB)の5mLを接種します。37°Cで250 rpmでシェーカーでサンプルをインキュベートします。 注: メディアは、選択システムにとって非常に重要です。希少なコドン修飾誘導体からではなく、野生型遺伝子からの抗生物質耐性タンパク質の発現を可能にするのに十分な炭素と窒素を含む必要があります。この場合、1x LB培地中のL-ロイシン濃度は高すぎて、希少コドンが豊富なカンRからのタンパク質発現を完全に阻害する。したがって、5などの希釈因子を用いた希釈LB培地は、野生型と希少コドンが豊富な遺伝子からタンパク質発現の明確な違いを生成するために使用される。</li>
	<li>各細胞培養物の200 μLを、定義された時点(例えば、8時間、16時間、24時間)で三分線状の96ウェルプレートに移す。プレートリーダーを使用してOD 600(600nmの光学密度)を測定します。 注:野生型マーカー遺伝子を保有する株のOD600と比較して希少コドンが豊富なマーカー遺伝子を持つ株に対して細胞OD600の減少が検出できない場合は、マーカー遺伝子またはより希釈された媒体を使用する。</li>
	<li>アミノ酸供給アッセイを行い、希少コドン豊富なマーカー遺伝子(例えば、カンR−RC29)の発現が標的アミノ酸の濃度を増加させることによって回復できるかどうかを試験する。 注:L-ロイシンオーバープロデューサーの選択のために、L-ロイシンは供給に使用されます。<ol>
<li>カンR-RC29マーカー遺伝子を1gの供給の有無にかかわらず0.2x LB(50 μg·mL-1カナマイシンを含む)の5mLに接種する株を接種する·L-1 L-ロイシンコントロールとして野生型カンRを抱える株で0.2x LBの別の5 mLを接種します。37°Cで250 rpmでシェーカーでサンプルをインキュベートします。</li>
		<li>定義された時点(例えば、15時間、17時間、19時間、22時間)で各培養のOD600を測定します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 審査条件の最適化
<ol><li>野生型gfpまたは野生型ppgを運ぶプラスミドの1 μL(〜50 ng·μL-1)で変異形成に使用される親株の50 μLを変換する。また、マーカー遺伝子の希少コドン豊富な誘導体で親株を変換します。</li>
	<li>SOC培地の950 μLを加え、1時間37°Cで250rpmでシェーカーでサンプルをインキュベートします。</li>
	<li>適切な抗生物質を含むLB寒天培地上の細胞培養物のプレート100μL(cm Rマーカーを運ぶgfpプラスミド用25μg·mL-1クロラムフェニコール、またはppgに対して50μg·mL-1カナマイシン) カンRマーカーを運ぶプラスミド)と37°Cで一晩インキュベートする。</li>
	<li>野生型のgfpまたはppgを保有するコロニーと、対応する希少コドンリッチ誘導体を持つコロニーを1つ選び、適切に希釈されたLB培地の5mLに個別に移します。37°Cで250 rpmでシェーカーでサンプルをインキュベートします。 注:ロイシン希少コドンリッチgfp-RCまたはppg-RCを収容する大腸菌株の場合、希釈されていないLB培地(1x LB)を使用して、野生型および希少コドンリッチマーカーの表現に大きな違いを生み出すことができます。遺伝子。また、誘導性プロモーターは、スクリーニングマーカー遺伝子の発現を駆動するために使用される。細胞がより良い判分を達成するために指数相に入ったときに誘導を開始します。</li>
	<li>蛍光マーカーの場合、各細胞培養物の200 μLを、定義された時点(例えば、2時間、4時間、6時間)で三分線状の96ウェル透明底部の黒板に移します。OD600および蛍光を測定し、蛍光強度(OD600に対する蛍光の比率)を計算する。発色マーカーの場合、細胞培養物の色の発達を測定する。 注:野生型gfpを保有する株と比較してgfp-RCを保有する株に対して低い蛍光強度が検出できない場合、または紫色のタンパク質を発現する細胞に対して明るい色が検出されない場合野生型遺伝子よりもppg-RCから、マーカー遺伝子上の希少なコドンの数を増やすか、より希釈された培地を使用してみてください。</li>
	<li>給餌アッセイを実行します(手順 2.7.1 および 2.7.2 を参照)。定義された時点(例えば、12時間、18時間、24時間)における蛍光強度または色の発達を測定する。</li>
</ol>4. アミノ酸過剰生産者の同定
<ol><li>変異体の培養物の100 μLをLB培地の5mL(2%v/v)に接種し、OD 600の値が0.4に達するまで37°Cで250rpmでシェーカーでインキュベートします。</li>
	<li>有能な細胞に変異体を作る17.</li>
	<li>プラスミドの1μLを有する変異細胞の50μLを形質転換する(〜50ng·μL-1)選択マーカーkan R-RC29またはスクリーニングマーカーgfp-RCまたはppg-RCを運ぶ。SOC培地の950 μLを追加し、1時間37°Cシェーカーでサンプルを回転させます。</li>
	<li>アミノ酸オーバープロデューサーを選択します。.<ol>
<li>5分間4,000xgで細胞培養を遠心分離し、上清を廃棄し、50μg·mL-1カナマイシンを含む0.2x LB培地の5 mLを添加する。一晩37°Cシェーカーでサンプルをインキュベートします。</li>
		<li>一晩培養をプレート(例えば、100μL、培養の細胞密度に依存)を50μg·mL-1カナマイシンを含む0.2x LB寒天培地上に、12時間37°Cでインキュベートする。 注:開発されたコロニーは、標的アミノ酸過剰生産者および、この場合、L-ロイシン過剰生産者の候補である。</li>
	</ol></li>
	<li>アミノ酸オーバープロデューサーをスクリーニングします。<ol>
<li>適切な数の細胞(例えば、100 μL)を、適切な抗生物質を含むLB寒天培地(25 μg·mL-1クロランフェニコール)にスクリーニングマーカーを収容し、gfp-RCおよび50 μg mLをスクリーニングする。-1 ppg-RC)でスクリーニングし、37°Cで8時間インキュベートする。</li>
		<li>適切な抗生物質を含むLB培地を、プレートから各単一コロニーで接種する(ステップ4.5.1参照)。37°Cで250 rpmでシェーカーでサンプルをインキュベートします。</li>
		<li>OD600と蛍光を測定し、gfp-RCを使用する場合の蛍光強度を計算します。ppg-RCを使用する場合の細胞培養の色の発達を測定します。なお、親株よりも高い蛍光強度または深い色を示す株は、候補アミノ酸過剰生産者および、この場合、L-ロイシン過剰生産者である。 注:蛍光活性化細胞選別は、希少コドンが豊富な蛍光タンパク質遺伝子をスクリーニングに使用する場合、単細胞高生成物の同定にも適しています。</li>
	</ol></li>
	<li>候補株のアミノ酸の産物性を確認する。<ol>
<li>候補株のそれぞれでLB培地の5 mLを接種し、細胞を37°Cで250rpmでシェーカーで一晩成長させる。</li>
		<li>細胞培養の1mLから4,000 x gで2分間遠心分離により細胞を収穫し、上清を捨て、滅菌水の1mLでペレットを再懸濁する。</li>
		<li>細胞懸濁液の200μLを含むM9培地の20mLを接種し、250 mLシェーカーで250mLシェーカーで250°C、24時間24時間インキュベートする。</li>
		<li>培養培地の遠心分離機1 mLを4,000 x gで5分間5分間、上清の200μLをきれいな1.5mLチューブに移す。0.01、0.05、0.1、0.5、および1 gのL-ロイシン溶液(HPLC(高性能液体クロマトグラフィー)グレード)を調製する標準としてL-1。</li>
		<li>上清および標準に1mMトリエチルアミンの100 μLと1Mフェニルイソチオシアネートの100 μLを加え、それらを穏やかに混合し、1h18の室温でインキュベートする。 注意: トリエチルアミンとフェニルイソチオシアネートは、重度の皮膚火傷や眼の損傷を引き起こす可能性があり、吸入した場合に有害です.手袋とマスクを着用し、可能であれば、ヒュームフードでこのステップを実行します。</li>
		<li>同じチューブに400 μLのn-ヘキサンを加え、10sのために渦を塗り、0.2μmのポリテトラフルオロエチレン膜を通してアミノ酸誘導体を含む下相を濾過する。 注意: n-ヘキサンは皮膚刺激を引き起こす可能性があります。手袋と防護服を着用してください。皮膚に触れたら、たっぷりの水で皮をすいでください。</li>
		<li>0.1Mアセテート(pH 6.5)とアセトニトリルを99.3:0.7の体積比で混合して移動相Aを調作する。移動相Bとしてアセトニトリル(80%v/v)を調製し、0.2μmポリテトラフルオロエチレン膜を通してすべての移動相を濾過します。 注意:アセトニトリルは吸入すると有害であり、皮膚や目の炎症を引き起こす可能性があります。手袋と防護服を着用し、ヒュームフードでこのステップを実行します。</li>
		<li>表1の溶出プログラムに従ってC18カラムを搭載した超HPLC上でサンプルの1 μLを実行し、流量は0.42 mL·min-1、カラム温度は40°Cです。ダイオードアレイ検出器で254nmの標的アミノ酸を検出し、ピーク領域を標準曲線にマッピングして濃度を計算します。</li>
	</ol></li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>時間 (分)</td>
			<td>モバイル フェーズ A (%)</td>
			<td>モバイル フェーズ B (%)</td>
		</tr>
<tr>
<td>0</td>
			<td>98歳</td>
			<td>2</td>
		</tr>
<tr>
<td>3.5年</td>
			<td>70歳</td>
			<td>30歳</td>
		</tr>
<tr>
<td>7</td>
			<td>43歳</td>
			<td>57歳</td>
		</tr>
<tr>
<td>7.1年</td>
			<td>0</td>
			<td>100人</td>
		</tr>
<tr>
<td>11歳</td>
			<td>98歳</td>
			<td>2</td>
		</tr>
</tbody></table>表1:アミノ酸の定量のための溶出プログラム。

<ol><li>Tatsumi, N., Inui, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTatsumi%2C+N+%22Corynebacterium+glutamicum%3A+biology+and+biotechnology%22">Corynebacterium glutamicum: biology and biotechnology</a>. , Springer-Verlag. Berlin and Heidelberg. (2012).</li>
<li>Tonouchi, N., Ito, H. Present global situation of amino acids in industry. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTonouchi%2C+N+%22Amino+Acid+Fermentation%22">Amino Acid Fermentation</a>. Yokota, A., Ikeda, M. , Springer. 3-14 (2017).</li>
<li>Gusyatiner, M., Lunts, M., Kozlov, Y., Ivanovskaya, L., Voroshilova, E. DNA coding for mutant isopropylmalate synthase, L-leucine-producing microorganism and method for producing L-leucine. , US6403342B1 (2005).</li>
<li>Park, J. H., Lee, S. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Towards+systems+metabolic+engineering+of+microorganisms+for+amino+acid+production%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Towards systems metabolic engineering of microorganisms for amino acid production.</a> Current Opinion in Biotechnology. 19 (5), 454-460 (2008).</li>
<li>Norris, R., Lea, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+amino+acid+analogues+in+biological+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Progress%22%5BJournal%5D)">The use of amino acid analogues in biological studies.</a> Science Progress. , 65-85 (1976).</li>
<li>Park, J. H., Lee, S. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fermentative+production+of+branched+chain+amino+acids%3A+a+focus+on+metabolic+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+Microbiology+and+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Fermentative production of branched chain amino acids: a focus on metabolic engineering.</a> Applied Microbiology and Biotechnology. 85 (3), 491-506 (2010).</li>
<li>Bach, T. M., Takagi, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Properties%2C+metabolisms%2C+and+applications+of+L-proline+analogues%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+Microbiology+and+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Properties, metabolisms, and applications of L-proline analogues.</a> Applied Microbiology and Biotechnology. 97 (15), 6623-6634 (2013).</li>
<li>Crick, F. H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+genetic+code%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">On the genetic code.</a> Science. 139 (3554), 461-464 (1963).</li>
<li>Plotkin, J. B., Kudla, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synonymous+but+not+the+same%3A+the+causes+and+consequences+of+codon+bias%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Genetics%22%5BJournal%5D)">Synonymous but not the same: the causes and consequences of codon bias.</a> Nature Reviews Genetics. 12 (1), 32-42 (2011).</li>
<li>Dittmar, K. A., Sørensen, M. A., Elf, J., Ehrenberg, M., Pan, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+charging+of+tRNA+isoacceptors+induced+by+amino%E2%80%90acid+starvation%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+Reports%22%5BJournal%5D)">Selective charging of tRNA isoacceptors induced by amino‐acid starvation.</a> EMBO Reports. 6 (2), 151-157 (2005).</li>
<li>Elf, J., Nilsson, D., Tenson, T., Ehrenberg, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+charging+of+tRNA+isoacceptors+explains+patterns+of+codon+usage%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Selective charging of tRNA isoacceptors explains patterns of codon usage.</a> Science. 300 (5626), 1718-1722 (2003).</li>
<li>Sørensen, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Charging+levels+of+four+tRNA+species+in+Escherichia+coli+Rel%2B+and+Rel%E2%88%92+strains+during+amino+acid+starvation%3A+a+simple+model+for+the+effect+of+ppGpp+on+translational+accuracy%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Charging levels of four tRNA species in Escherichia coli Rel+ and Rel− strains during amino acid starvation: a simple model for the effect of ppGpp on translational accuracy.</a> Journal of Molecular Biology. 307 (3), 785-798 (2001).</li>
<li>Zheng, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Utilization+of+rare+codon-rich+markers+for+screening+amino+acid+overproducers%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Utilization of rare codon-rich markers for screening amino acid overproducers.</a> Nature Communications. 9 (1), 3616(2018).</li>
<li>Richardson, S. M., Wheelan, S. J., Yarrington, R. M., Boeke, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GeneDesign%3A+rapid%2C+automated+design+of+multikilobase+synthetic+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Research%22%5BJournal%5D)">GeneDesign: rapid, automated design of multikilobase synthetic genes.</a> Genome Research. 16 (4), 550-556 (2006).</li>
<li>Xiong, A. -S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PCR-based+accurate+synthesis+of+long+DNA+sequences%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">PCR-based accurate synthesis of long DNA sequences.</a> Nature Protocols. 1 (2), 791-797 (2006).</li>
<li>Gibson, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzymatic+assembly+of+DNA+molecules+up+to+several+hundred+kilobases%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases.</a> Nature Methods. 6 (5), 343-345 (2009).</li>
<li>Green, M. R., Sambrook, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGreen%2C+MR+%22Molecular+cloning%3A+a+laboratory+manual%22">Molecular cloning: a laboratory manual</a>. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. (2012).</li>
<li>Cohen, S. A., Bidlingmeyer, B. A., Tarvin, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PITC+derivatives+in+amino+acid+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">PITC derivatives in amino acid analysis.</a> Nature. 320 (6064), 769-770 (1986).</li>
<li>Zhou, J., Liu, W. J., Peng, S. W., Sun, X. Y., Frazer, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Papillomavirus+capsid+protein+expression+level+depends+on+the+match+between+codon+usage+and+tRNA+availability%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virology%22%5BJournal%5D)">Papillomavirus capsid protein expression level depends on the match between codon usage and tRNA availability.</a> Journal of Virology. 73 (6), 4972-4982 (1999).</li>
<li>Gregg, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rational+optimization+of+tolC+as+a+powerful+dual+selectable+marker+for+genome+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">Rational optimization of tolC as a powerful dual selectable marker for genome engineering.</a> Nucleic Acids Research. 42 (7), 4779-4790 (2014).</li>
<li>Pelicic, V., Reyrat, J. M., Gicquel, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+the+Bacillus+subtilis+sacB+gene+confers+sucrose+sensitivity+on+mycobacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Bacteriology%22%5BJournal%5D)">Expression of the Bacillus subtilis sacB gene confers sucrose sensitivity on mycobacteria.</a> Journal of Bacteriology. 178 (4), 1197-1199 (1996).</li>
<li>Avcilar-Kucukgoze, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Discharging+tRNAs%3A+a+tug+of+war+between+translation+and+detoxification+in+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">Discharging tRNAs: a tug of war between translation and detoxification in Escherichia coli.</a> Nucleic Acids Research. 44 (17), 8324-8334 (2016).</li>
<li>Mundhada, H., Schneider, K., Christensen, H. B., Nielsen, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+of+high+yield+production+of+L-serine+in+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+and+Bioengineering%22%5BJournal%5D)">Engineering of high yield production of L-serine in Escherichia coli.</a> Biotechnology and Bioengineering. 113 (4), 807-816 (2016).</li>
<li>Makosky, P. C., Dahlberg, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spectinomycin+resistance+at+site+1192+in+16S+ribosomal+RNA+of+E.+coli%3A+an+analysis+of+three+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimie%22%5BJournal%5D)">Spectinomycin resistance at site 1192 in 16S ribosomal RNA of E. coli: an analysis of three mutants.</a> Biochimie. 69 (8), 885-889 (1987).</li>
<li>Feng, L., Tumbula-Hansen, D., Toogood, H., Söll, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expanding+tRNA+recognition+of+a+tRNA+synthetase+by+a+single+amino+acid+change%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Expanding tRNA recognition of a tRNA synthetase by a single amino acid change.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (10), 5676-5681 (2003).</li>
<li>Naganuma, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+selective+tRNA+aminoacylation+mechanism+based+on+a+single+G%E2%80%A2+U+pair%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The selective tRNA aminoacylation mechanism based on a single G• U pair.</a> Nature. 510 (7506), 507(2014).</li>
<li>Hoesl, M. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+evolution+of+a+bacterial+proteome%5BTitle%5D)+AND+%22Angewandte+Chemie+International+Edition%22%5BJournal%5D)">Chemical evolution of a bacterial proteome.</a> Angewandte Chemie International Edition. 54 (34), 10030-10034 (2015).</li>
<li>Hershberg, R., Petrov, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selection+on+codon+bias%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Genetics%22%5BJournal%5D)">Selection on codon bias.</a> Annual Review of Genetics. 42, 287-299 (2008).</li>
<li>Huo, Y. -X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conversion+of+proteins+into+biofuels+by+engineering+nitrogen+flux%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Conversion of proteins into biofuels by engineering nitrogen flux.</a> Nature Biotechnology. 29, 346(2011).</li>
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著者は何も開示していない。

マーカー遺伝子および選択またはスクリーニング媒体中の希少コドンの数は、希少コドン修飾マーカー遺伝子からのタンパク質発現を阻害するために重要である。野生型マーカー遺伝子とその誘導体からのタンパク質発現に有意な差が検出されない場合、希少なコドンの数を増やすか、または栄養制限培地を使用すると、その違いを増幅する可能性があります。しかしながら、阻害効果が強すぎると、対応するアミノ酸の余分な摂食によってもタンパク質発式が回復しない場合がある。この場合、マーカー遺伝子中の希少なコドンの数を減らしてストレスの一部を緩和する必要があります。選択またはスクリーニングのストリンジェンシーを微調整するもう 1 つの方法は、希少なコドンが豊富なマーカー遺伝子のコピー番号と発現レベルを調整することです。マーカー遺伝子のコピー数と発現レベルを減少させることは、通常、アミノ酸過剰生産者と初期株との間のより強い区別につながる。したがって、p15AやpSC101などの低コピー数複製起源を含むベクターと弱いプロモーターを使用すべきである。マーカー遺伝子が誘導性プロモーターによって駆動される場合、低誘導が推奨される。
...

アミノ酸の現在の生産は、発酵に大きく依存しています。しかし、ほとんどのアミノ酸産生株の力価および収量は、数十億ドルの価値がある世界的なアミノ酸市場の需要の高まりを下回っています1,2.アミノ酸産業のアップグレードには、高性能アミノ酸過剰生産者の獲得が重要です。
アミノ酸過剰生産者を同定する従来の戦略は、タンパク質合成におけるアミノ酸とその類似体との競争を利用する3,4.これらの類似体は、対応するアミノ酸を認識するtRNAを充電し、したがってペプチド鎖の伸びを阻害し、逮捕された増殖または細胞死5につながる。アナログストレスに抵抗する 1 つの方法は、細胞内アミノ酸の濃度を増加させます。.濃縮アミノ酸は、有限tRNAのアナログを上回り、機能性タンパク質の正しい合成を保証します。したがって、類似体を生き残る株は選択することができ、対応するアミノ酸の過剰生産者である可能性が高い。
L-ロイシン6などのアミノ酸の過剰生産者の選択に成功したが、アナログベースの戦略は深刻な欠点に苦しんでいる。主な懸念の1つは、変異形成の過程または自発的な突然変異によって生じたアナログ抵抗である。抵抗を持つ株は、アナログ5を遮断、エクスポート、または劣化することによって選択を逃れることができます。もう一つの懸念は、他の細胞プロセス7にアナログの有毒な副作用です。その結果、アナログ選択を生き残る株はアミノ酸過剰生産者ではないかもしれませんが、所望の過剰生産者は負の副作用のために誤って根絶される可能性があります。
ここでは、アミノ酸過剰生産者の正確かつ迅速な同定を達成するために、コドンバイアスの法則に基づく新しい戦略を提示する。ほとんどのアミノ酸は、宿主生物8、9によって異なって好まれる複数のヌクレオチドトリプレットによってコードされる。一部のコドンはコーディングシーケンスではほとんど使用されず、希少なコドンと呼ばれています。アミノ酸への彼らの翻訳は、対応するアミノ酸を運ぶ認知tRNAに依存しています.しかし、希少なコドンを認識するtRNAは、通常、一般的なコドン10、11のtRNAよりもはるかに低い存在量を持っています。その結果、これらの希少なtRNAは、他のアイソセプターとの競争で遊びのアミノ酸を捕捉する可能性が低く、希少コドンリッチ配列の翻訳は、アミノ酸の量が限られているときに減速し始めるか、あるいは終了する10.翻訳は、理論的には、対応するアミノ酸12の過剰産生または余分な供給に起因する同義の一般的なtRNAを充電した後にアミノ酸の余剰がある場合に復元することができる。希少コドンリッチ遺伝子が選択マーカーまたはスクリーニングマーカーをコードする場合、対応するフェノタイプを示す株を容易に同定することができ、標的アミノ酸の過剰生産者である可能性が高い。
上記の戦略は、アミノ酸過剰生産者の同定のための選択およびスクリーニングシステムを確立するために適用される。選択システムは、抗生物質耐性遺伝子(例えば、カンR)をマーカーとして使用し、スクリーニングシステムは蛍光をコードする遺伝子(例えば、緑色蛍光タンパク質[GFP])または発色性(例えば、PrancerPurple)タンパク質を使用する。両方のシステムのマーカー遺伝子は、標的アミノ酸の共通コドンの定義された数をその代名詞希少代替に置き換えることによって修飾される。希少コドンリッチマーカー遺伝子を保有する変異ライブラリー内の株は、適切な条件下で選択またはスクリーニングされ、標的アミノ酸の過剰生産者を容易に同定することができる。ワークフローは、希少コドンリッチマーカー遺伝子システムの構築から始まり、その後、労働条件の最適化、次にアミノ酸オーバープロデューサーの同定と検証が行われます。このアナログ非依存戦略は、タンパク質翻訳の教義に基づいており、アミノ酸オーバープロデューサーの正確かつ迅速な同定を可能にするために実質的に検証されています。理論的には、希少なコドンを含むアミノ酸やすべての微生物に直接使用することができます。全体として、希少コドンベースの戦略は、特定のアミノ酸に対する適切なアナログが利用できない場合、または高い偽陽性率が主な懸念事項である場合に、従来のアナログベースのアプローチに代わる効率的な代替手段として機能します。以下のプロトコルは、ロイシンレアコドンを使用して、エシェリヒア大腸菌L-ロイシンオーバープロデューサーを同定する際にこの戦略を実証します。

<table><tbody><tr><td>アセトニトリル</td><td>サーモ</td><td>51101</td><td></td></tr><tr><td>EasyPure HiPure プラスミド MiniPrep キット</td><td>トランスジェン</td><td>EM111-01</td><td></td></tr><tr><td>EasyPure クイックゲル抽出キット</td><td>トランスジェン</td><td>EG101-01</td><td></td></tr><tr><td>ギブソン アセンブリ マスター ミックス</td><td>NEB</td><td>E2611S</td><td></td></tr><tr><td>イソプロピル &beta;-D-1-チオガラクトピラノシド</td><td>Solarbio</td><td>I8070</td><td></td></tr><tr><td>L-ロイシン</td><td>Sigma</td><td>L8000</td><td></td></tr><tr><td>マイクロプレートリーダー</td><td>Biotek</td><td>Synergy 2</td><td></td></tr><tr><td>n-ヘキサン</td><td>Thermo</td><td>H3061</td><td></td></tr><tr><td>フェニルイソチオシアネート</td><td>Sigma</td><td>P1034</td><td></td></tr><tr><td>PrancerPurple CPB-37-441</td><td>ATUM</td><td>CPB-37-441</td><td></td></tr><tr><td>TransStar FastPfu Fly DNA ポリメラーゼ</td><td>Transgen</td><td>AP231-01</td><td></td></tr><tr><td>トリエチルアミン</td><td>Σ</td><td>T0886</td><td></td></tr><tr><td>超高速液体クロマトグラフィー</td><td>Agilent</td><td>1290 Infinity II</td><td></td></tr><tr><td>野生型 C. glutamicum</td><td>ATCC</td><td>13032</td><td></td></tr><tr><td>XL10-Gold 大腸菌 コンピテントセル</td><td>Agilent</td><td>200314</td><td></td></tr><tr><td>ZORBAX RRHD Eclipse Plus C18 カラム</td><td>Agilent</td><td>959759から902K</td><td></td></tr></tbody></table>

希少コドンリッチマーカーを用いてアミノ酸過剰生産者を同定

Identifying Amino Acid Overproducers Using Rare-Codon-Rich Markers

増え続けるアミノ酸市場を満たすためには、高性能な生産株が必要です。アミノ酸過剰生産者は、従来、アミノ酸とその類似体との競争を利用して同定される。しかし、このアナログベースの方法は精度が低く、特定のアミノ酸に対する適切なアナログは限られています。ここでは、希少コドンリッチマーカーを用いたアミノ酸オーバープロデューサーの正確で敏感でハイスループットのスクリーニングを可能にする代替戦略を紹介する。この戦略は、コードDNAにおける発生頻度に基づいてコドンが一般的または希少なものに分類されるタンパク質翻訳におけるコドン使用バイアスの現象に触発されています。希少コドンの翻訳は、飢餓下の歯車アミノ酸では完全に充電できない、対応する希少転写RNA(tRNA)に依存します。理論的には、同義の一般的な同化性等化剤を充電した後にアミノ酸の余剰がある場合、希少なtRNAを充電することができます。したがって、希少なコドンによって引き起こされる遅滞翻訳は、対応するアミノ酸の摂食または細胞内過剰産生によって回復することができる。この仮定の下で、標的アミノ酸の一般的なコドンを抗生物質耐性遺伝子または遺伝子の同義的希少な代替物に置き換えることによって、アミノ酸過剰生産者を同定するための選択またはスクリーニングシステムが確立される。蛍光または発色性タンパク質をコードする。我々は、タンパク質発現が希少なコドンの取り込みによって大きく妨げられ、タンパク質のレベルがアミノ酸濃度と正に相関することを示す。このシステムを使用して、複数のアミノ酸の過剰生産者は、変異ライブラリーから容易にスクリーニングすることができる。この希少コドンベースの戦略は、単一の改変遺伝子のみを必要とし、宿主は他の方法よりも選択を逃れる可能性が低い。これは、アミノ酸オーバープロデューサーを得るための代替アプローチを提供しています.

選択システムの場合、希少コドンが豊富な抗生物質耐性遺伝子を保有する菌株に対するOD600の急激な減少は、適当に培養した場合に野生型抗生物質耐性遺伝子を保有する株と比較して観察されるべきである。ミディアム(図1a)。同じ条件下で、抗生物質耐性遺伝子の希少なコドンの数が増加するにつれて、細胞OD600の減少がより明らかになる(図1a)。タンパク質発現に対する希少なコドンの阻害は、主に飢餓状態下で起こる。従って、LB培地が適切に希釈されていない場合、野生型遺伝子を保有する株と比較して希少コドンリッチマーカー遺伝子を保有する株に対して細胞OD600の有意な減少は認められない(図1b)。対応するアミノ酸の余分な摂食後、希少コドン豊富な抗生物質耐性遺伝子を保有する菌株に対するOD600が有意に増加し、野生型遺伝子を保有す...

本研究では、希少コドンリッチマーカーを用いてアミノ酸過剰生産者を同定する従来の有毒アナログベースの方法に代わる戦略を提示し、精度、感度、高スループットを同時に達成する。

To satisfy the ever-growing market for amino acids, high-performance production strains are needed. The amino acid overproducers are conventionally ...

この方法は、アミノ酸オーバープロデューサを得る際の従来のアナログベースアプローチに代わる効率的な代替手段を提供する。この手法は、精度、感度、高スループットを同時に提供することで、従来のアナログベースの手法と競合します。この方法は、アミノ酸の過剰生産強度の理解と希少なコドンの翻訳に新たな光を当て、理論的には、すべての微生物に適用することができます。このプロトコルは、主に従いやすいが、緊張糸の適切な選択を達成するために複数の試験を必要とする可能性がある基本的な分子実験操作に依存しています。この技術の視覚的なデモンストレーションは、選択のパフォーマンスとアミノ酸生産者を同定するスクリーニングシステムに直接感謝を提供する。この手順を開始するには、マーカーフラグメントの1〜1〜7ポイントのモル比で1〜1〜7ポイントのアセンブリミックスの5マイクロリットルを総体積10マイクロリットルに加えます。摂氏50度で1時間インキュベートします。アセンブリ製品の5マイクロリットルを摂氏42度で50マイクロリットルの構成部品セルに30秒間変換します。1時間の間、37°Cでカタボライト抑圧媒体で超最適なスープの細胞を回復します。その後、LB寒天培地にプレートし、摂氏37度で一晩インキュベートします。翌日、好ましい市販キットを使用してプラスミドを分離する。まず、野生型KanRを運ぶプラスミドの1マイクロリットルで有能な細胞の50マイクロリットルを変換します。希少なコドンCTAに置換されたすべてのロイシンコドンを用いて、KanR RC 29を含むプラスミドを有するコンピテントセルの第2セットを変換する。プレートと、テキストプロトコルで概説されているように細胞培養をインキュベートする。次に、希少コドンが豊富な誘導体に野生型選択マーカー遺伝子を収容するコロニーを、1ミリリットル当たり50マイクログラムの濃度でカナマイシンを含む5倍希釈LB培地の5ミリリットルに個別に移す。250 rpmで振りながら、37°Cのシェーカーでサンプルをインキュベートします。次に、各細胞培養物の200マイクロリットルを、定義された時点で3重に96ウェルプレートに移す。プレートリーダーを使用してOD600を測定します。カナマイシンを含む0.2 x LB培地の5ミリリットルの2組にKanR RC29マーカー遺伝子を含む染色を、L-ロイシンの供給の有無にかかわらず接種する。L-ロイシンを1リットル当たり1グラムの最終濃度に培地の1つに加えます。250 rpmで揺れ、37°Cのシェーカーでサンプルをインキュベートし、定義された時点で各培養物のOD600を測定します。まず、野生型GFPまたは野生型PPGを運ぶプラスミドの1マイクロリットルで突然変異誘発に使用される親株の50マイクロリットルを変換します。プレートおよびテキストプロトコルで概説されているように細胞培養物をインキュベートする。次に、適切に希釈したLB培地の5ミリリットルにコロニーを個別に移す。250 rpmで振ると、37°Cのシェーカーでサンプルをインキュベートします。蛍光マーカーの場合、細胞培養物200マイクロリットルを、定義された時点で3重に96の明確な底裏板に移します。蛍光でOD600を測定し、蛍光強度を計算します。発色マーカーの場合、細胞培養物の色の発達を測定する。前述のように給餌アッセイを行い、定義された時点で蛍光強度または色の発達を測定する。まず、選択マーカーKanR RC29、またはスクリーニングマーカーGFP RCまたはPPG RCを担うプラスミドの1マイクロリットルで変異細胞の50マイクロリットルを変換する。次に、5分間Gの4000倍の細胞培養物を遠心する。選択のために、上清を捨て、カナマイシンを含む0.2 x LB培地を5ミリリットル加えて、選択マーカーを運ぶ細胞に加えます。37°Cのシェーカーで一晩サンプルをインキュベートします。翌日、カナマイシンを含む0.2 x LB寒天培地に一晩培養し、摂氏37度で12時間培養します。スクリーニングのために、適切な数の細胞を適切な抗生物質を含むLB寒天培地上にスクリーニングマーカーを収容する。摂氏37度で8時間インキュベートします。この後、プレートから各単一コロニーに適切な抗生物質を含むLB培地を接種する。250 rpmで振りながら、37°Cのシェーカーでサンプルをインキュベートします。OD600と蛍光を測定し、GFP RCを使用する場合は蛍光強度を計算します。PPG RCを使用する場合、細胞培養物の色の発達を測定します。候補株のアミノ酸生産性を検証するには、候補株のそれぞれで5ミリリットルのLB培地を接種して種子培養を準備し、250rpmで摂氏37度でシェーカーで細胞を一晩成長させます。翌日、Gの4000倍で2分間遠心して細胞培養の1ミリリットルから細胞を収穫する。上清を捨て、1ミリリットルの滅菌水でパレットを再中断します。細胞懸濁液の200マイクロリットルで4パーセントのグルコースを含むM9培地の20ミリリットルを接種し、250rpmで250ミリリットルシェーカーでインキュベートし、24時間摂氏37度でインキュベートする。翌日、培養培地の1ミリリットルをGの4000倍で5分間遠心する。200マイクロリットルの上清をきれいな1.5ミリリットルの管に移す。ここに示す濃度でL-ロイシン標準溶液を調製する。ヒュームフードには、1ミリモルトリエチルアミン100マイクロリットルと1モルフェニルイソチオシアネート100マイクロリットルを上清と標準の両方に加えます。溶液を軽く混ぜ、室温で1時間インキュベートします。その後、同じチューブに400マイクロリットルのn-ヘキサンを加え、それを10秒間渦に入れます。下の相はアミノ酸誘導体を含み、HPLC分析に使用されます。0.2マイクロリットルのポリテトラフルオロエチレン膜を通して低相をフィルター処理します。この後、1マイクロリットルのサンプルを、1分あたり0.42ミリリットルの流量を有するC18カラムを装備した超HPLC上で、40°Cのカラム温度で実行します。ダイオードアレイ検出器を使用して、254ナノメートルで標的となるアミノ酸を検出し、標準曲線下のピーク領域をマッピングしてその濃度を計算します。本研究では、アミノ酸の過剰生産物を、希少なコドンを豊富に含むマーカーを使用して、精度、感度、高スループットを同時に達成することによって同定されています。選択システムでは、希少なコドンが豊富な抗生物質耐性遺伝子を含む株のOD600の急激な減少は、野生型を収容する株と比較して観察されるべきである。タンパク質表現に対する希少コドンの阻害は、主に飢えた状態下で行われます。対応するアミノ酸の余分な供給後、希少なコドンが豊富な抗生物質耐性遺伝子を収容する株用OD600が大幅に増加する。スクリーニングシステムの場合、蛍光細胞数の蛍光強度は、野生型遺伝子よりも希少なコドンリッチ遺伝子から蛍光タンパク質を発現する株に対して有意に低い。対応するアミノ酸の供給は、希少なコドンが豊富な遺伝子からタンパク質表現を回復する。紫色のタンパク質を使用する場合、希少なコドンが豊富なPPGから開発された色は、野生型遺伝子の色よりも軽い。希釈されていないLB培地は、細胞がペレット化されると、発現した紫色タンパク質中でL-ロイシンの供給なしに希少なコドンリッチPPGの遅い発現を可能にする。しかし、これは希少なコドンリッチPPGからの遺伝子発現がL-ロイシンの摂食によって増強されるという事実を隠さない。まれなコドンベースの戦略は、突然変異ライブラリーから標的アミノ酸の過剰生産者を同定することができ、これらの突然変異体は親株よりも高い量の標的アミノ酸を産生すべきである。この手順を試みる場合、野生型マーカーを含む細胞と希少コドンが豊富な誘導体を含む細胞間のODまたは色の明確な差別を達成するために、希少なコドン周波数を調整することが重要である。トランスクリプトーム解析とゲノムシーケンシングを、選択した株に適用して、アミノ酸産生に関連するメカニズムを調べることができました。この技術を用いて、アミノ酸の過剰生産者を効率的に同定することができ、その遺伝情報の分析は、アミノ酸過剰産生の背後にあるメカニズムに関する新しい洞察を提供するであろう。アミノ酸誘導体化は有害である可能性があります。.手袋と防護服を着用し、ヒュームフードでこれらの手順を実行することを確認してください。

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Research

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Biochemistry

生物化学

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希少コドンリッチマーカーを用いてアミノ酸過剰生産者を同定

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