Name: ウイルスから離れた高収率細胞外小胞製剤の精製 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-09-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 s
Description: 学ぶ 細胞外小胞の高収率精製法。PEG沈殿、密度勾配遠心、ナノ粒子捕獲を組み合わせ、ウイルス粒子からEVを分離し、従来の遠心法より回収率を向上させる。HIV、エボラ、ジカなどのウイルス研究に応用可能。

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カシャンチ研究室の全メンバー、特にグウェン・コックスに感謝します。この研究は、国立衛生研究所(NIH)助成金(AI078859、AI074410、AI127351-01、AI043894、NS099029)の支援を受けています。

1. 細胞外小胞(EV)の濾過と沈殿
<ol><li>感染またはトランスフェクトされた細胞(すなわち、細胞株および/または一次細胞)から培養上清を調製するために、適切な培養培地で37°Cおよび5%CO2で5日間の後期ログ細胞の約10mLを培養する(すなわち、10%の胎児ウシを用いたRPMIまたはDMEM)血清[FBS])。 注:すべての培養培地試薬はEVを含んでおらず、90分間100,000 x gで血清を事前に遠心分離して購入するか(材料の表を参照)、または社内で調製することができます。このプロトコルは、CEM、Jurkat、293T、U937(未感染ライン)、U1、J1.1、ACH2、HUT102、MT-2(HIV-1およびHTLV-1感染ライン)、複数のトランスフェクト細胞、および原発性骨髄およびT細胞(両方とも)を含む、いくつかの一般的に使用される細胞株で成功しています。感染し、未感染);ただし、このプロトコルは、特殊なメディアまたは培養条件を必要とするセルタイプを含め、あらゆるセルタイプに使用できます。セルの密度は、異なるセルタイプに合わせて最適化する必要がある場合があります。最高密度は、5日後の細胞死を最小限に抑え、使用することをお勧めします。</li>
	<li>ペレット細胞に5分間3,000 x gで培養を遠心分離し、ペレットを廃棄する。</li>
	<li>無菌0.22 μmフィルターを使用して培養上清を濾液を濾液を洗浄し、きれいなチューブに濾液を集める。</li>
	<li>濾過された上清にPEG沈殿試薬(1:1比)を同量に加えます。チューブを数回反転させ、均質な混合物を確保する。 注:渦を起さしないでください。</li>
	<li>一晩4°C(O/N)で混合物をインキュベートします。</li>
	<li>室温(RT)で30分間1,500xgの遠心混合物を、異種EVペレットを得た。 注:EV ペレットは、白またはオフホワイトの色で表示されます。</li>
	<li>EV枯渇培養上清を廃棄する。</li>
	<li>カルシウムとマグネシウム(PBS)を使用せずに1xリン酸緩衝生理食塩分の150~300μLでEVペレットを再停止し、氷の上に保ちます。</li>
</ol>2. 密度勾配の構築
<ol><li>図1Aに示すように、1x PBSでiodixanol密度勾配媒体を混合し、6~18%のiodixanolから1.2%ずつ増加する11種類の1mL密度画分を作成します。</li>
	<li>各チューブを混ぜ合わせるために渦。</li>
	<li>層密度分画は、図1Bに示すように、分数#18から始まり、分数#6で終わる、あらかじめ洗浄された乾燥したスイングバケット超遠心管チューブに分化する。 注:すべてのチューブは、10%の漂白スプレーを使用して消毒し、その後、脱イオン水で3倍を洗い流し、勾配画分をロードする前に無菌脱イオン水の最終洗浄を行う必要があります。</li>
	<li>超遠心管の層状勾配の上部に再懸濁EVペレット(300 μL)を追加します。</li>
	<li>4°Cで100,000 x gで90分間の超遠心分離機。</li>
	<li>超遠心管から1mL分画を慎重に取り外し、各画分を新しいマイクロ遠心分離管に移します。</li>
</ol>3. ナノ粒子を利用したEV分画の濃縮
<ol><li>NT80、NT82、および1x PBSの等しいボリュームを使用して、ナノ粒子の30%スラリーを作成します。 注:混合物は、均質性を確保するために使用する前に渦内にする必要があります。</li>
	<li>密度分画を含む各マイクロ遠心管に30μLのスラリーを加え、それらを数回反転して混合します。</li>
	<li>EVを濃縮するナノ粒子含有密度画分マイクロ遠心管O/Nを約20rpmで4°Cで回転させる。</li>
	<li>遠心分離機密度分画マイクロ遠心管はRTで5分間20,000 x gで。</li>
	<li>液体を捨て、1x PBSでEVペレットを2回洗浄します。 注:ナノ粒子ペレットは、-20°Cで凍結するか、またはすぐに様々な下流アッセイ(すなわち、PCR、ウェスタンブロット、質量分析、および他のアッセイ)に使用することができます。</li>
</ol>4. 下流アッセイ用ナノ粒子ペレットの推奨調製
<ol><li>
RNA分離用
	<ol>
<li>0.001%ジエチルピロカーボネート(DEPC)で処理したオートクレーブド脱イオン水の50μLでペレットを再中断し、キットメーカーのプロトコルに従ってRNAを分離します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
ゲル電気泳動用
	<ol>
<li>レムリバッファーの15 μLでペレットを直接再中断します。</li>
		<li>95°Cで3xを熱し、ボルテックスを3分間穏やかに加熱し、各熱サイクルの間にスピンダウンします。</li>
		<li>20,000 x gで15sの遠心分離サンプルを、すべてのeluted材料を直接ゲルにロードします。 注:最良の結果を出すために、ゲルに積み込まれる粒子の量を制限し、ゲルを100Vで動かして、残りの粒子がウェルに含まれていることを確認します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
トリプシン消化用
	<ol>
<li>試料のアルキル化およびトリプシン化の前に尿素の20 μLでペレットを再中断する。ナノ粒子は、RTで14,000 x g遠心分離により10分間ペレット化することができ、トリプシン化ペプチドを含むサンプルは、クリーンな回収管に転移することができる。</li>
	</ol>
</li>
</ol>

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</ol>

B.L.は、この記事で使用される試薬および/または器具を生産するセレスナノサイエンス社と提携しています。他のすべての著者は、潜在的な利益相反を宣言しません。

この方法は、EVの歩留まりを高め、分離への組み合わせアプローチを使用してEVからウイルスを分離することを可能にします。比較的大量の出発物質(すなわち、細胞上清)は、沈殿、DG分離、ナノ粒子濃縮によるEV分離前に濾過することができ、最終的な体積は〜30 μLとなり、様々な中で即時使用が可能下流のアッセイ。ナノ粒子濃縮の使用は、従来の超遠心分離に比べて、これらのEV濃縮ナノ粒子がより効率的に小胞を捕捉することが示されており、培養の1mLから小胞の量以上またはそれ以上を生み出すことが示されている。超遠心培養上清15の10mLに比べて上清。全体的に、記載されたプロトコルは、いくつかのよく知られた技術の組み合わせを含むので、限られた困難を提示する必要があります。しかし、EVを豊富に含むナノ粒子を組み込むには、下流のアッセイや生物学的目標に応じて望ましい結果を達成するためにトラブルシューティングや修正が必要な新しい技術が導入されています。ナノ粒子は、一晩濾過細胞培養上清でインキュベートすることをお勧めします。目的とする標的タンパク質またはRNAがモデル系に存在量が少ない場合、プロトコルは、標的の捕捉を...

細胞外小胞(EV)を中心とした研究、特にエキソソームは、30〜120nmのEVの一種であり、CD81、CD9、CD63の3つのテトラスパニンマーカーの存在を特徴とし、主に分離する方法の開発によって形成されてきた。興味のある小胞を浄化する。多面的なメカニズムを解剖する能力は、幅広い内容、サイズ、および広い範囲の異なる経路を介して生成された小胞の異種集団からなるサンプルを生成する複雑で時間のかかる技術のために妨げられてきた。密度。これはほぼすべてのEV研究の課題ですが、ウイルスやウイルス様粒子(VLP)は対象の小胞と直径が似ているため、ウイルス感染の文脈でEVを研究する際に特に重要です。例えば、ヒト免疫不全ウイルス1型(HIV-1)は直径約100nmで、多くのタイプのEVとほぼ同じ大きさです。このため、これらの問題に対処するための新しい EV 分離ワークフローを設計しました。
EV分離の現在のゴールドスタンダードは超遠心分離です。この技術は、様々な小胞密度を利用して、各段階1、2で、より高密度粒子と低密度粒子の差動堆積を伴う遠心分離によって小胞を分離することを可能にする。無傷の細胞(10分間300~400xg)、細胞破片(10分間は約2,000×g)、アポトーシス体/大小胞(10分間は約10,000 x g)を除去するには、いくつかの低速遠心分離ステップが必要です。これらの初期精製は、高速超遠心分離(1.5-2時間の100,000-200,000 x g)を堆積物EVに続きます。洗浄工程は、EVの純度をさらに確保するために行われるが、これにより絶縁されたEVの数が減少し、それによって総収量3、4を低下させる。この方法の有用性は、十分な結果を達成するために、多数のセル(約1 x 108)と大きなサンプル容積(> 100 mL)の要件によってさらに制限されます。
増大する懸念に対処するために、親水性ポリマーを用いた小胞の沈殿は、近年有用な技術となっている。ポリエチレングリコール(PEG)またはその他の関連する沈殿試薬は、ユーザーが選択した試薬でサンプルをインキュベートするだけでサンプル内の小胞、ウイルス、タンパク質またはタンパク質RNA凝集体をプルダウンし、その後に単一の低速を使用することができます。遠心分離1,2,5.我々は以前に、従来の超遠心分離と比較してEVを沈殿させるためにPEGまたは関連する方法を使用すると、著しく高い収率6をもたらすと報告しました。この戦略は、高速で簡単で、追加の高価な機器を必要とせず、容易にスケーラブルであり、EV構造を保持します。しかし、この方法の無差別な性質のために、得られたサンプルは、フリータンパク質、タンパク質複合体、EVの範囲、およびビリオンを含む様々な製品を含むので、所望の集団1を得るためにさらなる精製を必要とする。 、2、7、8.
様々な降水法から得られるEVの不均一性を克服するために、密度勾配超遠心分離(DG)は、その密度に基づいて粒子をより良く分離するために利用される。この方法は、タンパク質、タンパク質複合体、ウイルスまたはウイルス様粒子(VLP)からのEVの分離を可能にする、iodixanolまたはショ糖などの密度勾配媒体を用いて段階的勾配を用いて行われる。DGはEV亜集団のより正確な分離を可能にすると考えられていたが、現在では様々な小胞の大きさと密度が重なり合うことが知られていることに注意することが重要である。例えば、エキソソームは1.08-1.22 g/mL9の浮入密度を持つことが知られており、ゴルジ(COPI+またはクラトリン+)から分離された小胞は1.05-1.12 g/mLの密度を持ち、子宮内膜網状(COPII+) 1.18-1.25 g/mL1、2、3、4、9で堆積物。さらに、外染分分をウイルス粒子を含む画分と比較したい場合、目的のウイルスの密度に応じて、HIV-1以外のウイルスが同じで平衡化する可能性が高いウイルスが存在する可能性があります。外染陽性分画2としての密度。
最後に、下流の可視化と機能的アッセイのためのEV準備の充実は、EV研究に不可欠です。EV濃縮ナノ粒子、具体的には、直径700~800nmの多機能ヒドロゲル粒子の使用は、濃縮EVの準備を達成する上で重要なステップです。彼らは選択性を促進するために多孔質の外ふるい殻によって封入された高い親和性の芳香族餌を有する。本研究で利用されるナノ粒子には、様々な試薬や生体流体からのEVの捕捉を増加させる異なるコア餌(反応性赤120 NT80;チバクロンブルーF3GA NT82)を用いた2つの異なる調製物が含まれる(材料の表を参照)。 )6,10,11,12,13,14,15.この粒子は、iodixanol画分、細胞培養上清、血漿、血清、脳脊髄液(CSF)、尿6、尿などの患者の生体流体を含む多数の出発物質からEVを容易に濃縮します。.
ここで提示する方法は、いくつかの技術を組み合わせることによって、現在のEV浄化技術の効率を向上させる。EVの降水量、密度勾配超遠心分離、粒子捕捉により、ワークフローを合理化し、サンプル要件を低減し、歩留まりを高め、すべてのEV研究で使用するより均質なEVサンプルを得ることができます。この方法は、大きな不要な小胞とVLPを除外する0.22 μmの濾過ステップと、効果的に密度に基づくEV集団全体の分離を含むため、ウイルス感染時のEVおよびその内容の調査に特に有用である。EVをバイリオンから隔離する。

<table><tbody><tr><td>CEM CD4+細胞</td><td>NIH エイズ試薬プログラム</td><td>117</td><td>CEM</td></tr><tr><td>DPBS CaおよびMgなし (1x)</td><td>品質 生物学的</td><td>114-057-101</td><td></td></tr><tr><td>ExoMAX Opti-Enhancer</td><td>Systems Biosciences</td><td>EXOMAX24A-1</td><td>PEG沈殿試薬</td></tr><tr><td>エキソソーム枯渇FBS</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>A2720801</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>ピーク血清</td><td>PS-FB3</td><td>血清</td></tr><tr><td>HIV-1 感染 U937 細胞</td><td>NIH エイズ 試薬プログラム</td><td>165</td><td>U1</td></tr><tr><td>Nalgene シリンジ フィルター 0.2 &micro;m SFCA</td><td>Thermo Scientific</td><td>723-2520</td><td></td></tr><tr><td>ナノトラップ (NT80)</td><td>Ceres Nanosciences</td><td>CN1030</td><td>Reactive Red 120 core</td></tr><tr><td>Nanotrap (NT82)</td><td>Ceres Nanosciences</td><td>CN2010</td><td>Cibacron Blue F3GA core</td></tr><tr><td>Optima XE-980 超遠心分離機</td><td>Beckman Coulter</td><td>A94471</td><td></td></tr><tr><td>OptiPrep 密度グラジエント ミディアム</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D1556-250mL</td><td>ヨウ素酸</td></tr><tr><td>SW 41 Ti スイングバケットローター</td><td>ベックマン・コールター</td><td>331362</td><td></td></tr><tr><td>ウルトラクリアチューブ、14 mm x 89 mm</td> ベ<td>ックマン・コールター</td><td>344059</td><td></td></tr></tbody></table>

ウイルスから離れた高収率細胞外小胞製剤の精製

Purification of High Yield Extracellular Vesicle Preparations Away from Virus

今日の細胞外小胞(EV)研究の分野における主要なハードルの1つは、ウイルス感染の設定で精製されたEV製剤を達成する能力です。提示された方法は、EVをバイリオン(すなわち、HIV-1)から分離することを意味し、従来の超遠心分離法と比較して、より高い効率と収率を可能にします。当社のプロトコルには、EVの降水量、密度勾配分離、粒子捕捉の3つのステップが含まれています。下流アッセイ(すなわち、ウェスタンブロット、およびPCR)は、粒子捕捉に続いて直接実行することができる。この方法は、最小限の開始ボリュームの使用を可能にする他の絶縁方法(すなわち、超遠心分離)よりも有利です。さらに、複数の超遠心分離ステップを必要とする代替EV分離方法よりもユーザーフレンドリーです。しかし、この方法は、当社の粒子から無傷のEVを溶出することは困難であるため、機能性EVアッセイの範囲に限られています。さらに、この方法は厳密に研究ベースの設定に合わせて調整され、商業的に実行可能ではありません。

PEG沈殿はEVの歩留まりを増加させる EV分離への組み合わせアプローチは、従来の超遠心分離に比べてEV回収の面で大幅に効率的であり、必要な開始材料の量が90%減少することが明らかです。EV分離における現在のゴールドスタンダードである超遠心分離は、下流アッセイに十分なEV準備を行うために約100mLの培養上清を必要としますが、当社の新しいプロトコルは10mLしか必要としていません。この低減は、ナノトラッキング分析(NTA)によって測定されるEV歩留まりの大幅な増加を提供するPEG EV降水試薬の使用によって可能になります。図2Aの結果は、以前に6を公表した図2Aの結果は、培養上清PEG降水量の10mLを使用した場合、7.27 x 1010 10 EVの回収をもたらしたことを示しており、これは数の約500倍であった。超遠心分離(1.45 x 108)を使用して同じ出発材料から回収された...

このプロトコルは、EVの降水量、密度勾配超遠心分離、粒子捕捉を組み込むことにより、高効率で歩留まりのあるビリオンから離れた細胞外小胞(EV)を分離し、合理化されたワークフローと開始の削減を可能にします。すべてのEV研究で使用するための再現可能な準備をもたらす容積の条件。

One of the major hurdles in the field of extracellular vesicle (EV) research today is the ability to achieve purified EV preparations in a viral infection ...

このプロトコルは、細胞外小胞、EVを融合させながら、EVからビリオンを分離できるため、重要です。この方法は、ウイルスフリーEV準備の複数のダウンストリーム分析と特性評価のための超遠心分離の現在のゴールドスタンダードを上回るEV回復を最大化します。このプロトコルはEVとウイルス感染の研究に最適です。この方法は、HTLV、エボラ、ジカ、および多くなどの他のウイルスシステムに適応することができます。私は、この方法の初めてのユーザーがナノ粒子の調製に苦労することを期待するので、我々は慎重に我々の仕様に従うことをお勧めします。システムによっては、何らかの最適化が必要な場合があります。この方法の視覚的なデモンストレーションは、プロトコルの全体的な流れとニュアンスを説明するために重要であり、初めてのユーザーの時間と間違いを減らすことができます。まず、感染した細胞またはトランスフェクトされた細胞から培養上清を調製することから始めます。約10ミリリットルの後期ログ細胞を摂氏37度で5日間培養し、5%の二酸化炭素を培養し、すべての培地試薬に細胞外小胞が含まれないようにする。培養ができたら、5分間Gの3,000倍で遠心分離して細胞をペレット化し、ペレットを捨てる。滅菌0.22マイクロメートルフィルターで上清をフィルターし、きれいなチューブに濾液を集める。濾液に等量のPEG沈殿試薬を加え、チューブを数回反転して混合します。一晩摂氏4度で混合物をインキュベートします。インキュベーション後、混合物を1500回Gで30分間遠心分離し、異種の細胞外小胞、またはEV、ペレットを得た。上清を捨て、カルシウム及びマグネシウムを含まずに1XPBSの150〜300マイクロリットルでペレットを再懸濁する。密度勾配を準備しながら、氷の上にペレットを保ちます。原稿に記載されているように、6〜18%の範囲の11密度画分でイオデキサノール密度勾配培地を準備します。各チューブを渦巻きで混ぜ、密度分率を清潔で乾燥したスイングバケット超遠心チューブに重ね合わせます。再懸濁したEVペレットを層状グラデーションの上部に加え、チューブを10,000倍G、摂氏4度で90分間超遠心分離します。慎重に新しいマイクロ遠心チューブに超遠心チューブから各分を転送します。NT80、NT82、1X-PBSの等量を混合して、EV画分濃縮のためのナノ粒子の30%スラリーを調製します。ナノ粒子混合物をボルテックスして均質性を確保する。各密度の分数にスラリーの30マイクロリットルを加え、管をピペットまたは反転させることによって混ぜます。最も重要なステップは、密度勾配分離に続いて、EVを濃縮するためのナノ物品の添加です。これがなければ、EVの回復は貧弱です。密度画分を含むナノ粒子を摂氏4度で一晩回転させます。その後、密度分率を室温で5分間Gの20,000倍に遠心する。液体を捨て、EVペレットを1X-PBSで2回洗います。RNAの単離のためにペレットを調製するために、原稿の指示に従って、オートクレーブ、脱イオン水の50マイクロリットルを再中断し、濾過し、depsyで処理した。RNAは、次いで、市販のキットを使用して、単離することができます。ゲル電気泳動による分析のために、ペレットを15マイクロリットルのレムリバッファーに再懸濁します。サンプルを摂氏95度まで3分間加熱します。加熱ステップをさらに2回繰り返し、穏やかに渦を出し、熱サイクルの間にサンプルを回転させます。試料を20,000倍Gで15秒間遠心し、上澄みをゲルに直接ロードします。最良の結果を得るには、ゲルにロードされる粒子の量を制限し、100ボルトで実行して、ロードされたナノ粒子がゲルに入るのを防ぎます。PEG沈殿は、従来の超遠心分離よりも大幅に効率的なEV回収を可能にする。10ミリリットルの培養液を使用すると、このアプローチは、超遠心分離よりも約500倍高い収率をもたらす。このアプローチはまた、エキソソームの分離効率の向上をもたらし、これはより高いレベルのエキソソームマーカータンパク質を通じて明らかである。ウェスタンPLA分析は、CD81の3000倍の増加、CD63の4倍の増加およびCD9の40倍の増加を示す。さらに、このプロトコルは、HIV1感染におけるEV媒介機構の下流の研究を可能にし、EVを脊椎から隔離する。西部PLA分析は、EVが3つの割合の集団に見られることを示しています。ウイルスはそのうちの2つだけに存在しますが。EVの侵害10.8から12はウイルス汚染の無い。覚えておくべきことは、ナノ粒子が最適なEV濃縮に不可欠であるということです。彼らの追加は必須です。ウエスタンブロット、PCR、プレートベースの細胞アッセイにおける質量分析による純粋なジオメック分析などの多くの下流アッセイが行うことができる。これらは、特性評価、機械化、および/または機能研究を可能にします。この技術は、ウイルスの背景を汚染することなく、EV貨物と機能性を調べる特定の研究を可能にします。これは、病因と潜在的な治療薬の開発におけるEVの研究のための基盤を提供します。この技術の限界を克服し、EVの調製と分離を大量に適用するために、我々は、接線流ろ過などの高度なシステムを使用することを推奨します。使用する最も危険な器具は、密度勾配分離の間に、超遠心分離です。不均衡と潜在的なローターの故障を避けるために、すべての遠心管が同じ重量を重くすることを確認してください。

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

出典: ワトソン、DC、 et.al。大腸菌と他の細菌からの細胞外小胞のスケーラブルな単離と精製 J. Vis. 経験。 (2021年)このビデオは、遺伝子組み換え細菌の外膜に由来する細胞外小胞(EV)の単離と濃縮を示しています。このプロセスには、細菌を培養して EV...

細菌からの外膜由来細胞外小胞の単離と濃縮

Source: DeMarino, C., et al. Purification of High Yield Extracellular Vesicle Preparations Away from Virus. J. Vis. Exp. (2019)The video demonstrates the separation of EVs from virions and other contaminants by density gradient centrifugation, followed by capture and concentration with hydrogel nanoparticles. Washed fractions are then ready for downstream identification of those enriched in EVs.

Separation and Enrichment of Extracellular Vesicles in the Presence of Virions

このビデオでは、新鮮または凍結した組織から細胞外小胞を抽出する技術について説明しています。単離された細胞外小胞は、疾患の病因における重要な役割を明らかにするためのさらなる分析に使用できます。...

細胞外小胞抽出:示差遠心分離法を用いて全組織標本から細胞外小胞を単離する技術

このビデオは、特性評価研究に適した細胞外小胞の亜集団を分離するための密度勾配超遠心分離ベースの精製方法を示しています。...

細胞外小胞の亜集団の精製:密度勾配超遠心分離法を用いた細胞外小胞の亜集団の精製技術

これは、肝臓から組織外細胞小胞(EV)を分離するためのプロトコルです。このプロトコルは、コラゲナーゼ灌流を含む2段階のプロセスを記述し、その後、肝臓組織EVを分離するための差動超遠心分離を行う。...

肝臓からの組織外細胞小胞の分離

細菌は、生理活性のある生体分子を運ぶナノメートルサイズの細胞外小胞(EV)を分泌します。EVの研究は、それらの生合成、微生物-微生物および宿主-微生物の相互作用および疾患における役割、ならびにそれらの潜在的な治療用途を理解することに焦点を当てています。EV研究の標準化を促進するために、さまざまな細菌からEVをスケーラブルに分離するためのワークフローが提示されます。...

大腸菌およびその他の細菌からの細胞外小胞のスケーラブルな単離および精製(英語)

本プロトコールは、シアノバクテリア培養物からの細胞外小胞の単離、濃縮、および特性評価に関する詳細な説明を提供する。異なるスケールの培養物から小胞を精製するためのアプローチ、方法論間のトレードオフ、およびフィールドサンプルを扱うための考慮事項についても議論する。...

シアノバクテリア細胞外小胞の単離と特性評価

ここでのプロトコルは、サイズ排除クロマトグラフィーを使用して、細胞外小胞を馴化細胞培養培地から適切に分離できることを示しています。...

馴化細胞培養培地から細胞外小胞を分離するためのサイズ排除クロマトグラフィー(英語)

本プロトコルは、培養ヒト間葉系幹細胞から代表的なEV(エキソソームおよびマイクロベシクル)を単離および特性評価するための差動遠心分離について説明しています。これらのEVのさらなる用途についても、本稿で解説しています。...

培養ヒト間葉系幹細胞からの細胞外小胞の単離、特性評価、および治療応用

このプロトコルは、エアスプレーノズルのサイズ、シース液の圧力、サンプルフロー圧力、電圧、ゲイン、およびトリガーしきい値パラメータを最適化することにより、小さな細胞外小胞の迅速かつサイズ固有の分離方法を提供します。...

低分子細胞外小胞のハイスループット単離および精製のためのフローサイトメトリーソーティングパラメータの最適化(英語)

本研究では、密度勾配遠心分離(DGC) により...

密度勾配遠心分離法を用いたヒト糞便からの細菌細胞外小胞の単離と精製(英語)

学ぶ 細胞外小胞の高収率精製法。PEG沈殿、密度勾配遠心、ナノ粒子捕獲を組み合わせ、ウイルス粒子からEVを分離し、従来の遠心法より回収率を向上させる。HIV、エボラ、ジカなどのウイルス研究に応用可能。

ウイルスから離れた高収率細胞外小胞製剤の精製

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