Name: ビブラートムカット心筋切れ切り切れからヒト心室心筋細胞を分離 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-05-10T13:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 19 s
Description: 学ぶ ビブラトムカット心筋切片からヒト心室心筋細胞を分離する方法。輸送後のサンプルにも対応し、1mgあたり最大200個のカルシウム耐性細胞を高収率で取得可能。心疾患の電気生理学的・構造解析に有用です。

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LMUミュンヘンのウォルター・ブレンデル実験医学センターのアンドレアス・デンドルファーに、スライスプロトコルの助けに感謝したいと思います。ヒト心筋組織サンプルを提供するために、心臓外科科、アーランゲン大学病院、ヘンドリック・ミルティング、エーリッヒ・アンド・ハンナ・クレシュマン研究所、ルール大学ボーフム、ムハンナド・アルカッサーのヒト心筋組織サンプルに感謝したいと思います。フローサイトメトリーのサポートのために、私たちはサイモン・フェルクルとトランスレーショナル・リサーチ・センター(TRC)、大学病院アーランゲンの同僚に感謝したいと思います。また、セルラー分子生理学研究所のローレンツ・マクカーゴとセリーヌ・グリュニンガーに感謝します。
この研究は、DZHK(ドイツ心臓血管研究センター)、エアランゲン・ニュルンベルク大学病院の学際学領域研究センター(IZKF)、アーランゲン・ヌルンベルク大学、エルランゲン・ニュルンベルク大学によって支援されました。

ラットを用いた実験はすべて、ドイツのバイエルン州ミッテルフランケン動物ケア・使用委員会によって承認されました。ヒト心臓組織サンプルの収集と使用は、エアランゲン・ニュルンベルク大学とルール大学ボーフム校の機関審査委員会によって承認されました。研究は、ヘルシンキの宣言のガイドラインに従って行われました.患者は組織採取前に書面によるインフォームド・コンセントを与えた。
雌ウィスターラット(150〜200g)を商業的に得て、100mg/kgのチオペンタールナトリウム腹腔内に注入し、子宮頸部脱臼で安楽死させ、続いて胸部の胸部切開術と切除を行った。ヒト心臓組織サンプルは、機械的補助装置の移植中に左心室の心臓核から採取された、中隔筋切除術から、ファロー矯正手術の四徴から、または、外植された心臓の自由な左室壁から採取した。以下のプロトコルは、ヒト心室組織からの分離について説明する。ラット心筋細胞の単離は、それに応じて行われたが、異なる酵素で行われた(材料表を参照)。このプロトコルの概略的なワークフローを図 1に示します。
1. バッファー、溶液、酵素の調製
<ol><li>表 1に示すように、バッファとソリューションを準備します。</li>
	<li>ウォームアップソリューション1、2、3と37°Cに変更されたタイロードのソリューション。 使用するまで、4°Cで切削液を保管してください。 注:1~2個の心筋スライスでは、35mm組織培養皿1種での分離には、合計約15mL、8mL、および5mLの溶液1、2、および3が必要です。複数の皿の同時の筋細胞の分離のためにそれに応じてスケールアップ。切断液は、凍結し、数ヶ月間-20°Cで保つことができます。</li>
	<li>プレチル15 mL遠心チューブに1mgのプロテイナーゼXXIV( 材料表を参照)を秤量し、使用するまで氷の上に保存します。これは、1つのサンプルを処理するためのものです。それに応じて量をスケールアップします。プロテイナーゼとコラゲナーゼを混ぜないでください。</li>
	<li>8mgのコラゲラーゼCLSI( 材料表を参照)をプレチル15 mL遠心チューブに計量し、使用するまで氷の上に保存します。これは、1つのサンプルを処理するためのものです。それに応じて量をスケールアップします。プロテイナーゼとコラゲナーゼを混ぜないでください。 注意:フェイスマスクを着用するか、ヒュームフードの下で働き、酵素粉末の吸入を避けてください。 注:酵素活性は、異なるロットで異なる場合があります。したがって、最適濃度は異なる場合があり、新たに購入した各酵素16で決定する必要があります。</li>
</ol>2. 心筋組織の保管と輸送
<ol><li>冷却された4°C切断溶液でヒト心臓サンプルを貯蔵・輸送する(表1)。</li>
	<li>さらに組織処理やビブラートメのスライスに同じ溶液を使用してください。 注:生検と外科心臓サンプルは、4°Cで切断溶液にすぐに移管され、このプロトコルの適用前に最大36時間4°Cで保存または輸送することができます。</li>
</ol>3. 組織の加工とスライス
注:組織スライスのプロトコルは、フィッシャーら15.
<ol><li>組織ブロックのトリミング 注意:ヒト心臓組織は感染する可能性がある。常に保護摩耗を使用し、あなたの機関の安全規則に従ってください。使用済みブレードを注意深く取り扱い、安全容器に捨てます。<ol>
<li>20 mLの冷たい切断液を充填した100mmの組織培養皿に試料を入れ、冷却された4°Cプレートに保管します。</li>
		<li>過剰な線維組織と外心脂肪をメスで除去します。経壁標本の場合は、内心の近くの柱状および組織層を除去する。 注:線維組織は硬く、白く見えます。脂肪は通常柔らかく、黄色に白く表示されます。放射性組織層と心筋組織層は、外心層の心筋と比較して、緩い組織組成および非整列繊維配向から同定することができる</li>
		<li>最適なビブラートメ加工のために、より大きな組織標本からメスで約8 mm x 8 mm x 8 mm の長方形の組織ブロックを切断します。より小さな生検のためにこのステップをスキップし、アガロース埋め込みに移動します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>低融点アガロースへの心臓組織の埋め込み<ol>
<li>ガラスビーカーで10mLの切断液で400mgの低融点アガロースを沸騰させる。 注意:火傷を避けるために手袋と安全メガネを着用してください。熱保護摩耗だけで熱いガラス製品を扱う。</li>
		<li>熱い、溶解したアガロースゲルで10 mLの注射器を充填する。注射器を密封し、アガロースを37°Cの水浴で少なくとも15分間平衡させます。</li>
		<li>鉗子を使用して、トリミングされた心臓標本または生検を、心外膜を下に向けた清潔な35mm組織培養皿に入れ、滅菌綿棒で余分な液体を取り除きます。</li>
		<li>平衡したアガロース(ステップ3.2.2)を、シリンジを空にして組織の上に注ぎます。アガロースを注ぎながら鉗子で動きに対して組織を固定します。組織がアガロースに完全に浸かっていることを確認してください。</li>
		<li>すぐに皿を氷の上に置き、アガロースを10分間固めます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>心筋をスライスする<ol>
<li>ビブラートメのブレードホルダーに新しいカミソリの刃を取り付け、可能であればブレードのz偏向を調整してビブラートメをキャリブレーションします。 注:このプロトコルは、赤外線アシストキャリブレーションデバイスを備えたビブラートメを使用して、最小のz偏向(測定された偏向<0.1 μm)で水平位置にブレードを整列させます。</li>
		<li>メスを使用して、ビブラートメの標本ホルダーに合ったアガロース組織ブロックを切除します。安定性を確保するために、組織がまだ十分にアガロース(アガロースマージン≥ 8 mm)に浸漬されていることを確認してください。</li>
		<li>シアノアクリル酸接着剤と穏やかな圧力の薄い層で標本ホルダーにアガロースブロックを固定します。</li>
		<li>組織を持つ標本ホルダーをビブラートメ浴に入れる。切断液で浴を充填し、ビブラートメの外側冷却タンクに充填された砕いた氷で加工全体を通して4〜6°Cに保ちます。</li>
		<li>300 μm 厚いスライスを生成し、速度は≤0.1 mm/s、振動周波数は 80 Hz、横振幅は 1.5 mm、ブレード角度は 15°です。スライスを扱うときは、組織自体の代わりにアガロースを保持し、組織の損傷を避けます。スライスは、必要に応じて最大2時間4°Cで切削液に保管してください。 注:心筋細胞は、心外膜に平行に配向されています。したがって、過度の筋細胞損傷を避けるために、外心に平行に切断することが重要である。分離には均一な厚さのスライスのみを使用する必要がありますので、最初の1〜3スライスを破棄することをお勧めします。しかし、小さな組織生検の場合は、最初のスライスのみを廃棄します。</li>
		<li>40-100xの倍率の標準的な軽い顕微鏡の下で心筋細胞の位置合わせを点検しなさい。</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. 組織消化
<ol><li>ラボシェーカーにヒートプレートを置き、37°Cに温めます。 ラボシェーカーを65 rpmで起動します。</li>
	<li>プロテイナーゼ(ステップ1.3で調製)を溶液1(ステップ1.1および1.2)の2mLに溶解し、使用するまで37°Cでインキュベートする。プロテイナーゼとコラゲナーゼを混ぜないでください。</li>
	<li>2 mLの溶液1(ステップ1.1および1.2)にコラゲターゼ(ステップ1.4で調製)を溶解し、使用するまで37°Cでインキュベートする。プロテイナーゼとコラゲナーゼを混ぜないでください。 注意:溶存酵素は皮膚や目の怪我を引き起こす可能性があるため、保護眼鏡と手袋を着用してください。</li>
	<li>クロリドカルシウム(CaCl2)をコラゲナーゼ含有溶液(ステップ4.3で調製)に加え、5μMの最終濃度にします。</li>
	<li>鉗子を使用して、ビブラートメ浴から5 mLのプレチル切断溶液(ステップ1.1および1.2)で満たされたきれいな60mmの組織培養皿に組織スライスを移し、氷の上に置きます。</li>
	<li>慎重にブレードまたは鉗子で心筋組織からアガロースを除去します。 注意:心筋細胞に損傷を与える可能性があるため、心筋切れに余分な張力やせん断応力を避けてください。</li>
	<li>最初の洗浄を行うために、ヒートプレートに清潔な35mmティッシュ培養皿を置き、2mLのプリウォーム(37°C)溶液1で満たします。1~2本の心筋スライスを鉗子で準備した皿に移します。溶液を1 mLピペットで吸引し、洗浄工程2xを実行して切削液の残骸を除去する。 注:心臓スライスを吸引しないでください。溶液とスライスは、攪拌熱板上の35°Cの一定温度に留まる必要があります。必要に応じて、ヒートプレートの温度を調整します。</li>
	<li>溶液1を皿から取り出し、2mLのプロテイナーゼ溶液を加える(ステップ4.2)。ヒートプレート上で65rpmで12分間インキュベートする。</li>
	<li>2mLのプレウォーム溶液1(37°C)で2倍洗浄します。</li>
	<li>皿から溶液1を取り出し、コラゲナーゼ溶液2mLを加える(ステップ4.3および4.4)。ヒートプレート上で少なくとも30分間、65rpmでインキュベートする。</li>
	<li>軽顕微鏡で皿を置くことによって30、35、40分等の自由な個々の筋細胞を点検しなさい。ソリューションの大幅な冷却を避けるために迅速に作業します。 注:必要な消化時間は、組織の体質や線維化の程度によって異なる場合があります。組織が目に見えて柔らかくなり、穏やかに引っ張られたときに容易に解約するとすぐに、最適な消化時間に達した。十分な組織が利用可能な場合は、いくつかのスライスを様々な消化時間と並行して消化することができます。</li>
	<li>組織が消化され、個々の筋細胞が見える(ステップ4.11)場合は、2mLのプリウォーム溶液2(37°C)で2倍洗浄し、2mLで再び充填します。</li>
</ol>5. 組織解離
<ol><li>慎重に繊維を引き離すことによって鉗子で消化された組織スライスを解離します。</li>
	<li>1回使用パスツールピペット(開口径>2mm)でピペットを数回慎重に使用してください。 注:鉗子およびピペットの使用は、機械的ストレスを誘発し、心筋細胞損傷を引き起こす可能性があります。しかし、細胞の分離には重要なステップです。細かい鉗子を使用して細胞の損傷を最小限に抑え、スライスを慎重に小さく切り分けます。</li>
	<li>軽顕微鏡下で解放された棒状心筋細胞がないか確認します。</li>
</ol>生理的カルシウム濃度の再導入
<ol><li>熱板上で35°Cで撹拌しながら、カルシウム濃度を5μMから1.5mMにゆっくりと増加させます。10 mM および 100 mM CaCl2 ストックソリューションを使用してください。推奨ステップ:20、40、80、100、150、200、400、800、1,200、1,500 μM.各ステップ間の5分のインキュベーション間隔で増加したカルシウムレベルに細胞を適応させます。</li>
	<li>鉗子で未消化のティッシュチャンクを注意深く取り除くか、カルシウム増加の終わりに180 μmの細孔サイズのナイロンメッシュを通して細胞懸濁液をろ過する。</li>
</ol>7. 機械的アンカップリング剤の除去
<ol><li>撹拌を停止し、1,000 μL ピペットで溶液の1/3(約700 μL)を上からゆっくりと取り除きます。心筋細胞の吸引を避けてください。 注:未消化の組織が除去された場合、心筋細胞は、無細胞溶液の吸引を容易にする皿の中心に蓄積します。そうでなければ、細胞溶液を15mL遠心管に移し、細胞が35°Cで10分間沈降させ、700μLの上清を吸引し、廃棄し、細胞を再懸濁し、35mm組織培養皿に戻し、ステップ7.2に進みます。</li>
	<li>700 μLの溶液3を細胞に加え、ヒートプレート上で撹拌を再開し、10分間インキュベートする。</li>
	<li>手順 7.1 と 7.2 を繰り返します。</li>
	<li>溶液を15 mL遠心分離管に移し、心筋細胞を最低10分間、室温で最大30分間沈み、50 x g で1分間回転させます。上清を完全に取り除き、変更されたTyrodeの溶液または所望の実験バッファーで再中断します。 注意:心筋細胞は、使用前に37°Cおよび5%CO2で数時間、変性タイローデの溶液(表1)に保存することができます。</li>
	<li>40倍と200倍の倍率で標準的な光学顕微鏡で細胞の品質を確認します。 注:心筋細胞の約30〜50%は、膜ブレブなしで棒状、滑らかで、明確なクロスストリオンを表示する必要があります。生存可能な細胞の5〜10%だけが自発的な収縮を示すべきである。</li>
</ol>

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著者らは開示するものは何もない。

生きている心筋細胞の分離は40年以上前に確立され、心臓研究における多くの実験的アプローチの前提条件であるが、予測不可能な結果を伴う困難な技術のままである。酵素溶液を用いた冠状動脈の灌流による心筋細胞の単離は、一般的に小動物の心臓に使用され、多数の生存細胞を生み出す。しかし、これには比較的複雑なシステムと専門知識が必要です。さらに、ほとんどのヒト組織サンプルは、その小さなサイズまたは冠状動脈枝の欠如のために、この方法には適しておらず、ヒト心筋細胞の単離のための新しい方法が望ましい。ここで説明するプロトコルは、薄い心臓組織スライスの外傷性発生に基づいており、その後酵素消化を受ける。左心室補助装置移植からの頭頂核、中隔筋切除術からの心外膜生検、または外植された心臓(補足表1参照)などの動物心臓およびヒト心筋からの心筋標本に適用することができ、その後の実験に使用できる十分な量の生存可能なカルシウム耐性心筋細胞を確実に産生する。17
シンチ組織チャンクよりもビブラートカット組織スライスからの筋細胞の収量が高い主...

心筋細胞生理学に関する重要な洞察への道を開いた精膜技術は、無傷の心臓から生きている心室心筋細胞の分離である1.分離された心筋細胞は、正常な細胞構造と機能、または生体内実験の結果を研究するために使用することができます。例えば、心疾患の動物モデルにおける細胞電生理学または興奮収縮結合の変化を評価する。さらに、分離された心筋細胞は、細胞培養、薬理学的介入、遺伝子導入、組織工学、および他の多くの用途に使用することができる。したがって、心筋細胞の分離のための効率的な方法は、基礎的および翻訳的な心臓研究にとって基本的な価値がある。
げっ歯類などの小さな哺乳類や、豚やイヌなどの大型哺乳類の心筋細胞は、一般的に、粗なコラゲアーゼおよび/またはプロテアーゼを含む溶液で心臓の冠状灌流によって単離される。これは心筋細胞単離のための「ゴールドスタンダード」法として説明されており、その結果、生存細胞の70%までの収率が2となる。このアプローチは人間の心臓でも使用されており、その結果、許容可能な心筋細胞の収量は,3、4、5,5である。しかし冠状動脈灌流は、無傷の心臓や冠状動脈枝を含む大きな心筋のくさびが利用できる場合にのみ実現可能であるため、ほとんどのヒト心臓検体は、その小さなサイズと適切な血管構造の欠如のために、このアプローチには適していません。したがって、ヒト心筋細胞の単離は困難です。
ヒト心筋標本は主に可変サイズの組織塊(約0.5 x 0.5 x 0.5 cm〜2 x 2 x 2 x 2 cm)から成り、心外筋生検6、中隔筋切除術7、VAD移植8、または外植体9から得られる。心筋細胞の分離のための最も一般的な手順は、はさみまたはメスを使用して組織をミンチから始める。細胞間接触は、カルシウムフリーまたは低カルシウムバッファーに浸漬することによって破壊される。その後、粗酵素抽出物またはプロテアーゼ(トリプシン)、コラゲラーゼ、ヒアルロニダーゼ、エラスターゼなどの酵素を含む複数の消化ステップが続き、細胞外マトリックスの崩壊および心筋細胞の解放が生じる。最終的な重要なステップでは、生理的カルシウム濃度を注意深く回復しなければならないか、カルシウムパラドックス10、11、1211,12による細胞損傷が起こり得る。10この分離アプローチは便利ですが、通常は非効率的です。例えば、ある研究では、13の実験に適した十分な数の心筋細胞を得るために、ほぼ1gの心筋組織が必要であることがわかった。低収量の考えられる理由は、組織をミンチする比較的過酷な方法です。これは、これらの筋細胞が酵素消化によって放出される可能性が最も高いが、チャンクエッジに位置する心筋細胞に特に損傷を与える可能性がある。
ヒト検体から得られる細胞の分離効率と質に影響を与える可能性のあるもう一つの側面は、組織虚血の持続時間である。ほとんどのプロトコルは、良い結果のための前提条件として実験室への短い輸送時間を言及しています。これは、近くの心臓手術施設を持つ実験室にヒト心室心筋細胞の研究を制限します。これらの制限は、ヒト心筋細胞の動物モデルからの重要な知見の検証を妨げる。したがって、少量の組織からの高い心筋細胞収量を可能にする改善された分離プロトコルは、輸送時間の延長後に重大な損傷を受けることなく、望ましい。
ここで説明する分離プロトコルは、ビブラート膜14,15,15で生成された薄い心筋組織スライスの酵素消化に基づく。我々は、組織スライスからの分離は、はさみで刻まれた組織塊からのよりはるかに効率的であることを実証する。この方法は、少量の心筋組織から生じるヒト心筋細胞の高収量を可能にするだけでなく、最大36時間の冷たい心肢麻痺溶液中に保存または輸送された標本にも適用可能である。

<table><tbody><tr><td>Chemicals</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>2,3-butanedionemonoxime</td><td>カール・ロス</td><td>3494.1</td><td>純度>99%</td></tr><tr><td>ウシ血清アルブミン</td><td>カール・ロス</td><td>163.2</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>カール・ロス</td><td>5239.2</td><td></td></tr><tr><td>クレアチン一水和物</td><td>アルファ・エーザー</td><td>B250009</td><td></td></tr><tr><td>グルコース</td><td>メルク</td><td>50-99-7</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>カール ロス</td><td>9105.3</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>カール ロス</td><td>P017.1</td><td></td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>カール ロス</td><td>3904.2</td><td></td></tr><tr><td>L-グルタミン酸</td><td>フルカ バイオケミカ</td><td>49450</td><td></td></tr><tr><td>低融点アガロー</td>ス <td>カール ロス</td><td>6351.5</td><td></td></tr><tr><td>MgCl<サブ>2</サブ>×6H<サブ>2</サブ>O</td><td>カール・ロス</td><td>A537.1</td><td></td></tr><tr><td>MgSO<サブ>4</サブ></td><td>シグマ・アルドリッチ</td><td>M-7506</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>カール・ロス</td><td>9265.1</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>カール・ロス</td><td>8551.2</td><td></td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td>シグマ・アルドリッチ</td><td>P6148</td><td></td></tr><tr><td>タウリン</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T8691</td><td></td></tr><tr><td>Dyes</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Di-8-ANEPPS</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>D3167</td><td></td></tr><tr><td>Fluo-4 AM</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>F14201</td><td></td></tr><tr><td>FluoVolt</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>F10488</td><td></td></tr><tr><td><ストロング>エンザイム</ストロング></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>コラゲナーゼ CLS I 型</td><td>Worthington</td><td>LS004196</td><td>ヒト組織に 4 mg/mL (活性: 280 U/mg)</td></tr><tr><td>コラゲナーゼ CLS II 型</td><td>Worthington</td><td>LS004176</td><td>ラット組織に 1.5 mg/mL (活性 330 U/mg)</td></tr> プロ<tr><td>テアーゼ XIV</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P8038</td> ラット<td>組織に 0.5 mg/<mL/Br/> (活性 &ge; 3.5 U/mg)</td></tr><tr><td>プロテイナーゼ XXIV</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>P5147</td><td>0.5 mg/mL (活性: 7-14 U/mg)</td></tr><tr><td>Material</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cell analyzer (LSR Fortessa)</td><td>BD Bioscience</td><td>649225</td><td></td></tr><tr><td>遠心分離チューブ、15 mL</td><td>Corning</td><td>430790</td><td></td></tr><tr><td>遠心分離チューブ、50 mL</td><td>Corning</td><td>430829</td><td></td></tr><tr><td>コンパクト シェーカー</td><td>エドマンドB&uuml;hler</td><td>KS-15 B control</td><td>攪拌方向:水平</td></tr><tr><td>使い捨てプラスチックパスツールピペット</td><td>Carl Roth</td><td>EA65.1</td><td>細胞トリチュレーションには、先端内径 &ge;2 mm</td></tr><tr><td>鉗子</td><td>FST</td><td>11271-30</td><td></td></tr><tr><td>ヒートブロック</td><td>VWR</td><td>BARN88880030</td><td></td></tr><tr><td>ナイロンネットフィルター、180&マイクロ;m</td><td>Merck</td><td>NY8H04700</td><td></td></tr><tr><td>TC Dish 100, Standard</td><td>Sarstedt</td><td>83.3902</td><td></td></tr><tr><td>TC Dish 35, Standard</td><td>Sarstedt</td><td>83.3900</td><td></td></tr><tr><td>TC Dish 60, Standard</td><td>Sarstedt</td><td>83.3901</td><td></td></tr><tr><td>Vibratome (VT1200S)</td><td>Leica</td><td>1491200S001</td><td>Z-Deflectionの赤外線補正用VibroCheckが含まれています</td></tr></tbody></table>

ビブラートムカット心筋切れ切り切れからヒト心室心筋細胞を分離

Isolation of Human Ventricular Cardiomyocytes from Vibratome-Cut Myocardial Slices

動物およびヒトの心臓から心室心筋細胞を分離することは、心臓研究の基本的な方法である。動物の心筋細胞は、一般的に消化酵素と冠状動脈灌流によって単離される。しかし、ヒト心筋細胞の単離は、ヒト心筋標本が冠状灌流を許容しないのが通常であり、代替分離プロトコルは生存細胞の収率が悪いため、困難である。さらに、ヒト心筋標本はまれであり、オンサイト心臓手術を受けた機関でのみ定期的に入手可能である。これは、動物からヒト心筋細胞への所見の翻訳を妨げる。ここで説明する信頼性の高いプロトコルは、心室筋細胞をヒトおよび動物心筋膜から効率的に分離することを可能にする。細胞の損傷を最小限に抑えながら表面対体積比を高めるために、300μm厚の心筋組織スライスは、ビブラートメを用いた心筋標本から生成される。その後、組織スライスをプロテアーゼとコラゲアーゼで消化します。ラット心筋は、フロー細胞測定細胞計数によって、プロトコルを確立し、生存可能なカルシウム耐性筋細胞の収量を定量化するために使用された。一般的に使用される組織チャンク法との比較は、棒状心筋細胞の有意に高い収率を示した(41.5±11.9対7.89±3.6%、p<0.05)。このプロトコルは、ラット心筋と同様に収率が著しく高い失敗したヒト心筋(45.0 ±15.0対6.87±5.23細胞/mg、p<0.05)に翻訳された。特に、提示されたプロトコルでは、生存可能なヒト心筋細胞(9〜200細胞/mg)の合理的な数を最小限の組織(<50mg)から分離することが可能である。したがって、この方法は、人間と動物の両方の心臓からの健康で失敗した心筋に適用可能である。さらに、冷たい心肢麻痺溶液中で最大36時間保存されたヒト組織標本から興奮性および収縮性筋細胞を分離することができ、オンサイト心臓手術を受けずに機関の実験室に特に有用な方法を作り出す。

分離効率を検証するために、ラット心筋と共にプロトコルを使用し、その結果生じる生存可能な筋細胞の数を冠血球灌流による単離および小組織チャンクからの分離(チャンク分離、 図 2).同じ心臓から組織スライスからのチャンク分離と分離を行った。しかし、冠状灌流による単離のために、心臓全体が使用された。冠状灌流は主に棒状および交差する心筋細胞を生み出した。心筋切れから分離すると、棒状細胞の割合は低かったが、総数は依然として高かった。対照的に、組織チャンクから分離した後、回収された棒状細胞はごくわずかである(図 2A).フローサイトメトリーを用いて、結果を定量的に比較した。比較的大きなサイズとクロスストリケーションのために、心筋細胞は通常、前方および側面散乱の両方に大きな値を示す。これらの特性は、フローサイトメトリック細胞分析装置を用いて棒状の筋細胞を数えるために使用され、ハイパー収縮および丸みを帯びた心筋細胞から棒状を識別する単純な格子状スキームを適用した。(補足図 1).代表的なドットプロットは...

提示は、ビブラートメカット心筋切れスライスからヒトおよび動物心室心筋細胞を単離するためのプロトコルである。カルシウム耐性細胞の高収率(最大200細胞/mg)は、少量の組織(<50mg)から得ることができます。このプロトコルは、最大36時間の冷たい虚血にさらされた心筋に適用可能です。

The isolation of ventricular cardiac myocytes from animal and human hearts is a fundamental method in cardiac research. Animal cardiomyocytes are commonly ...

このプロトコルは、数時間の輸送時間後でも、人間と動物の心臓からのサンプルで動作します。ミリグラム当たり最大200個の筋細胞をビブラートカット組織スライスから分離することができます。心筋細胞の電気生理学的、構造的および生化学的分析は、心疾患のメカニズムを発見し、よりよく理解するのに役立ちます。100ミリの組織培養皿を充填した後、20ミリリットルの冷たい切断溶液を用いて、培養皿に組織サンプルを入れる。文化皿を4度に冷却した皿の上に置いておきます。動物、特にヒトの生体組織サンプルは感染する可能性があることを覚えておいてください。はさみまたはメスを使用して、過剰な線維組織および外心脂肪をサンプルから除去する。より大きな組織サンプルの最適なビブラート処理のために、メスを使用して組織から8ミリメートルの立方体を切断します。生検からの小さいサンプルのために、これは必要ではない。一つは、外膜脂肪層によって外心を識別することができます.余分な脂肪を取り除いた後、組織ブロックを皿の中に入れ、心外膜を下に向けます。組織埋め込みの準備のために、切断溶液の10ミリリットルで低融点アガロースの400ミリグラムを沸騰させる。熱く溶解したアガロースゲルで10ミリリットルの注射器を充填します。注射器を密封し、少なくとも15分間摂氏37度の水浴に入れ、アガロースが平衡化できるようにします。鉗子を使用して、トリム標本をきれいな35ミリメートルのティッシュ培養皿に移し、心外膜を下向きにする。次いで、滅菌綿棒で、試料から余分な液体を除去する。鉗子でそれを保持することによって、動きに対して標本を固定します。そして、アガロースの注射器をその上に空にし、標本を完全に浸すことを確認します。すぐに皿を氷の上に置き、アガロースを10分間固めます。ビブラートメのブレードホルダーに未使用のカミソリの刃を取り付けます。可能であれば、ビブラートメをキャリブレーションし、ブレードのZ偏向を調整する。メスを使用して、ビブラートメの標本ホルダーに合ったアガロース組織ブロックを切除します。安定性を確保するために、組織がまだ十分にアガロースに浸存していることを確認してください。アガロースマージンで、少なくとも8ミリメートルです。シアノアクリル酸接着剤の薄い層を標本ホルダーに塗布します。そして、アガロース組織ブロックをホルダーにそっと押し込みます。カッティングソリューションでビブラートメ浴を作ります。次に、ビブラートメの外冷タンクを砕いた氷で満たし、4〜6°Cの温度を維持し、切断工程全体を通して。アガロース組織ブロックを含む標本ホルダーをビブラートメ浴中に入れる。原稿に記載されているビブラートメの設定を用いて、厚さ300マイクロリットルのスライスを生成する。心室壁に心筋細胞繊維が整列する方法であるため、並列外心のセクションを作成することが重要です。そうしないと、損傷が多すぎます。標準的な光顕微鏡を使用して、心筋細胞と組織スライスの位置合わせを確認します。組織を損傷しないように、組織自体の代わりにアガロースを保持します。心筋細胞繊維は、一様に整列させるべきであり、筋細胞は、収縮してはならない。ラボシェーカーにヒートプレートを置き、摂氏37度に温めます。ラボシェーカーを65 RPMで起動します。プロテイナーゼを溶液1の2ミリリットルに溶解する。コラゲターゼを2ミリリットルの溶液1に溶解する。しかし、プロテイナーゼとコラゲナーゼを混ぜないでください。クロコラゲーゼ溶液に塩化カルシウムを加え、最終的な濃度を求めて、5マイクロモルを加える。両方のソリューションを摂氏37度でインキュベートします。鉗子を使用して、きれいな60ミリメートルの組織培養皿に組織スライスを移します。5ミリメートルの予冷切断液を使用。皿を氷や冷たい皿の上に置いておき、ブレードまたは鉗子を使用して、組織からアガロースを慎重に取り除きます。組織スライスの最初の洗浄を行うために、ヒートブレード上に清潔な35ミリメートルの組織培養皿を置きます。そして、事前に温めた溶液1の2ミリメートルでそれを満たします。1つまたは2つの組織スライスを準備した皿に移します。その後、洗浄ステップのために、1ミリメートルのピペットを使用してください。スライスを洗浄した後、皿から溶液1を取り出し、2ミリリットルのプロテイナーゼ溶液を加えます。65 RPMのシェーカーで、ヒートブレードでスライスを12分間インキュベートします。組織スライスをさらに2回洗い、2ミリリットルの予め温めた溶液1で洗います。次に、溶液1を皿から取り出し、2ミリリットルのコラゲターゼ溶液を加えます。65 RPMで振って、熱ブレード上で少なくとも30分間、スライスをインキュベートします。15分間のインキュベーションの後、軽い顕微鏡で皿を調べることによって、遊離の個々の筋細胞を点検する。個々の筋細胞が見えるまで、5分ごとにチェックを続けます。次いで、スライスを2回洗浄することによりalt消化し、2ミリリットルの予熱溶液2を用いた。そして、溶液2の2ミリリットルで、皿を補充します。慎重に細かい鉗子を使用して、組織スライスの繊維を引き離します。心筋細胞に損傷を与えないように、慎重に作業を続けます。そして、あなたのピペットを過ぎて単一の使用で、数回ピペット。次に、棒状の心筋細胞が分離していることを確認し、皿を調べることによって、軽顕微鏡下で。皿を熱板の上に37度に戻し、揺して動揺させます。10ミリモルおよび100ミリモル塩化カルシウムストック溶液を添加することにより、組織懸濁液のカルシウム濃度を5マイクロモルから1.5ミリモルにゆっくりと増加させる。カルシウムの増加が完了したら、残りの未消化組織チャンクを除去するために鉗子を使用してください。まず、懸濁液の撹拌を停止する。次に、1000マイクロリットルのピペットを使用して、溶液の1/3を、懸濁液の上部からゆっくりと取り除いた。心筋細胞の吸引を避けてください。その後、700マイクロリットルの溶液3を細胞に加える。10分間の撹拌の後、これらの洗浄手順を繰り返します。懸濁液を15ミリリットルの遠心管に移します。そして、心筋細胞は、最低10分と最大30分間、室温で沈下します。上清を完全に取り除く。そして、改変されたタイロード溶液または所望の実験バッファー中のペレットを再懸濁させる。軽い顕微鏡を使用して、細胞の品質を確認してください。心筋細胞の30〜50%は、膜ブレブなしで滑らかなロッド成形する必要があります。そして、表示、明確なクロスストリオン。分離効率を検証するために、プロトコルをラット心筋に適用した。そして、冠状動脈灌流および単離を介した分離と比較して、小さな組織塊から。プロトコルを使用する場合、ロッド状の細胞の割合が低く、次いで灌流によって分離した後に観察された。しかし、総数はまだ高かった。対照的に、組織チャンクからの分離は、より少ない棒状細胞を生み出した。フローサイトメトリーは、その結果を定量的に比較するために使用した。組織スライスからの心筋細胞の単離は、冠状灌流によって得られた収量に達しない。しかし、組織チャンクから筋細胞分離よりも有意に高い収率を提供する。次に、プロトコルをヒト心筋に適用した。心筋切れから分離し、ハイド数と棒状のヒト筋細胞の大部分を生み出した。そして、丸みを帯びた心筋細胞のごく一部。心筋切れから分離すると、組織の塊から分離するよりも、棒状の筋細胞の数が著しく多くなった。フォトメトリック定量化は、心筋スライスから分離した後に実質的に高い筋細胞生存率を確認した。ヒト細胞は、記載されたプロトコルで単離され、構造解析を行うことができる。アルファアクチニン染色は、静休み心筋細胞において、緻密な規則的なZ線パターンおよび1.92マイクロメートルの平均サルコメア長さを明らかにした。LTCCおよびRyR染色は、明確なクラスターが細胞膜とT細管の近くに共局在していることを示した。分離された心筋細胞は興奮性であり、細胞電生理学または興奮収縮結合に関する研究に使用することができた。作用電位形状および持続時間は、他者によって報告された範囲にあったが、心室心筋細胞に対して、人間の心臓の障害から。カーン声線スキャンによって記録されたカルシウム過渡症は、刺激後に晴れたアップストロークを示した。そして、許容可能な信号対ノイズ比。収縮による心筋細胞の短縮は、下側細胞境界のたわみから見ることができる。このプロトコルによって得られるアイソレータ心筋細胞の数が多いため、細胞培養が可能である。これにより、ヒト心筋細胞の遺伝子導入、薬理学的検査、組織工学が可能になる可能性があります。重要なアプリケーションは、ヒト細胞の動物モデルからの発見の検証である。心不全は、治療オプションが非常に限られている臨床症候群です。改善された心筋細胞分離技術は、診断および将来の治療法のための細胞標的を特定するのに役立つであろう。

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Research

JoVE Journal

Biology

生物学

我々は、細胞内Caために使用することができ、ヒト心房筋細胞の単離を記載...

カルシウムの同時測定のための人間の心房筋細胞の分離<sup&gt; 2 +</sup&gt;過渡と膜電流

心疾患の細胞に基づく現在の知識は、ほとんどの動物モデルの研究に依存しています。ここでは、説明し、人間の心室心筋の小さな外科的サンプルから単実行可能な心筋細胞を得るための新しい方法を検証する。ヒト心室筋細胞は、電気生理学的研究および薬物試験のために使用することができる。...

離と新鮮な外科的試料からのヒト心室の心筋細胞の機能解析

ラット心臓から様々な心臓細胞型を単離するためのいくつかのプロトコールが開発され、記載されている。ここでは、単一の調製物から高品質の主要な心臓細胞型（心筋細胞、内皮細胞および線維芽細胞）の単離を可能にし、実験コストを削減する最適化プロトコルが記載されている。...

成体ラット心臓からの高品質心筋細胞、内皮細胞および線維芽細胞の同時単離

ここでは、成体マウスからの生存心室スライスの調製および鋭い電極活動電位記録のためのそれらの使用を記載する。これらの多細胞調製物は、 インビボでの電気生理学的および薬理学的研究のための貴重なモデルとなる組織構造のような保存されたインビボを提供する。...

電気生理学的研究のためのマウス短軸心室スライス

このプロトコルは、チャンク消化アプローチを使用して、成人マウス心臓から単一の心筋細胞を単一の心筋細胞を分離するために使用される。このアプローチは、パッチクランプ研究で心房筋細胞電気生理学を特徴付けるために使用できる右または左心房筋細胞を単離するために使用されます。...

成体マウスからの心房筋細胞の単離

単成マウス心臓の心房と心室の両方から筋細胞と非筋細胞を同時に分離する方法について説明する。このプロトコルは、高生存性心筋細胞および非筋細胞の一貫した収量をもたらし、フェノタイピングおよびインビトロ分析のための最適な細胞特異的培養条件を詳述する。...

心房筋細胞、心室筋細胞、および非筋細胞の同時分離と培養

前向き灌流法により、高品質のマウスの心臓細胞を単離するためのシンプルe...

マウスからの心筋細胞分離のための前向きの灌流法

マウスモデルは、不整脈形成の重要なメカニズムを研究することを可能にする。そのためには、パッチクランプ測定を行うために高品質の心筋細胞が必要です。ここでは、カルシウム一過性物質とL型カルシウム電流を同時に測定できる逆行性酵素ベースのランゲンドルフ灌流を介してマウス心房筋細胞と心室筋細胞を分離する方法について説明します。...

Ca2+過渡現象とL型カルシウム電流の同時測定のための高品質マウス心房および心室筋細胞の分離

細胞および分子機能実験の心臓病学のゴールドスタンダードは心筋細胞です。この記事では、マウス心筋細胞を単離するための非ランゲンドルフ法への適応について説明します。...

マウス心筋細胞を一貫して単離するための簡単で効果的な方法

本プロトコルは、電気生理学的研究に適した、成体、幼若、幼虫、および胚性ゼブラフィッシュ(Danio...

電気生理学的研究のための成体、幼若、幼虫および胚性ゼブラフィッシュからの心臓および血管平滑筋細胞の単離(英語)

我々は、ヒト心室心筋組織の エクスビボ 培養のためのプロトコールを提示する。これは、収縮力および動態の詳細な分析、ならびに インビボ 生理学的環境をより密接に模倣するための前負荷および後負荷の適用を可能にする。...

長期培養のためのヒト心筋組織の作製

学ぶ ビブラトムカット心筋切片からヒト心室心筋細胞を分離する方法。輸送後のサンプルにも対応し、1mgあたり最大200個のカルシウム耐性細胞を高収率で取得可能。心疾患の電気生理学的・構造解析に有用です。

ビブラートムカット心筋切れ切り切れからヒト心室心筋細胞を分離

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