Name: 小腸神経内分泌腫瘍スフェロイドの確立と特徴付け (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-10-14T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 43 s
Description: 学ぶ 小腸神経内分泌腫瘍の3D培養法。患者由来サンプルからスフェロイドを確立し、3週間以内に薬剤スクリーニングが可能。従来の細胞株樹立より迅速に、膵神経内分泌腫瘍への応用も期待される革新的プロトコルです。

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この作業は、NIH助成金P50 CA174521(J.R.ハウとA.M.ベリッツィに)によってサポートされました。P.H. Earは、P50 CA174521キャリア向上プログラム賞を受賞しています。

ヒト神経内分泌腫瘍サンプルを用いる全ての実験は、アイオワ大学病院および診療所IRB委員会(議定書番号199911057)によって承認されている。すべての材料と機器のリストは、材料の表に記載されています。成長メディアと主要なソリューションの一覧を表 1に示します。
1. 小腸神経内分泌腫瘍(SBNET)コレクションと細胞解離
<ol><li>外科病理学の中心からの腫瘍組織の確認の後に切除された患者SBNETのサンプルを得る。</li>
	<li>SBNETを5mmの立方体にカットし、DMEM/F12培地の25 mLを円錐形のチューブに入れて保管し、実験室への輸送を行います。</li>
	<li>1%FBSを含むDMEMで腫瘍を転写し、1%ペニシリン/ストレプトマイシン(ペン/ストレプ)、1%グルタミン(洗浄培地)を含み、この洗浄媒体で15分間インキュベートする。</li>
	<li>生殖不能の湾曲したはさみを使用して、腫瘍を新しい皿とミンチ腫瘍に1mm未満に移します。</li>
	<li>25 mLの洗浄媒体を含む新しい50 mLチューブにひき刻まれた組織を移します。</li>
	<li>4°Cで15分間500 x gでサンプルを遠心分離します。</li>
	<li>上清を廃棄し、コラゲナセ(100U/mL)とDNase(0.1mg/mL)を含む洗浄媒体の10 mLでペレットを再懸濁します。</li>
	<li>みじん切り腫瘍の消化を37°Cインキュベーターで1.5時間のゆっくりと振る(50rpm)で消化できるようにします。</li>
</ol>2. ECMにおける腫瘍スフェロイドとしてのSBNTの培養
<ol><li>消化が完了した後(ステップ1.8)、4°Cで15分間500 x gで遠心分離機を、上清を廃棄し、洗浄媒体の15 mLでペレットを再懸濁する。</li>
	<li>新しい50 mLチューブの上に70 μmのセルストレーナーを置き、セルストレーナーの上に洗浄媒体の10 mLを移します。洗浄媒体を旋回してプラスチックチューブの側面を覆い、NET細胞がプラスチックチューブの側面に付着するのを防ぎます。</li>
	<li>セルストレーナーを介してセル懸濁液をフィルタリングします。</li>
	<li>4°Cで15分間500xgで遠心分離機を廃棄し、洗浄媒体の200μL(総容積は〜250μL)でペレットを再懸濁し、氷の上に置きます。 </li>
	<li>洗浄培地の500μL(1/100希釈係数)に5μLの細胞を移します。血球計を用いて希釈した細胞を使用して、1ミリリットル当たりの細胞数を得る。希釈係数を補正するには、100 を掛けます。</li>
	<li>ステップ 2.5 で得られた mL 当たりのセル数に、ステップ 2.4 (~250 μL) で得られた懸濁液中の細胞の総体積を乗算します。</li>
	<li>4°Cで15分間500xgで遠心分離機を使用し、上清を廃棄し、液体ECM(1 x 106細胞/mL)で細胞を再懸濁し、氷の上に保ちます。 </li>
	<li>ECMのSBNETスフェロイドの5-20 μLを96ウェルプレートに移し、37°Cのインキュベーターにプレートを5分間入れることで液体ECMを固化させます。</li>
	<li>SBNET培養培地の200 μL(DMEM/F12 + FBS + 1% PEN/STREP + 1% グルタミン + 10 mM ニコチンアミド + 10 μg/mLインスリン) をECMのSBNETスフェロイドを含む96ウェルプレートの各ウェルに添加します。</li>
	<li>あるいは、ヒト肝臓または膵臓オルガノイド9を増殖させるために以前に記載されているものと同様の幹細胞培地中の培養SBNETオルガノイドは、材料の表に記載されている。</li>
	<li>5~7日ごとにメディアを変更します。</li>
</ol>3. ImageJを用いたSBNETスフェロイドサイズの定量化
<ol><li>10倍の目的を使用して、文化の1日目、4、7、14、23、97でSBNETのスフェロイドの5-10枚の写真を撮ります。</li>
	<li>ImageJ で保存したイメージを開きます。[分析]タブに移動し、[測定値の設定]オプションを選択し、[エリア]オプションをオンにします。</li>
	<li>ツール バーの楕円形選択ツールを使用して、よく焦点を合わせた回転楕円の周囲に楕円または円を生成します。</li>
	<li>[分析]タブに移動し、[測定]オプションを選択します。25~50 SBNETスフェロイドから面積測定を取得するには、手順 3.4 と 3.5 を繰り返します。値はピクセル二乗で指定されます。</li>
	<li>各ピクセルのサイズを各ピクセルの長さで、顕微鏡画像の μm 変換係数に分割して、ピクセル領域を μm2に変換します。 注:SBNET細胞は主にスフェロイドとして成長し、いつかは楕円体として成長します。</li>
</ol>4. 免疫蛍光によるSBNETSスフェロイドの特性
<ol><li>ECMで成長したオルガノイドをP1000ピペットを使用して1.5 mLチューブに移します。</li>
	<li>1分間1,500 x gで遠心分離機を取り出し、上清を取り除きます。</li>
	<li>1 mLのPBSを加えてオルガノイド培養物を洗浄し、1分間1,500xgで遠心分離機を混合し、上清を除去する。 </li>
	<li>4%パラホルムアルデヒドの500 μLを加えてオルガノイドを固定し、15分間インキュベートします。</li>
	<li>PBSの1 mLで培養物を2回洗います。</li>
	<li>PBS + 3% BSA + 0.1% トリトン X 100 を 5 分間添加して培養物を透過化します。</li>
	<li>その後、PBS+3%BSAの1 mLで3回洗浄します。</li>
	<li>シナプトフィシン(SYP)10で1/600希釈またはクロモグラニンA(CgA)11およびソマトスタチン受容体2(SSTR2)12で1/400希釈抗体バッファー(2.5%ウシヌメシン、0.1ナトリウム)に対する一次抗体で1時間インキュベートアジド、25 mMトリスpH 7.4、150mM塩化ナトリウム)。 注: チューブあたり 300 μL 以上の抗体溶液を使用します。</li>
	<li>PBS + 3% BSAの1 mLで3回洗浄します。</li>
	<li>抗体バッファー内の1/500希釈でFITCに結合した二次抗体を1時間1時間インキュベートし、チューブ当たり300μL以上の抗体溶液を使用する。</li>
	<li>PBS + 3% BSAの1 mLで3回洗浄します。すべての上清を吸引し、廃棄することを確認してください。</li>
	<li>核汚れをDAPIに含む取り付け媒体を5μL加えます。</li>
	<li>P20ピペットを使用して、ステップ4.12からSBNETスフェロイドの5 μLをガラススライドに転送し、カバースリップでシールします。</li>
	<li>10x、20xまたは40xの目的を使用して蛍光顕微鏡を使用して画像を撮ります。</li>
</ol>5. SBNETスフェロイドの免疫組織化学による特性化(IHC)
<ol><li>P1000ピペットを使用して、培養プレートから1.5 mLチューブにSBNETスフェロイドを移します。</li>
	<li>1分間1,500 x gで遠心分離機を取り出し、上清を取り除きます。</li>
	<li>ステップ5.2からチューブに10%ホルマリンの500 μLを加え、パラフィン埋め込み前に2~5日間室温でインキュベートし、4μmの厚いスフェロイドセクションを切断してSBNETスフェロイドを修正します。</li>
	<li>3-in-1自動スライド処理ステーションを使用して20分間97°Cに加熱することにより、pH9の抗原検索液における熱誘発エピトープ検索を脱パラフィン化、再水和、および使用して、抗体インキュベーション用のスライドを調製します。</li>
	<li>SYP10に対する一次抗体を15分間、CgA11を15分間1/800希釈、SSTR212を1/5,000希釈で30分間ブロックし、インキュベートします。</li>
	<li>抗SYPおよびCgA染色のための15分間、抗SSTR2染色のための30分のための二次抗体検出システムでインキュベートする。400倍の目的を使用して写真を撮ります。</li>
</ol>6. ラパマイシンによるSBNETオルガノイドの治療
<ol><li>DMSOでラパマイシンを溶解し、10mMのストック溶液を得る。</li>
	<li>DMSOを使用してSBNET培養培地を調出し(例えば、SBNET培養培地の1mL+DMSOの1μL)と10μMのラパマイシンを含むSBNET培養培地(例えば、SBNET培養培地の1mL+1μLの1μL)を調出す。</li>
	<li>DMSOまたは10 μMラパマイシンを使用してSBNET培養培地を使用して200 μL培地をSBNETスフェロイド培養物に転送します。</li>
	<li>SBNETスフェロイドを37°Cインキュベーターで5日間インキュベートします。</li>
	<li>エチジウムホモジマーの1 μMを追加し、30分間インキュベートエチジウムホモジマーを含む培地を取り出し、200μLのPBSで洗浄し、各ウェルに200μLのPBSを移します。</li>
	<li>蛍光顕微鏡の10x、20x、または40倍の目的を持つ赤いフィルターキューブを使用して薬物治療の有無にかかわらずSBNETスフェロイドの顕微鏡画像を撮ります。 注:エチジウムホモジマーで染色された死細胞は、市販の顕微鏡の赤色フィルターキューブGを使用して赤色で表示されます(材料の表)。あるいは、信号は535 nm励起および624 nm放出の分光光度計を使用して捕獲することができる。</li>
</ol>7. SBNET スフェロイドの分割
注:これは、拡張のために、他の研究者との共有のために行われます。
<ol><li>P1000ピペットを使用してECMを機械的に破壊し、SBNETのスフェロイドでECMを無菌の1.5 mLチューブに吸引します。</li>
	<li>4°Cで1,000 x gで遠心分離機を取り除き、すべての上清を取り除き、チューブを氷の上に置きます。</li>
	<li>ペレットに新しいECMの体積を2~4倍に加えます。新しい ECM を古い ECM と SBNET のスフェロイドとミックスして、上下 10x をピペッティングします。気泡の導入を避ける。</li>
	<li>ECMおよびSBNETスフェロイド混合物の5-20 μLを新しいプレートに移し、ECMが固化することを可能にする。</li>
	<li>新しいSBNET媒体でカバーし、インキュベーターに転送します。回収率は約95~100%です。</li>
	<li>SBNET スフェロイドを別のラボに出荷する場合は、新しい ECM を使用して SBNET スフェロイドを T25 フラスコに転送し、ECM を固化します。</li>
	<li>T25フラスコをSBNETのスフェロイド媒体で満たし、キャップのネジをしっかりと入れ、出荷パッケージを準備します。</li>
	<li>SBNET スフェロイド培養を受け取った後、培養培地を取り外し、ステップ 7.1 ~ 7.5 を実行して、SBNET スフェロイドを培養に戻します。</li>
</ol>8. SBNETスフェロイドの凍結貯蔵と回収
<ol><li>SBNETのスフェロイドを5~10の小さな井戸から15 mLの管に移します。4°Cで15分間500xgで遠心分離機を除去し、凍結培地(90%FBS + 10%DMSO)で再中断し、細胞凍結容器に保存し、-80°Cに置きます。 </li>
	<li>液体窒素に移して長い貯蔵を行う。</li>
	<li>SBNETのスフェロイドを回収するには、凍結したバイアルを氷の上に置き、内容が完全に解凍されるまで待ちます。チューブを反転し、解凍プロセスをスピードアップするために氷の上に再配置します。</li>
	<li>サンプルが解凍されたら、予め冷やされた遠心分離機の中に入れ、10分間1,000 x gで回転させます。</li>
	<li>上清を取り除き、ECMでスフェロイドを再中断します。チューブを氷の上に置き、20 μLを新しいプレートに移し、ECMが固化するのを待ちます。</li>
	<li>ROCK阻害剤(Y-27632)13の10μMを持つSBNET培養培地の200μLを200μLに転送し、インキュベーターに移す。</li>
	<li>SBNET スフェロイドの回復と成長を 1 週間許可します。古い培養培地を取り出し、200μLのSBNET培養培地で補充し、インキュベーターに戻す。</li>
	<li>SBNET スフェロイドが成長し続けることを許可します。 注:急速に成長するスフェロイドが凍結保存後に回復し始めるのに少なくとも1週間かかります13.SBNETのスフェロイドは成長を開始するのに最低2〜4週間かかります。多くのSBNET細胞は最初の2週間以内に死亡し、生存率は10%未満である。これは非常に時間がかかり、低収量プロセスであるため、培養フラスコで他の研究者SBNETスフェロイドと共有することをおりかねます(ステップ7で説明)。凍結貯蔵と回収は、細菌汚染が発生した場合のバックアップ計画としてのみ使用してください。</li>
</ol>

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</ol>

著者は何も開示していない。

腫瘍3D培養は、前臨床薬物検査15のための貴重なリソースとなっている。乳癌および前立腺癌腫瘍16,17から様々な腫瘍オルガノイドバイオバンクが最近確立されている。本研究では、SBNETをスフェロイドとして培養するための詳細なプロトコルと、免疫蛍光と試験薬物感受性によってNETマーカーのスフェロイド培養を検証する簡単かつ迅速な方法を提供する。私たちの経験から、SBNETのスフェロイドは様々な培養メディアで成長することができます。彼らは、我々が以前に公開されたプロトコル9から適応したヒト膵臓または肝臓分離のための幹細胞培養でわずかに速く成長する。これは幹細胞培地よりも安価であるため、インスリンとニコチンアミドを補うDMEM/F12培地でSBNETを成長することを選択しました。胎児ウシ血清の割合を増加させることは、SBNETオルガノイド培養物の成長を促進するための別の戦略です。ただし、これにより、カルチャメンテナンスの全体的なコスト...

小腸神経内分泌腫瘍(SBNETs)は、小腸の腸内クロマフィン細胞に由来する。SBNETは一般的にゆっくりと成長することが知られているが、それらは一般的に肝臓1に転移する。外科的除去または腫瘍切除は多くの場合考えることができるが、再発はほぼ普遍的であり、したがって、医療療法は管理において重要な役割を果たす。薬物検査のための新しいSBNET細胞株を生成するために多大な努力が投資されています。しかし、成功はほとんどありませんでした。6つのSBNET細胞株(KRJ-I、CND2、GOT1、P-STS、L-STS、H-STS)のみが報告されています2,3,4,5;そして残念ながら、1つの細胞株はもはやNETマーカー6および他の3つのSBNET細胞株(KRJ-I、L-STS、H-STS)を発現しなくなり、NETs7の代わりに形質転換リンパ芽球に由来すると判断した。SBnETを標的とする薬剤の同定を加速するためには、インビトロ薬物検査のための代替方法が必要である。
ここでは、切除されたSBNETの利用可能性を利用し、ECMで成長するスフェロイドとしてこれらの患者由来SBNETを培養する方法を確立した。この原稿の全体的な目標は、免疫蛍光染色および免疫組織化学によるSBNETマーカーの保持のためのこれらのスフェロイドを特徴付ける3次元(3D)培養および輪郭手順としてSBNETを培養する方法を記述することです。
さらに、これらのSBNETスフェロイドをNETs8の抗癌剤であるラパマイシンの効果をテストするためにどのように使用できるかを示す。このプロトコルの背後にある根拠は、インビトロでSBNET細胞を成長させ、薬物検査に使用する新しい方法を開発することです。SBNET細胞株を確立する従来の方法に対するこの技術の利点は、SBnNETの3D培養物を迅速に得ることができ、薬物検査を3週間以内に行うことです。SBNETのスフェロイドは、SBNET患者の新薬を同定するためにインビトロ薬剤スクリーンを行うためのモデルとして使用される可能性がある。SBNET細胞株は広く利用できないため、SBNETスフェロイドの3D培養はSBNNETを研究するための新しいインビトロモデルとして機能し、現場の科学者間で共有することができます。

<table><tbody><tr><td>抗ウサギ FITC</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>11-095-152</td><td>緑色蛍光色素への二次抗体結合</td></tr><tr><td>抗原賦活化液</td><td>Agilent Dako</td><td>S2367</td> IHC Autostainer Link 48 Agilent Dako の<td>スライド調製のためのpH 9の溶液</td></tr><tr><td></td><td>Agilent Dako</td><td>Not Available</td> 抗体<td>染色用自動システム</td></tr><tr><td>細胞凍結容器</td><td>Thermo Scientific</td><td>5100-0001</td><td>細胞凍結用容器</td></tr><tr><td>CellSence</td><td>Olympus</td><td>Version 1.18</td><td>蛍光顕微鏡使用用コンピュータソフトウェア</td></tr><tr><td>Chromogranin A antibody</td><td>Abcam-45179</td><td>RB-9003-PO</td><td>IF</td></tr><tr><td>Chromogranin A antibody (clone LK2H10)</td> <td>Thermo Scientific</td><td>MA5-13096</td><td>IHC</td></tr><tr><td>Collagenas</td><td>Sigma</td><td>C0130</td> <td>用抗体腫瘍組織消化酵素</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Gibco</td><td>11965-092</td><td>組織調製用培地</td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Gibco</td><td>11320-033</td><td>オルガノイド培養用培地</td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma</td><td>D8418</td><td>薬剤溶解用溶媒</td></tr><tr><td>DNAse</td><td>Sigma</td><td>DN25</td><td>腫瘍組織消化用酵素</td></tr><tr><td>エチジウム ホモダイマー</td><td>Chemodex</td><td>CDX-E0012-T1E</td><td>DNAおよびRNA結合色素</td></tr><tr><td>FBS</td><td>Gibco</td><td>16000044</td><td>培地用試薬</td></tr><tr><td>蛍光顕微鏡</td><td>オリンパス</td><td>CKX35</td><td>SBENTスフェロイド撮影用顕微鏡</td></tr><tr><td>グルタミン</td><td>Gibco</td><td>A2916801</td><td>培地用試薬</td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>国立衛生研究所</td><td>バージョン1.51</td><td>画像用コンピュータソフト分析</td></tr><tr><td>インスリン</td><td>シグマ</td><td>I0516</td><td>培地用試薬</td></tr><tr><td>マトリゲル</td><td>コーニング</td><td>356235</td><td>オルガノイドを埋め込み固定するためのマトリックス</td></tr> 封<tr><td>入培地 (VECTASHIELD)</td><td>ベクターラボラトリーズ</td><td>H-1200</td><td>核染色物標識細胞用固定剤</td></tr><tr><td>ニコチンアミド</td><td>シグマ</td><td>72340</td><td>培地</td></tr><tr><td>用試薬パラホルムアルデヒド</td><td>電子顕微鏡科学</td><td>15710</td><td>細胞を固定する試薬</td></tr><tr><td>PEN/STREP</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td>培地用試薬</td></tr><tr><td>PT Link</td><td>Agilent Dako</td><td>利用不可</td><td>IHC染色用スライドを調製する自動システム</td></tr><tr><td>ラパマイシン</td><td>アルファ Aesar</td><td>J62473</td><td>NET増殖を阻害する薬剤</td></tr><tr><td>IHC</td><td>用二次抗体Agilent Dako</td><td>K8000</td><td>Secondary antibodies for IHC using Polymer-based EnVision FLEX system</td></tr><tr><td>SSTR2 antibody</td><td>GeneScritp</td><td>A01591</td><td>Antibodies for IF</td></tr><tr><td>SSTR2 antibody (clone UMB1)</td><td>Abcam</td><td>ab134152</td><td>Antibodies for IHC</td></tr><tr><td>Synaptophysin antibody</td><td>Abcam</td><td>32127</td><td>Antibodies for IF</td></tr><tr><td>Synaptophysin antibody (clone DAK-SYNAP)</td>ア<td>ジレント ダコ</td><td>M7315</td><td>IHC</td></tr><tr><td>TritonX</td><td>Mallinckrodt</td><td>3555 KBGE</td>用抗体 細胞<td>透過剤</td></tr><tr><td>Y-2763 ROCK阻害剤</td><td>アディポゲン</td><td>AG-CR1-3564-M005</td><td>凍結融解後のSBNETスフェロイド生存率の向上</td></tr></tbody></table>

小腸神経内分泌腫瘍スフェロイドの確立と特徴付け

Establishment and Characterization of Small Bowel Neuroendocrine Tumor Spheroids

小腸神経内分泌腫瘍(SBNET)は、腸の腸内クロマフィン細胞に由来する稀な癌である。この分野の研究は、非常に少数の患者由来SBNET細胞株が生成されているので、限られている。十分に分化したSBNET細胞は成長が遅く、伝播しにくい。確立された少数の細胞株は容易に利用できないし、培養中の時間が経つ後もNET細胞の特性を発現し続けないかもしれない。SBNET細胞は長い倍増時間を持ち、癌関連線維芽細胞を急速に分裂させるには多くの濃縮ステップが必要となるため、新しい細胞株の生成には何年もかかる可能性があります。これらの限界を克服するために、細胞外マトリックス(ECM)におけるスフェロイドとして外科的に除去された腫瘍からSBNET細胞を培養するプロトコルを開発しました。ECMは、SBNET細胞をカプセル化し、腫瘍微小環境を模倣してSBNET細胞の増殖を可能にする3次元マトリックスを形成する。ここでは、SBNETスフェロイドの増殖速度を特徴付け、免疫蛍光顕微鏡と免疫組織化学を用いてSBNETマーカーを同定する方法を説明し、スフェロイドが神経内分泌腫瘍細胞であることを確認した。また、ラパマイシンの細胞毒性を試験するためにSBNETスフェロイドを用いた。

現在、2、3、4、5のSBNET細胞株は2つしか確立され、公開されており、多くの研究者が容易に利用できるわけではありません。ここでは、ECMにおけるスフェロイドとしての培養SBNETを提案し、これをSBNET薬物感受性を研究する代替モデルとして用いる。肝臓に転移したSBNET由来の患者由来腫瘍を採取し、SBNET細胞を放出するために消化し、SBNETスフェロイド培養を確立するための液体ECMと混合した(図1A)。このSBNETのKi-67は4.3%でした。SBNETスフェロイドの成長率は低いが、その成長は顕微鏡イメージングによって監視することができる(図1A)。培養メディアを週に1回変更すると、SB...

神経内分泌腫瘍(NETs)は神経堤の神経内分泌細胞に由来する。彼らは成長が遅く、文化に挑戦しています。我々は、スフェロイドとしてそれらを培養することにより、小腸からNETを成長させるための代替戦略を提示します。これらのスフェロイドは、小さな腸ネットマーカーを有し、薬物検査に使用することができます。

Small bowel neuroendocrine tumors (SBNETs) are rare cancers originating from enterochromaffin cells of the gut. Research in this field has been limited ...

分化されたSBNET細胞は成長が遅く、伝播しにくい。いくつかの確立された細胞株は、研究者に容易に利用できません。これらの制限を克服するために、我々はこの3D培養プロトコルを開発しました。SBNET細胞株を確立する従来の方法よりもこの技術の利点は、3D培養を取得することができ、薬物検査は3週間以内に行うことができるということです。この方法は、膵臓由来の神経内分泌腫瘍などの他の神経内分泌腫瘍に適用することができる。切除された患者SBNETサンプルを得た後、それを5ミリメートルキューブに切り、輸送用の円錐管内のDMEM F12培地の25ミリリットルに保管します。原稿の指示に従って調製した洗浄媒体中の腫瘍を15分間インキュベートする。その後、新しい皿にそれらを転送し、滅菌湾曲したはさみを使用して1ミリメートル未満にそれらをミンチ。25ミリリットルの洗浄媒体を含む新しい50ミリリットルチューブにひき肉組織を移し、500倍gでサンプルを摂氏4度で15分間遠心分離します。上清を捨て、コラゲナーゼとDNaseで10ミリリットルの洗浄媒体でペレットを再懸濁します。ひき肉の腫瘍を摂氏37度で消化し、90分間ゆっくりと揺れる。腫瘍サンプルを過剰に消化しないことが重要です。酵素が多すぎたり、インキュベーション時間が長すぎると、SBNET細胞が死滅します。消化が完了した後、500回グラムでチューブを摂氏4度で15分間遠心分離する。上清を捨て、15ミリリットルの洗浄媒体でペレットを再懸濁します。新しい50ミリリットルチューブの上に70マイクロメートルの細胞ストレーナーを置き、ストレーナーを通して洗浄バッファーの10ミリリットルを移動します。細胞が側面に付着するのを防ぐために、チューブ内の洗浄バッファーを旋回します。次に、ストレーナーを通して細胞懸濁液を濾過する。500倍gで細胞を摂氏4度で15分間遠心分離する。上清を捨て、200マイクロリットルの洗浄媒体でペレットを再懸濁します。チューブを氷の上に置き、ヘモサイトメーターで細胞を数えるために5マイクロリットルの細胞を使用します。細胞数を計算し、遠心分離を繰り返して上清を除去し、液体ECM中の細胞を1ミリリットル当たり100万個の細胞の濃度で再懸濁します。次に、ECMのSBNETスフェロイドを5~20マイクロリットルの96ウェルプレートに移し、37°Cのインキュベーターにプレートを入れて液体ECMを固めます。SBNET培地を200マイクロリットルのSBNET培養培地を、前述のように幹細胞培地中のスフェロイドまたは培養を含む各ウェルに添加する。P1000ピペットを使用してオルガノイドを1.5ミリリットルチューブに移し、チューブを1、500倍gで遠心して上清を取り除きます。PBSと遠心分離機の1ミリリットルで培養液を洗浄し、上清を除去します。その後、500マイクロリットルのパラホルムアルデヒドを加え、15分間インキュベートしてオルガノイドを固定します。インキュベーション後、培養液を1ミリリットルのPBSで2回洗浄する。3%BSAと0.1%トリトンX-100でPBSの500マイクロリットルを加え、培養液を透過させます。チューブを5分間インキュベートし、オルガノイドをPBS1ミリリットルと3%BSAで3回洗浄します。次に、一次抗体で培養を1時間培養し、PBSおよびBSAでの使用を繰り返します。二次抗体でインキュベートし、吸引し、すべての上清を捨てるように、このすすを繰り返します。スフェロイドを画像化するには、DAPIを含む取り付け媒体を5マイクロリットル加え、P20ピペットを使用して5マイクロリットルのスフェロイドをガラススライドに移します。10、20、および 40X の目標を使用して、蛍光顕微鏡でカバースリップと画像でスライドをシールします。P1000ピペットでECMを機械的に破壊し、滅菌1.5ミリリットルチューブに移します。チューブを摂氏4度で1,000倍gで遠心分離する。その後、すべての上清を除去し、氷の上にチューブを置きます。ペレットに新しいECMの2〜4倍の体積を加え、気泡の導入を避けるために上下にピペットを10回ずつ入れてチューブの内容物を混ぜます。ECMとSBNET混合物の5〜20マイクロリットルを新しい96ウェルプレートに移し、ECMを固化させます。次に、固化したECMを新しいSBNET培地で覆い、プレートをインキュベーターに入れます。SBNET スフェロイドを別のラボに出荷する場合は、新しい ECM を含むスフェロイドを T25 フラスコに転送し、ECM を固めます。フラスコにSBNETスフェロイド培地を充填し、キャップをしっかりとねじ込み、配送パッケージを準備します。スフェロイド培養液を受け取った後、培養液を除去し、前工程を繰り返して、スフェロイドを培地に戻す。SBNETスフェロイド増殖速度を顕微鏡イメージングでモニタリングした。SBNETスフェロイドのサイズが週に1回変更されると、約14日かかります。培養で14日後、SBNETスフェロイドはサイズが大きくならない。スフェロイドをシナプトフィシン、クロモグラニンA、およびSSTR2に特異的な抗体で染色し、免疫蛍光顕微鏡を用いて画像化した。データは、これらのマーカーが細胞質およびSBNET細胞の膜に局在していることを示した。抗体の特異性を確保するために、シナプトフィシン、クロモグラニンAおよびSSTR2を発現しない膵臓腫瘍からのオルガノイドラインに対して同じ染色手順を行い、緑色のシグナルは検出されなかった。免疫蛍光イメージングの主な利点は、4時間以内に行い、免疫検査と同様の染色情報を与えることができるということです。SBNETをスフェロイドとして培養することは、SBNET増殖を阻害する薬剤を同定するための貴重な技術である。スフェロイドをラパマイシンおよびmTOR阻害剤で処理した。5日後、ラパマイシン処理されたスフェロイドはブドウのような構造を形成し、アポトーシスまたは壊死性となった。この手順を試みる場合、細胞ストレーナーおよびコレクションチューブを洗浄媒体で予め濡らすることが重要である。これにより、SBNET細胞が細胞ストレーナーやプラスチックチューブに付着するのを防ぎます。このプロトコルを使用すると、科学者や臨床医は、切除された腫瘍からSBNETスフェロイド培養を確立し、他の研究所と共有し、FDA承認薬の検査に使用することができます。

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Research

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Cancer Research

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継代培養および輸送のためのスフェロイドの分割:小腸神経内分泌腫瘍からのスフェロイドの増殖および移植の手順

出典:Ear, P. H., et.al. 小腸神経内分泌腫瘍スフェロイドの確立と特性評価。J. Vis. Exp.

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小腸神経内分泌腫瘍スフェロイドの確立と特徴付け

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