Name: ウッシングチャンバー技術による在来組織における腸タイトジャンクションバリアとイオン透過性の機能評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-05-26T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 43 s
Description: 学ぶウッシングチャンバー技術による在来腸組織のタイトジャンクションバリアとイオン透過性の機能評価方法。claudin-15ノックアウトマウスを用いて上皮輸送の生理学的特性を測定し、ナトリウム透過性の変化を解析します。

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</ol>

著者らは、開示すべき潜在的な利益相反はない。

この実験では、Ussingチャンバーを使用して、Cldn15−/−およびWTマウスの小腸におけるNaClのベースライン電気パラメータおよび希釈電位を測定した。Ussingチャンバー実験を行う際には、実験で使用した膜調製物が実行可能であることを確認することが非常に重要です。これは通常、グルコースまたはアデニル酸シクラーゼ活性化剤フォルスコリンを添加し、Isc(マウスでは100-300μA/cm2)に適切な上昇があるかどうかを調べることによって行われる。腸管製剤が使用に許容可能であったかどうかを評価する別の方法は、組織のコンダクタンスを見ることである。損傷した組織は、通常コンダクタンスよりも高い場合が多く(正常コンダクタンス:マウスでは~20~60mS/cm2)、筋肉層が適切に剥離されていない組織は、通常よりも低いコンダクタンスを持つ傾向があります(図2)。すべてのUssingチャンバープロトコルで最も重要なステップは、組織の準備であり、それに損傷がないことを...

ウッシングチャンバー法は、デンマークの科学者ハンス・ウッシングによって最初に開発されました。Ussingは、NaClが急峻な濃度勾配に対して皮膚を横切って輸送できることが観察された後、カエルの皮膚を横切るナトリウム輸送の短絡電流を測定するために最初にそれを使用した1。彼のシステムは、皮膚の両側にアクセスできる2つの部屋の間に取り付けられたカエルの皮膚で構成されていました。各チャンバーにはリンゲルの溶液が含まれており、それらは循環され、曝気された。皮膚の近くに位置し、飽和KCl-カロメル電極に接続された2つの狭い寒天リンガーブリッジは、ポテンショネータによって読み取られた電位差を測定した。第2の対の寒天リンガーブリッジは、AgClで飽和した飽和KClを有するビーカーに接続された各チャンバの反対側の端に位置し、電池によって提供される起電力を印加した。電位分配器を使用して電圧を調整し、皮膚両端の電位差がゼロのままになるようにし、短絡状態を作り出しました。マイクロアンペアメーターも接続され、皮膚を通過する電流を読み取ることができました(元のチャンバー設計については、参考文献1 の図を参照)。
過去70年以上にわたり、この技術は、栄養素およびイオン輸送を研究するために、多くの異なる組織、特に腸組織に適用されてきた。例えば、これらのチャンバーにウサギ回腸を装着することにより、コレラ誘発性下痢のメカニズムを調べたところ、コレラ毒素誘発性下痢がcAMP2によって媒介されることが分かりました。さらに、これらのチャンバーは、Na+グルコース共輸送体1(SGLT1)3を介したグルコース輸送の根底にあるメカニズムを研究するためにも使用された。私たちの研究室では、腸上皮細胞における細胞間および傍細胞輸送に焦点を当てています。Ussingチャンバー法を用いて、ペプチド輸送を、傍細胞ナトリウム輸送を障害したクローディン15ノックアウトマウスにおいて評価し、ウッシングチャンバーを用いて、非加水分解性ジペプチドグリシルサルコシンの吸収を測定した。管腔内Na+ 恒常性がプロトン結合ペプチド輸送に重要であることが判明した4。加えて、これらのチャンバーは、セリンプロテアーゼトリプシン5によるプロテイナーゼ活性化受容体1の粘膜下活性化に応答したマウス盲腸における陰イオン分泌を調べるためにも使用された。
ウッシングチャンバーは、最近、上皮組織における傍細胞経路を評価するためにも使用されている。傍細胞経路は、2つ以上の細胞が出会う時点で形成されるタンパク質の複合体であるタイトジャンクションによって調節される6。バリア機能およびイオン選択性(アニオンまたはカチオンがタイトジャンクションを選択的に通過できるかどうか)は、クローディンファミリータンパク質の存在によって決定される。そのうちのいくつかは、障壁(クローディン3および7)、アニオン細孔(クローディン10a)、またはカチオン細孔(クローディン2、10b、および15)7として作用する。血漿FITC濃度8、またはEDTA-Cr9を伴うFITCの経口経管栄養などの他の方法が、傍細胞経路を評価するために使用されている。しかしながら、これらの技術は分解能が低く、イオン選択性または腸管のセクションの特定のセクションを評価することができない。しかし、ウッシングチャンバーは、標的イオンの希釈電位を評価するために使用でき、したがって、タイトジャンクションのイオン選択性を決定することができる。例えば、NaClでは、Na+およびCl-に対するタイトジャンクションの選択性は、膜の片側(通常は粘膜側)を希釈し、経上皮電位差の変化を測定することによって計算することができる。Na+とCl-の相対透過性はゴールドマン・ホジキン・カッツの式10で推定でき、タイトジャンクションの選択性は君塚・コケツの式11で推定できます。したがって、これらのチャンバは、組織の電気生理学的パラメータを測定するという利点を有し、その結果、他の低分解能方法よりもタイトジャンクションを通るイオンの通過に関するより多くの情報を提供する。
ウッシングチャンバー法は腸管に限定されず、腸に関する研究で広く使用されていますが、他にも多くの用途があります。例えば、これらのチャンバーは、嚢胞性線維症、特に塩化チャネル嚢胞性線維症膜貫通コンダクタンスレギュレーター(CFTR)12を研究するために使用されている。嚢胞性線維症は、CFTR13の変異によって引き起こされ、呼吸器上皮細胞による塩化物分泌および流体輸送の障害をもたらし、その結果、より厚く乾燥した粘液層14が生じる。気道上皮CFTRの研究は、疾患を理解するだけでなく、疾患を治療する方法を発見するために、これらのチャンバーで行われてきた。例えば、嚢胞性線維症を引き起こす稀な変異を有する患者では、患者の呼吸器上皮細胞の分析が、Orkambiやアンプ共療法などの治療法をテストするために使用されてきた15。
ussingチャンバーは、薬物の取り込みや薬物動態を研究するためのヒト生検組織など、薬物送達経路の研究にも使用されています16。腸の取り込みは、薬物送達の唯一の経路ではない。これらのチャンバーは、鼻の薬物送達システムの研究にも使用されています17。Ussingチャンバーを用いた薬物送達研究も眼のために行われている。ウサギの角膜では、組織全体で薬物の吸収を増加させるように設計された薬物であるラブラゾールを用いて、透過性および取り込み試験が実施された18。別の研究では、ウサギ強膜における経強膜薬物送達に対する塩化ベンジルアルコニウムの効果を調べた19。
Ussingチャンバー法は、天然組織を使用できるため有用である。そのため、Caco-2細胞株などの インビトロ モデルに亘ることが好ましい。しかし、試料作製には熟練と時間が必要で、ハイスループットな用途には適していません。細胞単層の電気生理学的特性は、これらのチャンバー内の細胞培養インサートを用いて研究することができる。最近の発見により、上皮幹細胞または内皮幹細胞の採取から培養中に増殖したミニ臓器であるオルガノイドの培養が可能になりました20。オルガノイド培養物は、単層で増殖するように操作することができ、それによって、オルガノイドをUssingチャンバー21にマウントすることを可能にする。様々な上皮および内皮組織のオルガノイドを研究することができ、オルガノイド培養を長期間維持することができるので、必要な動物の数を減らすことができる。これはまた、時間がかかり、面倒な組織解剖および調製ステップが不要になるため、スループットを向上させます。将来的には、Ussingチャンバー研究は組織輸送の研究に非常に有用であり続け、個別化医療の分野で特に重要になるでしょう。
以下のプロトコルは、NaClの希釈電位を測定することによって、クローディン15ノックアウト(Cldn15-/-)マウスおよび野生型(WT)コントロールの小腸におけるタイトジャンクションの透過選択性およびバリア機能を評価するためのUssingチャンバー法の適用を実証する。タイトジャンクション(TJ)は、上皮および内皮組織において2つ以上の細胞が出会う点で形成される。二細胞タイトジャンクション(bTJ)、特にbTJ内に見られるクローディンファミリータンパク質は、TJ7のバリア機能および透過選択性を決定すると考えられている。Cldn15-/-マウスは、巨大小腸22を有し、クローディン154、23、24を介して起こる腸内Na+リサイクルの喪失による栄養素取り込み能力の低下を有する。Cldn15-/- マウスはNa+恒常性を損ねており、TJのパーマセレクティビティを研究するための興味深いモデルとなっています。以下のプロトコルは、中小腸におけるNaCl(PNa/PCl)の希釈電位を測定することにより、TJからNaClへの透過性を評価する。簡単に言えば、膜の片側(M側またはS側、どちらも以下のプロトコルで測定される)を希釈することによって生じる膜電位差の変化は、Na+(PNa)およびCl-(PCl)の透過性を計算するために使用することができ、希釈電位(PNa/PCl)は、タイトジャンクションがカチオン性またはアニオン性の選択性を有するかどうかを示す。
このプロトコールの実験は、腸管製剤が垂直に取り付けられた2つの半分からなるカスタマイズされたUssingチャンバ(図1A)、電圧クランプアンプ、電気レコーダー、電極、塩橋、リンゲル溶液、HEPES緩衝液(150mM NaCl)、希釈HEPES緩衝液(75mM NaCl)、腸製剤(機器の詳細については 材料表を参照)。

<table><tbody><tr><td>#3 ポリエチレンチューブ</td><td>響</td><td></td><td>外径1.0mm、内径0.5mm</td></tr><tr><td>#7 ポリエチレンチューブ</td><td>響</td><td></td><td>外径2.3mm、内径1.3mm</td></tr><tr><td>10mL ロッキングシリンジ</td><td>テルモ</td><td>SS-10LZ</td><td>充填時に針が抜けるのを防ぐため、ロッキングシリンジが必要</td></tr><tr><td>19g針</td><td>テルモ</td><td>NN-1938R</td><td>針を取り扱う際は注意を払い、鋭利物容器に廃棄</td></tr>してください <tr><td>23g針</td><td>テルモ</td><td>NN-2332R</td><td>針を取り扱う際は注意して鋭利物容器に廃棄</td></tr>してください <tr><td>5mmパンチ</td><td>NA</td><td>NA</td><td>濾紙やパラフィルムの鍼に穴を開けるために使用</td></tr><tr><td></td><td>セイリン</td><td>NS</td><td>組織を解剖板にピンで留める解剖ピンとして使用</td></tr><tr><td>寒天</td><td>富士フイルム 和光</td><td>010-15815</td><td></td></tr><tr><td>ワニ口クリップ</td><td>NA</td><td></td><td>NA 電極を増幅器に接続します</td></tr><tr><td>CaCl2</td> <td>富士フイルム和光</td><td>038-00445</td><td></td></tr><tr><td>D(-)-マンニトール</td><td>富士フイルム和光</td><td>133-00845</td><td>希釈 HEPES バッファー</td></tr><tr><td>D(+)-グルコース</td><td>富士フイルム 和光</td><td>049-31165</td><td></td></tr><tr><td>解剖キット</td><td></td><td></td><td>必要になる、はさみや湾曲した鉗子</td></tr><tr><td>解剖プレート</td><td></td><td></td><td>10cmの細胞培養プレートを使用し、シリコンゴムで覆いました</td></tr><tr><td>DMSO Sigma</td><td></td><td>472301-500ML</td><td>フォルスコリンストックを作るため</td></tr><tr><td>電気レコーダー</td><td>東亜電子工業</td><td>PRR-5041</td><td>その他同等の電気レコーダーが市販されています</td></tr><tr><td>上皮電圧クランプアンプ</td><td>日本光電</td><td>CEZ9100</td><td>他の同等のアンプは</td></tr><tr><td>、商業的に濾紙が利用可能で、正方形にカット</td><td>NA</td><td>NA</td><td>5mmパンチでパンチされ、腸の準備</td></tr><tr><td>の細かい鉗子</td>を保持するために使用されます <td>ファストジーン</td><td>FG-B50476</td><td>筋肉層の鈍的解剖用</td></tr><tr><td>Forskolin</td><td>Alomone Labs</td><td>F-500</td><td>DMSOで10 mMのストックを作成し、最終濃度は10 & microになります。M</td></tr><tr><td>HEPES Σ</td><td></td><td>H4034-1KG</td><td></td></tr><tr><td>インドメタシン</td><td>Σ</td><td>I7338-5G</td><td>21 mM NaHCO3 で 1 mM ストックを作成し、最終濃度は 10 & マイクロです。M</td></tr><tr><td>K2HPO4</td> <td>富士フイルム 和光</td><td>164-04295</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>富士フイルム 和光</td><td>163-03545</td><td></td></tr><tr><td>KCl/calomel 電極</td><td>アッシュジャパン株式会社</td><td>SCE-100</td><td></td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>関東化学</td><td>32379-00</td><td></td></tr><tr><td>L(+)-グルタミン</td><td>富士フイルム和光</td><td>074-00522</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>富士フイルム和光</td><td>135-00165</td><td></td></tr><tr><td>混合ガス(95% O2/5% CO2)</td><td>静岡酸素カンパニー</td><td></td><td>リンガー溶液NaCl使用時のリンガー液・チャンバーのバブリングに使用</td></tr><tr><td></td><td>富士フイルム 和光</td><td>191-01665</td><td></td></tr><tr><td>NaCl電極</td><td></td><td>NA</td><td>NaHCO</td></tr><tr><td>3</td><td>富士フイルム ワコー</td><td>191-01305</td><td></td></tr><tr><td>O2 ガス</td><td>静岡酸素株式会社</td><td></td><td>HEPES緩衝液パラフィルムを使用する場合、バブリングチャンバーに使用されます</td></tr><tr><td></td><td>Bemis</td><td>PM-996</td><td>Ussingチャンバーのシールに使用</td></tr><tr><td>pHメーター</td><td>DKK-TOA Corp</td><td>HM-305</td><td>HEPES緩衝液は、37°CでpH 7.4に調整する必要があります。C</td></tr><tr><td>pH メーター電極</td><td>DKK-TOA Corp</td><td>GST-5311C</td><td></td></tr><tr><td>シリコーンゴム</td><td>信越化学</td><td>KE-12</td><td>解剖板の充填に使用</td></tr><tr><td>銀線</td><td></td><td></td><td>NaCl電極の製造に使用</td></tr><tr><td>プラスチック蓋付き</td><td>NA</td><td>NA</td><td>NaCl電極の</td></tr><tr><td>実体顕微鏡</td>に使用 <td>Zeiss</td><td>Stemi 305</td><td>実体顕微鏡では奥行きを見ることができるので、組織をより簡単に解剖することができます</td></tr><tr><td>トリス(Trizmaベース)</td><td>シグマ</td><td>T1503-1KG</td><td>HEPES緩衝液のpHを調整するための1M溶液を作る</td></tr><tr><td>Ussing チャンバー 三</td><td>機化学工業</td><td></td><td>これらのチャンバーは、カスタムメイドの連続灌流 窓径5mmのUssingチャンバーです</td></tr><tr><td>ウォーターポンプと暖房システム</td><td>東京六垣会株式会社。</td><td>NTT-110(エヌティー110</td><td></td></tr></tbody></table>)

ウッシングチャンバー技術による在来組織における腸タイトジャンクションバリアとイオン透過性の機能評価

Functional Assessment of Intestinal Tight Junction Barrier and Ion Permeability in Native Tissue by Ussing Chamber Technique

ウッシングチャンバー技術は、カエルの皮膚を横切るナトリウムの細胞間輸送を研究するために、1951年にデンマークの科学者Hans Ussingによって最初に発明されました。それ以来、この技術は、膜を横切る輸送の生理学的パラメータを研究するために、多くの異なる組織に適用されてきた。Ussingチャンバー法は、天然組織を使用できるため、他の方法よりも好ましく、 生体内で起こっていることにより適用可能である。しかし、天然組織が使用されるため、スループットが低く、時間が限られ、組織調製にはスキルとトレーニングが必要です。これらのチャンバーは、様々な組織における特定のトランスポータータンパク質の研究、嚢胞性線維症などの疾患病態生理学の理解、薬物輸送および取り込みの研究、および腸内の栄養輸送の理解に特に貢献するために使用されてきた。組織の上皮輸送プロセス全体を考えると、経上皮経路だけでなく、傍細胞経路も重要である。タイトジャンクションは、腸を横切る組織特異的な傍細胞透過性の重要な決定因子である。この記事では、Ussingチャンバー技術を使用して、経上皮コンダクタンスと希釈電位を測定することによってイオンの傍細胞透過性を評価します。

このホワイト ペーパーで示されている結果は、完了した大規模なプロジェクトの一部であった結果です (ref.4,23,24 を参照)。
小腸の経上皮電気コンダクタンスはCldn15-/-マウスにおいて減少する。 Cldn15-/-マウスの中央小腸セグメントのベースライン経粘膜コンダクタンス(短絡条件下で)は、野生型マウスで測定されたものよりも低かった(図3A;Cldn15-/-および野生型マウスでそれぞれ22.3mS/cm2および48.7mS/cm2<...

腸上皮は、栄養素の吸収だけでなく、有害物質に対する保護も与えます。頂端 - 最上皮細胞間接合部、すなわちタイトジャンクションは、傍細胞溶質およびイオン透過性を調節する。ここでは、粘膜シートの調製およびUssingチャンバー技術を用いたタイトジャンクションのイオン選択性の評価のためのプロトコルが記載されている。

The Ussing chamber technique was first invented by the Danish scientist Hans Ussing in 1951 to study the transcellular transport of sodium across frog ...

このプロトコルは、タイトジャンクションの輸送品質を研究するために使用されます。希釈電位を使用すると、透過選択性を測定し、組織内のタイトジャンクションを理解することができます。この技術は特異的であり、上皮の機能的研究のために天然組織を使用する。さらに、この技術は、組織のリアルタイムの生理学的特性を測定し、これは非常に有用である。最大の課題は組織の準備です。テクニックを練習し、このビデオを見ることが役立ちます。組織生存率を確認することも重要なステップである。まず、クローディン-15ノックアウトマウスから採取した腸組織の所望のセグメントを氷冷気泡リンゲル溶液に入れ、脂肪および結合組織をトリミングする。脂肪と結合組織をトリミングした後、腸間膜アタッチメントに沿って切断して各セグメントを縦方向に開き、セグメントを氷冷リンガー溶液に戻し、断片を徹底的に洗浄します。筋肉層を剥がすには、解剖顕微鏡下で2〜3ミリリットルの新鮮な氷コールドバブルリンガー溶液をシリコーンゴムで覆われた解剖プレートに注ぎ、ピンを使用して粘膜側を下に向けて皿の1つの腸組織セグメントの端部を固定する。細かい鉗子を使用して、下の粘膜から筋肉層を鈍く解剖し、組織に穴を開けたり穴をあけたりしないように注意してください。筋肉層が取り除かれたら、直径5ミリメートルの開口部に十分な大きさの断片を切断し、リンゲル溶液粘膜側で濡れた5ミリメートルのパンチされたろ紙の上に組織を黒い背景を使用して置き、ろ紙の開口部がしわのない組織によって完全に覆われるようにする。腸管製剤をUssingチャンバーに取り付けるには、まずチャンバーから溶液を取り出してから解体します。黒いマーキングを使用して、腸管製剤の粘膜側を下にしたろ紙を粘膜側チャンバーに敷き、チャンバーウィンドウをろ紙の穴に合わせます。腸管シートを動かさずに漿膜側室を粘膜側室に慎重に接続する。両方のチャンバーにHEPESバッファーをすばやく補充し、バブリングしたものを膜から離れた各チャンバーの反対側の端に配置します。ソルトブリッジを再接続し、電圧が安定しているかどうかを確認し、電流をパルスして接続が正常であることを確認してから、システムを約15分間平衡化させます。希釈電位実験を行うために、まずチャンバーの両側を片面あたり5ミリリットルの新鮮な予め加温されたHEPES緩衝液で洗浄する。記録システムの電源を入れ、範囲を 250 ミリボルトに設定します。マーカーの位置を設定し、記録システムを測定し、Ussingチャンバーシステムをクランプモードに設定します。測定ポテンシャルが安定したら、そのデータを測定に使用します。チャンバーの粘膜側からHEPES緩衝液を、75ミリモルの塩化ナトリウムを添加した5ミリリットルの加温希釈HEPES緩衝液で迅速に交換する。膜電位がピークに達したら、粘膜側からの希釈緩衝液を新鮮なHEPES緩衝液に交換する。組織が生存可能であることを確認するために, 加 10 マイクロモルフォルスコリン 血清側に.膜電位差がピークに達し、減少し始めたら、実験は終了します。経上皮電気コンダクタンスおよびベースライン短絡電流を測定するために、実証したようにチャンバーの両側を洗浄した後、5ミリリットルの新鮮な泡状リンゲル溶液を両側に加え、記録システムの範囲を2.5ボルトに設定した。マーカーの位置を設定し、測定する記録システムを設定し、Ussingチャンバーシステムをクランプモードに設定します。短絡電流とコンダクタンスが安定したら、ベースライン測定にデータを使用します。組織が実行可能であることを確認するために, 実証されているように、漿液性側にフォルスコリンを追加します。.膜電位差がピークに達し、減少し始めたら、実験は終了します。この代表的な解析では、中小腸セグメントのベースライン経粘膜コンダクタンスは、短絡条件下でのクローディン-15ノックアウトマウスでは野生型マウスで観察されたものと比較して低く、ベースライン短絡電流は高かった。管腔内塩化ナトリウム希釈に際し、野生型マウスでは漿膜側に対して正の電位差が認められたが、クローディン-15ノックアウトマウスではその差は減少した。同様に、塩化ナトリウムの比透磁率もノックアウト動物において低下した。絶対透過性の計算により、クローディン-15ノックアウトマウスではナトリウムの絶対透過性が低下したが、塩化物の絶対透過性は低下しなかったことが明らかになり、比透磁率の低下はナトリウムの透過性の低下によるものであることが示唆された。予想通り、チャンバーの漿膜側へのフォルスコリンの添加は、ノックアウト型マウスと野生型マウスとの間の短絡電流の変化に有意差を引き起こさなかった。腸管セグメントはフォルスコリンに対して十分に大きな応答を示したので、膜調製物は実行可能であると考えられた。適切な筋肉層の除去を行い、組織が生存可能であることを確認することが重要です。調製物が生存可能であるかどうかマウスの解剖部をすすいでください。

functional-assessment-intestinal-tight-junction-barrier-ion

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

有機電気化学トランジスタは、生細胞と統合および胃腸上皮バリアを横切ってイオン流束を監視するために使用される。本研究では、カルシウムキレート剤EGTA（エチレングリコール - ビス（ベータ - アミノエチルエーテル）-N、N、N '、N'-四酢酸の存在によって誘導密着結合の破壊に関連するイオン流束の増加、酸）を測定する。...

有機電気化学トランジスタにバリア組織破壊の検出

このプロトコルは、腸バリア機能のex...

ex vivoで腸嚢は、胃腸疾患のモデルに粘膜透過性を評価するために

我々は、3次元で増殖させたCaco-2細胞のインビトロ細胞培養モデルおよびマウス腸のex vivoモデルを使用して腸のセロトニントランスポーター（SERT）の機能および発現の調節を研究するための簡単な方法を記載します。これらの方法は、他の上皮輸送体の研究にも適用可能です。...

3Dで栽培ネイティブ腸とのCaco-2細胞において上皮輸送タンパク質の機能および発現を研究するための方法

2 つのメソッドは、腸管のバリア機能を決定するここで掲載されています。上皮メーター (ボルト/オーム) は、組織培養の井戸に直接培養上皮細胞の上皮電気抵抗の測定に使用されます。マウスで FITC...

腸管上皮細胞の透磁率を決定する体外と体内アプローチ

ここでは、小腸オルガノイドのバリア完全性を定量化する手法について説明する。この方法が生きているオルガノイドに基づいているという事実は、時間分解された方法で物質またはその組み合わせを調節する異なるバリア完全性の逐次的な調査を可能にする。...

生きているオルガノイドにおける腸のバリア破壊の調査

ここでは、腸管バリア機能、透過性、および輸送を研究するためのヒトオルガノイド由来腸上皮単層の調製について述べる。オルガノイドは外部刺激に対する元の上皮組織応答を表すので、これらのモデルは細胞株の拡張性の利点と初代組織の関連性と複雑さを兼ね備えています。...

オルガノイド由来の上皮単分子膜:腸管バリア機能のための臨床的に関連するインビトロモデル

調節不整合な腸上皮バリア機能および免疫応答は、生理学的モデルの欠如のために十分に調査されていない炎症性腸疾患の特徴である。ここでは、生体内での粘膜透過性および白血球の採用を研究するために、十分に血管化され、外装された腸セグメントを採用したマウス腸管ループモデルについて述べている。...

標準化腸ループモデルを用いたマウスにおける腸透過性と好中球経上皮移動の機能評価

本研究では、フルオレセインイソチオシアネート標識(FITC)デキストラン を経口強制 投与してマウスに投与し、 in vivo...

フルオレセインイソチオシアネート標識デキストランを用いたマウスの腸バリア完全性の評価

この研究は、オルガノイドからウシ腸の2D単分子膜を生成するためのプロトコルを提示し、宿主と病原体の相互作用を研究するためのアクセスを改善します。これには、膜の完全性と機能性を評価する方法が含まれており、牛の胃腸生理機能を模倣した in vitro...

小腸および大腸単分子膜界面を用いたウシオルガノイド技術の進歩

我々は、イオンチャンネルの機能上の単一の点変異の効果を研究する方法を説明します。...

異種哺乳動物細胞で発現したイオンチャネルの変異導入と機能解析

学ぶウッシングチャンバー技術による在来腸組織のタイトジャンクションバリアとイオン透過性の機能評価方法。claudin-15ノックアウトマウスを用いて上皮輸送の生理学的特性を測定し、ナトリウム透過性の変化を解析します。

ウッシングチャンバー技術による在来組織における腸タイトジャンクションバリアとイオン透過性の機能評価

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