Name: アノフェレスガンビア胚の微小注入法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-07-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 39 s
Description: 学ぶAnopheles gambiae胚への微小注入法。遺伝子導入により転形蚊を作製し、マラリア媒介蚊の制御や野生個体群の改変に応用可能な信頼性の高い技術です。

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私たちは、ドルシラ・スティリンジャー、キオナ・パーカー、パリッシュ・パウエル、マデリーン・トトリの蚊の夫に感謝しています。資金は、カリフォルニア大学アーバインマラリアイニシアチブによって提供されました。AAJはカリフォルニア大学アーバイン校のドナルド・ブレン教授です。

1. マイクロインジェクション用の蚊の準備
<ol><li>ケージ13(約5000cm3)を、オス100匹、雌1~2日の雌1-2日の成人後の蚊を播種し、2日間交尾できるようにします。</li>
	<li>交配期間の後、蚊に人工授乳装置を用いた血液の2mLまたは昆虫の慣行に応じて生きた麻酔動物を使用して血液食事を提供する。翌日、蚊に2回目の血液食事を提供し、すべての交尾したメスが餌を与える機会を得て、部分的に餌を与えられた蚊が完全に飲み込まれたことを確認します。</li>
	<li>2回目の血液ミールの2~4日後に、蚊を胚コレクションに活用します。 注:ラーバル栄養は、大人の堅牢性と生殖フィットネスのために重要です。健康な昆虫14を飼育する方法については、ベネディクトら(2020)を参照してください。蚊が人工フィーダーや生きた麻酔動物に餌を与えられると、産卵に有意な差は認められていない。昆虫の アノフェレスガンビア に日常的に使用される方法を使用してください。</li>
</ol>2. 胚の準備
<ol><li>アスピレーターを使用して、両端に切り取られた透明な50〜30 mL円錐形チューブに20〜30人の女性を配置し、一方の端にラテックス歯科フィルム、もう一方の端にナイロンメッシュとフィルターペーパーで覆われています(図1)。 注:蚊は卵をろ過用紙に堆積させ、ナイロンメッシュはフィルターペーパーを安全に保ちます。蚊の卵は円筒形で、長さは〜500μm、直径は最も広い点で〜200μm、前部および後端で先細りである(図2)。</li>
	<li>蚊で満たされたチューブを、二重蒸留水(ddH2O)で満たされた小さな(60 mm x 15 mm)のペトリ皿に入れます。チューブと皿を28°Cのインキュベーターに45分間置きます(図3)。</li>
	<li>チューブをインキュベーターから取り出し、チューブを空のケージに挿入します。チューブを軽くタップして蚊が飛び出し、すべての蚊が飛び出したらケージからチューブを取り除きます。</li>
	<li>チューブに蚊が含まれず、下のリングを緩め、ナイロンを取り外し、鉗子を使用して卵をチューブから慎重に取り除きます。ろ紙を、ddH2Oで湿らせた濾紙の層を含むプラスチックペトリ皿(100mm x 15mm)に入れます。</li>
	<li>卵を観察してください。卵は薄い灰色の色の状態まで熟成した状態で、整列の準備が整っています。<ol>
<li>卵がまだ白い場合は、インキュベーターに戻し、5分ごとに色を確認してください。白い卵は壊れやすく、破裂しやすく、注射プロセスの後にうまく生き残らず、低い孵化を引き起こします。</li>
		<li>濃い灰色または黒の卵は熟成しすぎている。使用しないでください。</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 胚のアライメント
<ol><li>かみそりの刃でナイロンブロッティング膜(2cm x 1 cm)を切り取り、エッジがきれいにトリミングされていることを確認します。 注:エッジがまっすぐでない場合、卵は注入プロセス中に適切に膜に貼り付けられたままになります。</li>
	<li>ガラススライドに膜を置き、膜をフィルター用紙(2cm x 2 cm)で覆い、膜フィルターの約1mmを覆い残す(図5)。 注:顕微鏡のスライドが使用前に清潔であることを確認し、膜フィルターを操作するためにきれいな鉗子を使用してください。</li>
	<li>長期間乾燥すると卵が死ぬので、脱イオン化されたH2Oで濾紙を濡らす。 メモ:注入プロセス中に胚が動くので、紙にあまり水を入れ過ぎないようにしてください。しかし、胚が乾燥するのを防ぐのに十分であることを確認してください(図6A、B)。余分な水は、濾紙の一部でそれを吸収することによって除去することができます。
</li>
	<li>30~50個の胚を、絵筆で膜の端までそっと移します(サイズ#0)。ブラシを使用して、卵をスライド上でそっと転がして卵を膜に沿って垂直に整列させ、腹側(凸面)が上向きになるようにします。</li>
	<li>卵がマイクロインジェクション顕微鏡下で観察されるとき、後端(より尖った、図6A、B)が下方位置にあり、針で〜15°の角度を形成するように、すべての卵を同じ方向に向ける(図6C)。卵(30-50)で膜の縁全体を並べ、注入のために顕微鏡の下にスライドを置きます。 注:卵は慎重に選択してください。白(若すぎる、または未開発)または濃い灰色(古すぎて針を壊す)、異常なもの(図7)を捨てます。フィルター用紙が常に湿っていることを確認してください。
</li>
</ol>4. DNAの調製
<ol><li>注入用のプラスミドDNAを、少なくとも、メーカーのプロトコルに従って内毒素を含まないDNAプラスミドマキシプレップキットで精製します。</li>
	<li>4°Cで30分間冷蔵遠心分離機で17,100 x g でPCRグレードの水と遠心分離機中のDNAを再懸濁します。 その後、上清を新しい、クリーンな1.5 mL円錐管に移します。慎重にマイクロピペットは、カラムから望ましくない粒子状物質を転送することを避けるために。</li>
	<li>3M酢酸ナトリウムの10分の1の体積と100%エタノールの2倍の容量を使用してDNAの第2の沈殿を行います。</li>
	<li>最終的なプラスミド濃度1000 ng/μLのPCRグレード水でDNAを再懸濁し、最終的なプラスミド濃度300-400 ng/μLの最終プラスミド濃度を注入バッファーに混ぜ、10-20 μLのアリコートを作ります。 注:DNAは-20°Cで保存することができ、DNAマイクロインジェクションアリコートは-20°Cで保存することができ、RNA成分を使用する場合は-80°Cで保存することができます。粘性が針詰まりを引き起こすので、注射ミックス中のDNAの800 ng /μLを超えないでください。</li>
</ol>5. 針の準備
<ol><li>プログラム可能なマイクロピペットの引き手を使用して10 cmの石英の毛細血管を引っ張って針を作ります。</li>
	<li>針を顕微鏡で調べて、先端がうまく形成されていることを確認します。プログラム可能なプーラーの針の設定が、端末の端から約 0.5 mm の先細しを開始し、細かい点で終わる先端を得ることを確認します( 図 6を参照)。簡単に壊れる針は、通常、テーパーの長すぎる。 注:条件は、ニードルプーラーによって異なる場合があります(著者は、彼らが使用するプログラマブルプーラーの設定を要求に応じて利用可能になります。ジャーナルの制限により、特定のブランドを引用できない。針は手で引っ張ることができますが、これはほとんどの実験室では利用できないスキルセットを必要とします。</li>
</ol>6. 胚マイクロインジェクション
<ol><li>マイクロローダーチップを使用して、2 μLのDNA混合物で針を充填します。針を針ホルダーに挿入し、自動圧力ポンプチューブを接続します(図8)。</li>
	<li>重要:針をスライドの平面に合わせて15°の角度になるように、針を合わせます(図8)。</li>
	<li>最初の卵に注意して触れて針先を開き、針の先端を10μm後極に挿入して注入≤。注射が成功すると、卵の中の細胞質の小さな動きにつながります。</li>
	<li>顕微鏡同軸ステージコントロールを使用して、次の卵に移動して注入を継続します。<ol>
<li>針先が開いたままで詰まっていないようにするには、別の胚に入る前に[注射]ボタンを押して、針の開口部にある小さな液滴を視覚化します。</li>
		<li>針が詰まったら、[クリア]ボタンを押して針をクリアし、液滴の可視化テストを繰り返します。針先の開口部が少し大きくなる場合は、必要に応じて圧力を調整して、液滴のサイズが小さく保たれるようにします。</li>
		<li>1針で~40~50個の卵を注入します。 メモ:フィルター用紙は常に湿っていることを確認してください。針に十分な背圧を保ち、クリア状態に保ちます。詰まらない針は新しい針に交換する必要があります。胚の配置、針の挿入および注入は、ステージの水平移動のための同軸制御を有する顕微鏡で容易になる(図9)。</li>
	</ol>
</li>
	<li>注射が完了したら、フィルターペーパーが並ぶガラス容器に卵をすすい、50 mLの脱イオン化H2Oで満たします(図10)。 注意:胚は注射後2日で孵化を開始し、3〜5日かかることがあります。孵化した最初のインスター幼虫は、水と食料を含むきれいな容器に直ちに移す必要があります(毎日2回チェックしてください)。</li>
</ol>

<ol><li>Feramisco, J., Perona, R., Lacal, J. C. Needle Microinjection: A Brief History. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFeramisco%2C+J+%22Microinjection.+Methods+and+Tools+in+Biosciences+and+Medicine%22">Microinjection. Methods and Tools in Biosciences and Medicine</a>. Lacal, J. C., Feramisco, J., Perona, R. , Birkhauser. Basel. (1999).</li>
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<li>Benedict, M. Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pragmatic+selection+of+larval+mosquito+diets+for+insectary+rearing+of+Anopheles+gambiae+and+Aedes+aegypti%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Pragmatic selection of larval mosquito diets for insectary rearing of Anopheles gambiae and Aedes aegypti.</a> PLoS One. 15 (3), 0221838(2020).</li>
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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

CRISPR/Cas9のような精密で柔軟な遺伝子工学技術の利用可能性が高まるとともに、トランスジェニック生物は以前より簡単で安定した方法で開発することができます。これらのツールにより、研究者は、病原体への屈折性(集団改変)または遺伝性無菌(集団抑制)のいずれかの所望の特性を達成するのに非常に近い蚊ベクターのトランスジェニック株を作成することができました。しかし、可能な限り最も安全で安定した遺伝子組み換え蚊を開発するためには、フィールドスタディに最適なラインが選択されるように、追加のトランスジェニックラインを作成して評価する必要があります。記述されたプロトコルは、人口改変および抑制戦略のために追加の候補を開発できるように 、アノフェレスガンビア トランスジェニックを生成する効率を高めることができる。
記載のマイクロインジェクション手順は、蚊や他の節足動物ベクターのマイクロインジェクションを日常的に行う実験室で利用可能である可能性が高い機器および材料を利用する。プロトコル全体を通して細部への注意を維持することが重要です。品質による卵の選択や2番目のDNA沈殿などのステ...

マイクロインジェクション技術は、1900年代初期から生物を実験的に操作するために使用されてきました。マイクロインジェクションは、基本的な生物学的機能の両方を研究し、望ましい生物の生物学における重要な変化を導入するために使用されてきました。マイクロインジェクション技術は、ベクター生物学者に特に興味深く、ベクターゲノム2-11を操作するために広く使用されてきた。節足動物ベクターのトランスジェネシス実験は、ベクターの適性を低下させるか、またはそれらが媒介する病原体への屈折性を高める変化を制定することによって、病原体を伝染させるベクターを効率よくなくすることを目的とすることが多い。蚊は様々なヒト病原体を媒介し、世界中の罹患率と死亡率に大きな影響を与えます。蚊のアノフェレス属は、ヒトマラリア寄生虫病原体であるプラスモジウム属を媒介する。アノフェレスの遺伝子工学実験は、生物学をよりよく理解し、新しいマラリア排除戦略を開発する取り組みにおいて、これらの蚊のベクター能力を低下させることを目的としています。
世界中で最もマラリア感染に寄与する蚊のベクターは、 アノフェレスガンビア 種複合体にあります。しかし、成功した遺伝子導入実験の大半は、インド亜大陸のマラリアベクター、 アノフェレス・ステポルシに対して行われている。実験室適応 アノフェレスガンビア株 の多くが存在するが、トランスジェニック アノフェールガンビアspp. 文献で報告されたラインは 、アノフェレスステナシのそれと比較しない。 アノフェレス・ガンビア胚 は、これらの違いの理由は不明であるが、 アノフェレス・ステナシよりも注射し、成功したトランスジェネシスを達成することはより困難であると考えられている。このプロトコルは、マイクロインジェクションを介して アノフェレスガンビア 胚のトランスジェネシスを達成することに一貫して成功することが証明されている方法を記述する。このプロトコルは、エルヴェ・ボッシンとマーク・ベネディクト12 によって以前に開発された方法に基づいており、トランスジェネシスの効率を高めるために発見されたいくつかの追加の詳細と変更が加えられた。

<table><tbody><tr><td>10x Microinjection Buffer</td> <td>-</td><td>-</td><td>1 mM NaHPO4 Buffer、pH 6.8、50 mM KCl</td></tr><tr><td>ブロッティングメンブレン (Zeta-Probe GT Genomic Tested Blotting Membrane)</td><td>バイオ・ラッド</td><td></td><td>2x1 cm ピースにきれいにまっすぐにカット</td></tr><tr><td>コニカルチューブ 50 ml (使い捨て遠心チューブ、ポリプロピレン)</td><td>フィッシャーブランド</td><td></td><td>エンドカット</td></tr><tr><td>脱イオン水または二重蒸留水(ddH20)&nbsp;</td><td>Mili-Q</td><td></td><td>ウォッシュボトルの中&nbsp;</td></tr><tr><td>解剖顕微鏡&nbsp;</td><td>ライカ&nbsp;</td><td>ライカMZ12</td><td>胚位置合わせ</td></tr><tr><td>用鉗子&nbsp;</td><td></td><td></td><td>5号サイズ&nbsp;</td></tr><tr><td>ガラス容器&nbsp;</td><td>パイレックス</td><td>No. 3140</td><td>125 x 65</td></tr><tr><td>スライドガラス&nbsp;</td><td>フィッシャー ブランド</td><td>番号 12-549-3</td><td>75x26 mm</td></tr><tr><td>インキュベーター</td><td>バーンステッド ラボライン</td><td>モデル番号 150</td><td>28 >C</td></tr><tr><td>KCl</td><td></td><td></td><td>50 mM</td></tr><tr><td>ラテックス歯科用フィルム&nbsp;</td><td>Crosstex International</td><td>No. 19302</td><td></td></tr><tr><td>マイクロインジェクター</td><td>サッター機器</td><td></td><td>XenoWorks デジタルマイクロインジェクター</td></tr><tr><td>マイクロローダー ピペットチップ&nbsp;</td><td>エッペンドルフ&nbsp;</td><td></td><td>20 &micro;L マイクロローダ epT.I.P.S.</td></tr><tr><td>マイクロマニピュレーター</td><td>Sutter Instrument</td><td></td><td>XenoWorks マイクロマニピュレーター</td></tr><tr><td>マイクロピペット&nbsp;</td><td>レイニン&nbsp;</td><td></td><td>20 &micro;L</td></tr><tr><td>マイクロピペットプーラー&nbsp;</td><td>サッター機器</td><td>Sutter P-2000 マイクロピペットプーラー</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡&nbsp;</td><td>ライカ</td><td>DM 1000 LED または M165 FC</td><td>マイクロインジェクション用</td></tr><tr><td>最小ファイバーフィルターペーパー&nbsp;</td><td>フィッシャー ブランド</td><td>番号 05-714-4</td><td>クロマトグラフィー紙、厚&nbsp;</td></tr><tr><td>蚊&nbsp;</td><td>MR4、BEI Resources</td><td></td><td>Anopheles gambiae、交配した成体雌、排泄後4〜5日</td></tr>で<tr><td>NaHPO4バッファー&nbsp;</td><td></td><td></td><td>1 mM、ph 6.8</td></tr><tr><td>ナイロンメッシュ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ペイントブラシ</td><td>Blick</td><td>No. 05831-7040</td><td>ファイン、サイズ 4/0</td></tr><tr><td>シャーレ</td><td></td><td></td><td>プラスチック、(60x15 mm、90x15 mm)</td></tr><tr><td>酢酸</td><td></td><td></td>ナトリウム<td>&nbsp;3M</td></tr><tr><td>石英ガラスキャピラリー&nbsp;</td><td>サッターインストゥルメント</td><td>No.QF100-70-10</td><td>フィラメント付 外径 1 mm &nbsp;ID 0.7 10 cm 長さ</td></tr><tr><td>水 PCR グレード&nbsp;</td><td>ロシュ</td><td>No.03315843001</td><td></td></tr></tbody></table>

アノフェレスガンビア胚の微小注入法

Microinjection Method for Anopheles gambiae Embryos

胚マイクロインジェクション技術は、昆虫種の多くの分子遺伝学的研究に不可欠です。彼らは、目的の遺伝子をコードする外因性DNA断片と、安定かつ遺伝性の方法で昆虫生殖細胞系列に有利な形質を導入する手段を提供する。得られたトランスジェニック株は、基本的な質問に答えたり、実用化に使用したりするために、統合DNAの発現に起因する表現型変化について研究することができる。この技術は簡単ですが、効率を最大化するレベルのスキルを達成するには、調査官の忍耐と実践が必要です。ここに示されているアフリカマラリア蚊の胚のマイクロインジェクションのための方法です, アノフェレスガンビア .目的は、開発中の生殖細胞(極)細胞で取り上げることができるように、胚に外因性DNAをマイクロインジェクションで送達することです。トランスポザース、インテグラーゼ、リコンビナーセ、または他のヌクレアーゼ(CRISPR関連タンパク質、Casなど)の注入されたDNAからの発現は、染色体への共有結合挿入につながる事象を引き起こす可能性があります。これらの技術から生成されたトランスジェニック An.ガンビア は、免疫系成分、摂食に関与する遺伝子、および嗅覚系の要素の基礎研究に使用されてきた。さらに、これらの技術は、マラリア原虫の伝染を制御するのに役立つ形質を有する An.ガンビア 株を産生するために使用されてきた。

記載されたマイクロインジェクションプロトコルの適用の代表例は、カルバラル・レハラスら5.ここでの目的は、An. gambiaeの実験室株 G3 の生殖細胞系列に自律型遺伝子駆動システムを挿入することであった。このシステムは、この種の第3染色体上の基底正角(Agcd)を標的とするように設計されており、オンモクロム生合成の最後のステップである3-ヒドロキシキヌレニンからキサントマチンへの変換を触媒するヘムペルオキシダーゼをコードする(図 11)。ホモ接合遺伝子の駆動を含む蚊は、幼虫、子犬および赤目表現型を有する新たに出現した成人を有する機能喪失型の枢機卿突然変異体である。ドライブ系を含むプラスミドpCO37は、アンガンビアナノス遺伝子オルソログの調節要素の制御下にあるストレプトコッカス・ピデンシスCas9(SpCas9)エンドノクリースを発現し、アンガンビアU6遺伝子プロモーターおよび3XP3-CFPマーカーの...

蚊のゲノムに外因性遺伝子を導入するには、マイクロインジェクション技術が不可欠です。このプロトコルは、変換された蚊を生成するために アノフェレスガンビア 胚にDNA構築物をマイクロ注入するためにジェームズ研究所によって使用される方法を説明します。

Embryo microinjection techniques are essential for many molecular and genetic studies of insect species. They provide a means to introduce exogenous DNA ...

このプロトコルは、一般的な遺伝子工学技術を使用して変換することが歴史的に困難であったアノフェレスガンビアに特異的なマイクロインジェクション方法を提供するため、重要です。この技術の主な利点は、トランスジェニックアノフェレスガンビアを確実に作成する点です。この技術の応用は、集団の抑制や野生型アノフェレスガンビア集団の改変に適した蚊の作成を促進することにより、マラリア撲滅のための新しい戦略にまで及ぶ。この方法論は、異なる蚊種に容易に適応することができる。マイクロインジェクション技術は、忍耐と実践を必要とします。学習曲線があります。まず、吸引器を使用して、透明な50ミリリットルの円錐管に20〜30匹のメスを入れる。チューブが両端で切り開き、一方の端にラテックス歯科フィルム、もう一方の端にナイロンメッシュとフィルターペーパーで覆われ、蚊が卵を産みます。蚊で満たされたチューブを二重蒸留水で満たされた小さなペトリ皿に入れ、チューブと皿を28°Cのインキュベーターに45分間置きます。チューブをインキュベーターから取り出し、チューブを空のケージに挿入します。チューブを軽くたたいて、蚊が飛び出します。すべての蚊が飛び出したら、ケージからチューブを取り外します。チューブに蚊が含まれず、下のリングを緩め、ナイロンを取り外し、鉗子を使用して卵をチューブから慎重に取り除きます。卵を含んだろ過紙を水で湿らせたろん紙の層を含むプラスチックペトリ皿に入れます。きれいなガラススライドに膜を置き、きれいな鉗子を使用して膜をフィルターペーパーで覆い、約1ミリメートルの膜フィルターを覆い残します。フィルターペーパーを脱イオン水で濡らし、ブラシを使用して30〜50個の胚を膜の端にそっと移し、卵を膜に沿って垂直に整列させます。卵がマイクロインジェクション顕微鏡で観察されるとき、後端が下の位置にあり、針で15度の角度を形成するように、卵を同じ方向に向けます。膜の縁全体を卵で並べます。マイクロローダーチップを使用して、2マイクロリットルのDNA混合物で針を充填します。針ホルダーに針を差し込み、自動圧力ポンプチューブを接続します。針をスライドの平面に合わせて 15 度の角度になるように調整します。最初の卵に注意して針先を開き、針の先端を後極に約10マイクロメートルに挿入します。注射が成功すると、卵の中の細胞質の小さな動きにつながります。顕微鏡同軸ステージコントロールを使用して、次の卵に移動して注入を継続します。針先が開いたままで詰まっていないようにするには、別の胚に入る前に[注射]ボタンを押して、針の開口部にある小さな液滴を視覚化します。針が詰まったら、[クリア]ボタンを押して針をクリアし、液滴の可視化テストを繰り返します。針先の開口部が少し大きくなる場合は、必要に応じて圧力を調整し、液滴のサイズが小さく保たれるようにします。1針で約40~50個の卵を注入します。注射が完了したら、フィルターペーパーが並び、50ミリリットルの脱イオン水で満たされたガラス容器に卵をすすぐ。このプロトコルを用いて、アノフェレスガンビアの実験室株G3の生殖細胞系列に自律遺伝子駆動系を挿入した。このシステムは、この種の第3染色体の枢機卿オルソログ(Agcd)を標的とするように設計された。プラスミドpCO37を示す。これは、ナノ遺伝子オルソログの調節要素の制御下にレンサ球菌のpyogenesCas9エンドヌクレアーゼが含まれています。さらに、U6遺伝子プロモーターの制御下にガイドRNAとシアン蛍光タンパク質を発現する3XP3 CFPのCFP優位マーカーカセットを有する。分子アプローチは、AgNosCd-1と指定された約10キロの塩基対DNAの正確な挿入を検証した。広範なフォローアップ分析は、AgNosCd-1が駆動において非常に効率的であり、抵抗性対立遺伝子をほとんど作り出さなかったこと、および遺伝子駆動系の統合および発現のために大きな遺伝的負荷を持たなかったことを示した。蚊を含むホモ接合遺伝子ドライブは機能喪失変異体であり、幼虫、子犬、および赤目表現型を有する新たに出現した成人であった。このプロトコルを試みるとき、88で保つことは、灰色の卵を明るくし、白い卵を避けるために良い孵化のために重要です。

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学ぶAnopheles gambiae胚への微小注入法。遺伝子導入により転形蚊を作製し、マラリア媒介蚊の制御や野生個体群の改変に応用可能な信頼性の高い技術です。

アノフェレスガンビア胚の微小注入法

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