Name: 静脈移植を用いた血管形成術を模したウサギ静脈間位置モデルによる動脈血圧下の内膜過形成の評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-05-15T13:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 2 s
Description: 学ぶ静脈移植後の内膜過形成をウサギの頸静脈・頸動脈間位置モデルで再現する方法。動脈血圧下での血管変化を評価し、虚血性心疾患や下肢疾患の治療戦略開発に有用な実験系を提供します。

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この研究は、文部科学省(25462136)の研究助成金によって支援されました。

注:動物に対して行われるすべての外科的処置は、実験動物のケアと使用ガイド(www.nap.edu/catalog/5140.html)またはその他の適切な倫理指針に従って行われるべきである。議定書は、先に進む前に、適切な機関で動物福祉委員会によって承認されるべきです。
1. 動物の準備
<ol><li>2.7~3.0kgの雄の白いウサギ(または体の大きさのウサギ)を購入してください。</li>
	<li>12時間の明暗サイクルで1週間ウサギを順応させ、手順の前に定期的なウサギのチャウダイエットを与えます。</li>
</ol>2. 麻酔と動物の設定
注: 以降の手順はすべて無菌条件下で行う必要があります。手術分野および装置は、使用前に10%ポビドネ-ヨウ素溶液、70%アルコール、または第四級アンモニウム化合物で解毒する必要があります。
<ol><li>耳介静脈を介してペントバルビタールナトリウム(25mg/kg)の静脈投与でウサギを麻酔します。</li>
	<li>ウサギが強度を失ったことを確認した後、手術台に移し、それをサピーヌの位置に設定します。麻酔マスクで鼻と口を覆います。0.7~1.0%のイソファラン-酸素混合で全身麻酔の投与を開始します。 注:ウサギが動き始めると、イオブルランの一時的なサージが最大2%有効になります。</li>
	<li>電動ヘアクリッパーを使用して、首と肩の毛皮をトリミングします。70%エタノールまたは別の消毒液を噴霧して表面を消毒した後、子宮頸部の残りの毛髪をカミソリで剃る。10%ポビドネヨウ素で外科分野を消毒し、局所麻酔として皮下に塩酸リドカイン(3mg/kg)を投与する。 注: 気管の繰り返しの動きを調べてください。頸静脈と頸動脈の脈動を観察する。呼吸器および拍動率が低下した場合、麻酔投与の一時的な減少を考慮する。経皮的な酸素飽和度と脈拍数をモニタリングすることも有用である。 注: プロトコルはここで一時停止することができます。</li>
</ol>3. 頸静脈の収穫
注意:局所麻酔薬(リドカインなど)は、皮膚切開を行う前に使用する必要があります。
<ol><li>皮膚切開前に、予防的なエンロフロキサシン(5mg/kg)を皮下に投与する。鎮痛の場合は、0.05mg/kgのブプレノルフィンを1日2回3日間投与する。 注:体温の低下を避けるために、切開部位の外科スクラブを使用して、動物の体に70%エタノールを吹き付ける代わりに使用することができます。</li>
	<li>子宮頸部領域の50〜60mmを縦方向に外科的メスで切開する。皮下組織と筋膜を鈍く解剖し、頸静脈の20〜30mmのセグメントを露出させる。露出した静脈のすべての枝を4-0シルク縫合糸でリゲートします。</li>
	<li>内部および外部の頸静脈の周りに2-0シルク縫合糸を置き、次のステップで頸静脈を切開した直後に結紮を行う。</li>
	<li>静脈の遠位側の静脈壁(約1mm)を切開します。切り傷から静脈の近位側に向かって2フランス風のバルーンカテーテルを挿入します。頸静脈の遠位部位に2-0シルク縫合糸をリゲートします。</li>
	<li>気球を0.2 mLの空気で膨らませる。内皮剥離のためにカテーテルの3つの通路を使用して静脈のインティマを否定する。 注:この手順は、内皮剥離を引き起こすヒト血管新生手術におけるサフェヌス静脈移植片の不全と同等であると考えられる。</li>
	<li>静脈の近位端をリゲートします。収穫するために静脈をカットします。 注:収穫された静脈の遠位および近位の端を慎重に区別します,動脈への吻合は逆に行われるべきであるので(すなわち、静脈の遠位端は動脈の近位端まで吻合されるべきである)。例えば、ある側からの静脈内カテーテルの挿入はマーカーとして働くだろう。</li>
	<li>収穫された頸静脈の治療的操作のために、収穫された静脈を各研究問題のために設計された方法で処置する(例えば、エレクトロポレーション26またはマイクロRNAを静脈に移調するための溶液27で直接浸漬)。 注:このプロトコルでは、静脈移植片はリン酸緩衝生理食塩分、制御マイクロRNA、およびマイクロRNA-145に浸漬した。プロトコルはここで一時停止することができます。</li>
</ol>4. 収穫された頸静脈によって頸動脈を介在させる
<ol><li>20~30mmの角頸動脈を露出させます。動脈を近くの静脈と神経から慎重に分離します。露出した静脈のすべての枝を4-0シルク縫合糸でリゲートします。</li>
	<li>ヘパリンナトリウムを静脈内投与(200 IU/kg)。3~4分待ちます。</li>
	<li>外科的クランプで動脈の近位および遠位端をクランプします。中央の動脈をクランプの間に切ります。切開頸動脈に正常な生理液を近位に注入し、遠位で動脈を遠位に注入する。 注意:ウサギの頸動脈は収縮する傾向があります。アナストモシスサイトとしてよく歪んだサイトを選択してください。</li>
	<li>逆エンドツーエンドの方法で動脈に収穫された静脈を吻合.<ol>
<li>遠位吻合の間に静脈内腔を開いたままにするために遠位から近位方向に収穫された静脈に20G静脈内カテーテルを挿入する。</li>
		<li>8-0を使用して動脈の遠位端に静脈の近位端を吻当ポリプロピレンは縫合糸を中断した。サイトと反対側のサイトに2つのアンカースチを置きます。アンカースチの間の吻合線の上側にスチを追加します。</li>
		<li>動脈と静脈の移植片を逆さまにします。吻合線の残りの部分にスチを追加します。</li>
		<li>静脈から静脈内カテーテルを取り除く。静脈移植片を近位にクランプし、頸動脈を遠位に落とす。静脈移植片が徐々に拡大していることを確認する。</li>
		<li>8-0を使用して動脈の近位端に静脈の遠位端を吻当ポリプロピレンは縫合糸を中断した。動脈を取り除き、吻診部位からの出血を確認する。必要に応じて、止止めのための縫合糸を追加します。 注:ガーゼと待っている出血部位の穏やかな圧縮は止血のために十分かもしれません。近位脱クランプ後の静脈移植片の即時膨張および強い脈動を確認してください。それが観察されない場合は、手順 4.4.2 ~ 4.4.3 を繰り返す必要があります。</li>
	</ol>
</li>
	<li>4-0シルク縫合糸で内部頸動脈をリゲートして、不十分な流出状態をシミュレートし、内膜過形成を促進します。</li>
	<li>生理傷を生理できれいにしなさい。3-0ポリグラクチン910を用いて創傷を閉じる、層によって。</li>
</ol>5. 術後の手順
<ol><li>麻酔を終了し、動物の自発的な呼吸を確認した後、麻酔マスクを削除します。麻酔から回復するまで、動物の状態を頻繁に確認してください。</li>
	<li>呼吸機能が完全に回復するまで、動物を他の動物から分離してください。必要に応じて、手動で呼吸をサポートします。完全に回復するまで、動物を大きなグループに戻さない。</li>
	<li>麻酔からの回復後の食物と水の摂取量を確認し、適切な栄養サポートを提供します。鎮痛薬(例えば、ブプレノルフィン0.05〜0.2mg/kg)を1日2回3日間投与し、不快感や痛みの徴候がないか確認します。</li>
</ol>

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<li>Dietrich, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+development+of+vein+graft+atheroma+in+ApoE-deficient+mice%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">Rapid development of vein graft atheroma in ApoE-deficient mice.</a> American Journal of Pathology. 157 (2), 659-669 (2000).</li>
<li>Kumar, A., Lindner, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Remodeling+with+neointima+formation+in+the+mouse+carotid+artery+after+cessation+of+blood+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">Remodeling with neointima formation in the mouse carotid artery after cessation of blood flow.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 17 (10), 2238-2244 (1997).</li>
<li>Lindner, V., Fingerie, J., Reidy, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+model+of+arterial+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Mouse model of arterial injury.</a> Circulation Research. 73 (5), 792-796 (1993).</li>
<li>Moroi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interaction+of+genetic+deficiency+of+endothelial+nitric+oxide%2C+gender%2C+and+pregnancy+in+vascular+response+to+injury+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">Interaction of genetic deficiency of endothelial nitric oxide, gender, and pregnancy in vascular response to injury in mice.</a> Journal of Clinical Investigation. 101 (6), 1225-1232 (1998).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

本プロトコルは、VSMCが増殖から収縮状態に至る表現型を制御し、その後生体内における静脈内外皮過形成の進行を減衰させる様々な分子または遺伝的介入を試験する実験プラットフォームを提供するように設計されている。このモデルを用いて、手術後2週間(図1A)での内膜過形成の調製に成功し、VSMC表現型26,27を制御するマイクロRNA-145の治療可能性を示し、27このプロトコルをモデルとして検証し、さらにインティアル静脈過形成の減衰を調査した。
私たちのウサギの内皮過形成モデルは、次の3つの主要なステップで構成されています: 1)カテーテル損傷;2)頸静脈の間合位置;3) 遠位枝ライゲーション (図 3).バルーンカテーテルの通路で負傷した静脈移植片は脱内皮化であることが示され、そして、内皮は過形成23、28...

アテローム性動脈硬化症による虚血性疾患を経験する患者の数は、世界的に増加しています1.心血管疾患に対する医学的および外科的療法における現在の進歩にもかかわらず、心筋梗塞などの虚血性心疾患は、罹患率および死亡率の主な原因である2。さらに、四肢への血流の減少を特徴とする末梢動脈疾患は、重篤な四肢虚血を誘発し、患者の約40%が診断後6ヶ月以内に足を失い、死亡率は20%3まで3である。
冠動脈バイパス移植(CABG)や末梢動脈バイパス手術などの再血管形成手術は、虚血性疾患の主要な治療選択肢です。これらの手術の目的は、アテローム硬化性動脈のステノスティックまたは閉塞性病変の遠位部位に向かう十分な血流を提供する新しい血液経路を提供することにある。CABGの内部胸部動脈のような静脈動脈移植片では、より長い開存性が予想されるためバイパス移植片として好ましいが、自家伏状静脈のような静脈移植片は、より高いアクセシビリティおよび入手可能性のために一般的に使用される4。静脈移植片の弱点は、動脈圧を受けると動脈移植片5の加速による動脈移植片5に比べて貧しい開腸率であり、これは静脈移植片疾患6に至る。
静脈移植性疾患は、次の3つのステップを経て発症する:1)血栓症;2)内皮過形成;そして3)アテローム性動脈硬化症7.静脈移植性疾患に対処するために、多くの基礎研究が行われている。これまでのところ、最近の,ガイドライン,99、10、11、12では、冠動脈または末梢血管新生手術後の二次予防のために、抗血小板および脂質低下療法以外の薬理学的戦略は推奨されていない。,1112したがって、静脈移植症、特にインティマル過形成を克服するためには、さらなる研究のための関連実験プラットフォームの確立が必要である。
インティタル過形成は、血管平滑筋細胞(VSMC)が増殖し、蓄積し、インティマで細胞外マトリックスを生成する周囲の変化に応じて起こる適応現象である。その結果、移植片アテローム7の基礎を提示する。超塑性インティマでは、VSMCは増殖を有し、収縮ではなく生産を「形ノチの変化」8と呼んだ。静脈移植片病を予防するために静脈移植片のVSMCの表現型を制御する主要な研究目標であり、このトピック8に関して数多くの基礎研究が行われている。しかし、VSMC表現型の薬理学的制御を達成することを目的とした無作為化制御臨床研究は、限定的な結果を示した13.さらに、内膜過形成を予防するための標準化された治療法はありません。動物モデル研究を含む、より多くの基礎研究が必要である。
この分野の研究を進めるためには、動脈血圧下で静脈移植片を再現し、長期の術後観察を可能にする動物モデルを確立することが重要です。Carrelら. 頸動脈14に外部頸静脈を移植するイヌモデルを確立した。この後、胸部または腹部大動脈に生着した下胸部カバ、または大腿動脈15、16、17に生まれた下胸静脈を含む動脈血圧の変化の生理学的および病理学的影響を調べるため、16,17種々の静脈移植片が採用されている。これらのモデルは、臨床症例における静脈移植性疾患を模倣するのに適した豚や犬などのより大きな動物で構築された。しかし、特別な外科技術なしで、より低コストで調製できる動物モデルの確立は、生体内のVSMC表現型制御を通じて内膜過形成を減衰するための新しい治療戦略を開発しようとする研究者にとって理想的であろう。当初、ウサギの頸動脈への頸静脈の介入が脳神経外科18,19,19の分野で導入された。その後、内皮過形成20,21,21に関する研究に応用した。初期モデルは静脈間の差付けだけで構成されているため、時間を節約できます。さらに、その後の研究は、静脈移植片の調製が内膜過形成22にも影響を及ら示したことを実証した。Davies et al. ウサギ静脈間位モデル23,24,24における気球カテーテル損傷が内皮過形成に及ぼす影響を評価した。静脈間付きに加えてバルーンカテーテル損傷は臨床現場に対してより関連性が高かったが、より再現性のあるモデルも望まれていた。このように、江ららは、微分流動環境が内膜過形成に及ぼす影響を調べ、再現可能なモデル25として遠位枝結紮手順を確立した。しかし、彼らは臨床現場で手縫い吻合とは異なるように見える静脈移植片の介在時にカフ技術を採用した。本プロトコルでは、動脈血圧下での内膜過形成を評価するためのウサギ静脈間質モデルの調製に関する再現性、臨床的に関連する、広く利用可能な手順を報告する。

<table><tbody><tr><td>10% ポビドンヨード溶液</td><td>中北</td><td>872612</td><td>外科用消耗品</td></tr><tr><td>2-0 VICRYL Plus</td><td>ジョンソン・エンド・ジョンソン</td><td>VCP316H</td><td>外科用消耗品</td></tr><tr><td>4-0 シルク縫合糸</td><td>アルフレッサ pharma</td><td>GA04SB</td><td>外科用消耗品</td></tr><tr><td>8-0 ポリプロピレン縫合</td>糸 <td>エチコン</td><td>8741H</td><td>外科用消耗品</td></tr><tr><td>セファゾリンナトリウム</td><td>日医薬工業</td><td>6132401D3196</td><td>抗生物質</td></tr>フォ<tr><td>ガティカテーテル (2Fr)</td><td>Edwards Lifesciences LLC</td><td>E-060-2F</td><td>外科用消耗品</td></tr><tr><td>ヘパリン</td><td>ニプロ</td><td>873334</td><td>抗凝固剤</td></tr><tr><td>静脈カテーテル (20G)</td><td>テルモ</td><td>SR-OT2051C</td><td>外科用消耗品</td></tr><tr><td>イソフルラン</td><td>富士フイルム</td><td>095-06573</td><td>麻酔</td></tr><tr><td>リドカイン塩酸塩</td><td>MP Biomedicals 193917</td><td></td><td>麻酔</td></tr><tr><td>ペントバルビタールナトリウム</td><td>東京化学工業</td><td>P0776</td><td>麻酔</td></tr></tbody></table>

静脈移植を用いた血管形成術を模したウサギ静脈間位置モデルによる動脈血圧下の内膜過形成の評価

A Rabbit Venous Interposition Model Mimicking Revascularization Surgery using Vein Grafts to Assess Intimal Hyperplasia under Arterial Blood Pressure

静脈移植片は虚血性疾患の再血管形成手術で一般的に自己移植片として使用されてきたが、動脈血圧への暴露による腸内過形成の加速のために、長期の開腸は依然として貧弱である。本プロトコルは、ウサギ頸静脈を周頸動脈に介在させることにより実験的静脈内膜過形成を確立するために設計されている。このプロトコルは、体幹の深部に外科的処置を必要とせず、切開の程度は限られており、これは動物にとって侵襲性が低く、移植後の長期観察を可能にする。この簡単な手順は、研究者が移植された静脈移植片の内膜過形成の進行を減衰するための戦略を調査することを可能にする。このプロトコルを用いて、増殖から収縮状態への血管平滑筋細胞(VSMC)の表現型を制御し、採取した静脈移植片に及ぼすマイクロRNA-145(miR-145)の効果を報告した。VSMCsの表現型変化を通じて移植手術前にmiR-145をトランスデューシングすることにより、静脈移植片の内膜過形成の減衰を確認した。ここでは、血管新生手術における静脈移植片の内膜過形成を減衰させるために使用できる戦略を調査するための、より侵襲性の低い実験プラットフォームを報告する。

図1Aは静脈間間術後2週での正常な内膜過形成の代表的な画像(上パネル)を示す。下側のパネルは、内膜過形成を減衰させたマイクロRNA-145装填ポリ(乳酸-コグリコール酸)ナノ粒子(下部パネル)の治療効果を示す。図1Bは、リン酸緩衝食塩水制御(PBS)、コントロールマイクロRNA(Cont-miR)、およびマイクロRNA-145(miR-145)群を用いた対照群間の内皮過形成の比較を示す。マイクロRNAには、ポリ(乳酸コグリコール酸)ナノ粒子が積載された。マイクロRNA-145による治療は、著しくインティマル過形成を減衰させた。図2は、細胞増殖マーカーであるKi-67に対する免疫染色を示す。miR-145群では少ないKi-67陽性細胞が観察され、VSMCの表現型変化が未熟な増殖状態から成熟した収縮状態に変化することを示す。
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本プロトコルは、静脈移植片を用いた血管形成手術後の静脈内膜過形成を減衰させる戦略を開発するための動脈血圧に静脈を与えることによって、静脈内膜過形成を実験的に作り出すことを目的とする。

Although vein grafts have been commonly used as autologous grafts in revascularization surgeries for ischemic diseases, the long-term patency remains poor ...

当社のプロトコルは、静脈内膜過形成の分野の研究者に、簡単で費用対効果の高い、再現性のある臨床関連モデルを提供します。当社のプロトコルは、経済的、臨床的、技術的にバランスが取れています。したがって、インビボ設定にインビトロの結果を適用したい研究者に強くお勧めします。私たちは、虚血性心疾患および下肢疾患における新しい治療戦略の開発のために、より大きな動物モデルにプロトコルを適用できると考えています。私たちのプロトコルは、主に心血管外科の分野に関連しています。しかし、末期腎疾患の患者における動静脈瘻の変性変化に対処するためにも使用され得る。局所麻酔薬、および予防用抗生物質鎮痛投与後、10%ポビトンヨウ素で手術部位を消毒する。そして、麻酔を受けた雄の日本の白いウサギの頸部領域に外科メスで50〜60ミリメートルの切開を行います。皮下組織と筋膜を鈍く解剖し、頸静脈の20〜30ミリメートルのセグメントを露出させる。そして、露出した静脈のすべての枝をリゲートするために4-0シルク縫合糸を使用してください。内側と外部の頸静脈の周りに2-0シルク縫合糸を置き、静脈の遠位側の静脈壁に1ミリメートルの切開を行います。切り傷から静脈の近位側に向かって2フランス風のバルーンカテーテルを挿入します。そして、頸静脈の遠位部位に2-0シルク縫合糸をリゲートします。気球を200マイクロリットルの空気で膨らませる。そして、バルーンを使用して、内皮剥離のために静脈のインティマを3回否定します。3回目の通過後、静脈の近位端をリゲートし、遠位部位で静脈を切断する。次に、遠位から近位方向に収穫された静脈に20ゲージの静脈内カテーテルを挿入し、近位部位で静脈を切断する。頸動脈を収穫頸静脈と介在させるために、20〜30ミリメートルの周頸動脈のセグメントを露出させる。そして、近くの静脈と神経から慎重に動脈を分離します。露出した静脈のすべての枝を4-0シルク縫合糸でリゲートします。そして、静脈内投与 200 ヘパリンナトリウムのキログラム当たり国際単位.外科用ゴムクランプで動脈の近位および遠位端を締め付けます。そして、クランプ間の動脈を切断します。切開頸動脈に正常な生理液を近位に注入し、遠位で動脈を遠位に注入する。そして、逆エンドツーエンドの方法で血管を吻合するために動脈の近くに収穫静脈を置きます。静脈の近位端を動脈の遠位端まで吻合するには、8-0のアンカーステッチを2つ置きます。サイトと反対側のサイトでポリプロピレン。アンカーステッチの間の吻合線の上側をステッチします。動脈と静脈の移植片を逆さまにします。そして、吻合ラインの残りの部分にステッチを追加します。次に静脈から静脈内カテーテルを取り出し、静脈移植片を近位にクランプする。頸動脈を遠位に落とす。そして、静脈移植片が徐々に拡大するかどうかを観察する。8-0 を使用するポリプロピレンは縫合糸を中断し、動脈の近位端まで静脈の遠位端を吻合する。そして、吻鼻炎部位からの出血をチェックするために動脈を取り除く。最後に、4-0シルク縫合糸で内部頸動脈をリゲートして、不十分な流出状態をシミュレートし、内耳肥大症を促進します。その後、生理死して傷をきれいにします。3-0ポリグラクチン910で層を切開します。そして、ウサギは、その家のケージに動物を返す前に、監視で完全に回復することができます。この代表的な画像では、静脈間位置手術後2週間で正常な内膜過形成が観察できる。ここで、インティマル過形成形態に対するマイクロRNA-145装填ポリ(乳酸-コグリコール酸)ナノ粒子の治療効果が観察できる。実際、多発性(乳酸-コグリコール酸)ナノ粒子を装填したマイクロRNAによる治療は、内膜過形成の著しい減衰をもたらす。さらに、細胞増殖マーカーであるKi-67の免疫染色は、未熟な増殖状態から成熟した収縮状態への血管平滑筋細胞の表現型変化を示すmicroRNA-145処置群内のKi-67陽性細胞の数が少ないことを明らかにしている。私たちのプロトコルの主な目標は、移植された移植片の愛を達成することです。また、頸動脈を脱クランプした後に移植片が膨張することを確認することも重要である。

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Research

JoVE Journal

Medicine

医学

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新生内膜過形成はarterialized静脈の狭窄症の主な原因です。右外頸静脈は、Sprague...

ラットの総頚動脈で外頚静脈グラフトの介在：洗練された顕微鏡下手術の訓練

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このビデオは、ウサギの頸動脈と頸静脈が介在し、静脈に動脈圧がかかることで静脈内膜過形成を誘発する様子を示しています。このモデルは、分子的および遺伝的介入を調査するのに役立ちます...

頸動脈と頸静脈の介在:ウサギモデルにおける静脈内膜過形成を誘発する技術

出典:Wanderer, S., et al.ウサギの動脈ポーチ顕微外科分岐動脈瘤モデル。J. Vis. Exp.

エラスターゼ処理血管パウチを用いたウサギの実験的動脈瘤モデルの開発

このビデオは、ラットの静脈介在手術後の筋内膜過形成の発症を研究するモデルを示しています。...

静脈介在モデル：バイパスグラフト開存を研究するための適切なモデル

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耐久性のある遺伝子発現により一般的な頚動脈移植に頸静脈の家兎モデル

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糖尿病性ウサギにおける後肢虚血の前臨床モデル

頭蓋内動脈瘤治療のための血管内装置の開発と試験は依然として非常に重要です。今日使用されているほとんどの動脈瘤モデルは、動脈変性壁の重要な特性または真の分岐の血行動態のいずれかを見逃している。そこで、ウサギにおける新規な動脈パウチ分岐模型の設計を目指した。...

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ブタ静脈移植病モデルの確立と評価

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学ぶ静脈移植後の内膜過形成をウサギの頸静脈・頸動脈間位置モデルで再現する方法。動脈血圧下での血管変化を評価し、虚血性心疾患や下肢疾患の治療戦略開発に有用な実験系を提供します。

静脈移植を用いた血管形成術を模したウサギ静脈間位置モデルによる動脈血圧下の内膜過形成の評価

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