Name: 腸幹細胞機能をex vivoで研究するためのマウス結腸陰窩の三次元培養 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-10-11T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 46 s
Description: 学ぶマウス結腸陰窩の三次元培養法で、ex vivo環境における腸幹細胞機能を解析する手法です。claudin-7ノックアウトの影響を評価し、炎症性腸疾患や大腸がん治療への新たな標的発見に貢献します。

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この研究はNIH DK103166によって資金提供されました。

すべての動物実験と手順は、イーストカロライナ大学(ECU)の動物管理および使用委員会(IACUC)によって承認され、実験動物の管理と使用に関する国立衛生研究所およびECUのガイドラインに準拠して実施されました。誘導性の腸特異的クローディン-7ノックアウトマウスを、C57BL6クローディン-7-フロックストランスジェニックマウスとVillin-CreERT2マウスと交配することによって作製した19。この研究では、3ヶ月齢の雄および雌マウスを使用した。
1. 試薬・装置の準備
<ol><li>関連する実験を開始する前に、以下の試薬/機器を冷却してください:陰窩分離中に結腸組織を洗浄するためのリン酸緩衝生理食塩水(PBS)。上皮解離媒体とのインキュベーションのためのロッカー/ローテーター(4°C冷蔵庫に入れる)。<ol><li>ゲルマトリックス( 材料表を参照)を-20°Cから取り出し、氷上で解凍してからめっきします。</li>
		<li>遠心分離機を4°Cに予冷してから、メッキ用の陰窩をスピンダウンします。</li>
		<li>0.1%クエン酸ナトリウムバッファー( 材料の表を参照)を冷却し、 in situ 細胞死検出の前に氷上に保ちます。</li>
	</ol></li>
	<li>関連する実験を開始する前に、以下の試薬を温めてください:メッキする前に24時間の96ウェル培養プレート。L-WRNメディア( 材料表を参照)プレートされた陰窩に追加する前、および各メディアを変更する前。<ol><li>染色する前にウォーターバスを94°Cに加熱します。</li>
	</ol></li>
</ol>2.マウス結腸陰窩隔離
<ol><li>以下の手順で必要なメディアを準備します。 注:ここでは、2匹のマウスの結腸組織について培地量が計算されます。<ol><li>上皮解離培地を調製する:30 mLの1x PBS + 400 μLの0.5 M EDTA + 50 μLの10 mM Y-27632二塩酸塩( 材料の表を参照)。使用するまで氷の上に保管してください。</li>
		<li>クリプト解離培地の調製:10 mLの1x PBS + 10 μLの10 mM Y-27632二塩酸塩。使用するまで氷の上に保管してください。</li>
		<li>L-WRN培地の補足:L-WRN培地50 mL + L-グルタミンを含むDMEM高グルコース47.5 mL + L-グルタミン500 μL + ペニシリン/ストレプトマイシン500 μL + B-27サプリメント1,000 μL(50x) + N2サプリメント500 μL(100x) + HEPES(1 M)緩衝液50 μL( 材料表を参照)。</li>
		<li>完全な(補充された)L-WRN培地をろ過し、アリコートして-20°Cで最大3か月間保存します。 注:解凍した培地は、4°Cで最大2週間安定です。</li>
	</ol></li>
	<li>暗号分離を実行します。<ol><li>全身麻酔の場合は、1 mLのイソフルランを綿に加え、0.09立方フィートの麻酔室内のプラスチックカセットに入れます( 材料の表を参照)。呼吸が止まるまで(約3〜5分)マウスを麻酔室に入れ、頸椎脱臼を行います20。</li>
		<li>マウスの正中線を約2回切開し、背中の皮膚を固定して腹部を露出させます。近位側から盲腸のすぐ下、遠位側から直腸の上を切断することにより、結腸を隔離する21。</li>
		<li>鉗子を使用して、結腸に付着した脂肪組織を取り除きます。鉗子の平らな端を利用して糞便をそっと押し出し、組織を縦方向に切り開きます。</li>
		<li>鉗子を使用して冷たい1x PBSで組織を10〜15回洗浄し、洗浄の合間にPBSで組織を「渦巻く」ようにします。</li>
		<li>清潔で鋭利なはさみを使用して、組織を約3〜5 mmの大きさの小片に切ります。</li>
		<li>2匹目のマウスに対してこのプロセスを繰り返し、冷たい上皮解離培地を含む50 mLチューブで組織片を結合します(ステップ2.1.1)。</li>
		<li>結腸組織片を上皮解離培地中で、穏やかに揺らしながら4°Cで90分間インキュベートします。</li>
		<li>組織片をチューブの底に沈め、組織を破壊することなく上皮解離培地を慎重に廃棄します。冷たい1x PBSで組織を10〜15回洗浄するときに、このプロセスを繰り返します。最終洗浄中にできるだけ多くのPBSを廃棄してください。</li>
		<li>結腸組織片を含む50 mLチューブに陰窩解離培地(ステップ2.1.2)を追加し、手で5〜10分間連続的に振とうします。 メモ: メディアは、分離された暗号から曇っている必要があります。</li>
		<li>細胞培養フードの下で、組織と培地を70 μmのナイロンセルストレーナー( 材料の表を参照)でろ過し、新しい50 mLチューブに入れます。</li>
		<li>室温で200 x g で10分間遠心分離し、陰窩含有ペレットを乱すことなく上清を廃棄します。 注:装置によっては、濾した培地を遠心分離用の15mLチューブに移すことができます。</li>
		<li>ペレットを~3-4 mLの冷たい1x PBSに再懸濁します。</li>
		<li>単離された陰窩の10 μLを顕微鏡スライド上に一列にピペットで入れます。顕微鏡下で、10 μLあたりの陰窩濃度を推定するために、いっぱいで長い陰窩の数を数えます。</li>
		<li>96ウェルプレートに10個のクリプト/μLをプレート化するためにスピンダウンするクリプトの適切な体積を計算します。</li>
	</ol></li>
</ol>3.クリプトメッキ
<ol><li>1.5 mLマイクロ遠心チューブで適量の単離された陰窩を200 x g で4°Cで5分間遠心分離します。</li>
	<li>ペレット化された陰窩を破壊することなく、1,000 μLのピペットを使用して上清を慎重に除去します。</li>
	<li>100 μLのゲルマトリックス(9ウェルに十分)をペレット状の陰窩とピペットに注意深く加え、気泡が発生しないようにします。 注:ゲルマトリックスと陰窩を混合する方法の詳細については、「ディスカッション」セクションを参照してください。通常、9つのウェルに対して100 μLで十分です。</li>
	<li>ゲルマトリックスを部分的に固化させます(~1〜2分)。</li>
	<li>プレート10 μLのゲルマトリックスを予め加温した96ウェル培養プレートの各ウェル内の陰窩と混合し、ドーム形状を形成した。 注意: ドームをウェルの中央に置きます。ゲルマトリックスがウェルの側面に広がらないように注意してください。凝固とメッキの詳細については、「ディスカッション」セクションを参照してください。</li>
	<li>ゲルマトリックスを5%CO2を含む37°Cのインキュベーター内で10〜20分間完全に設定します。</li>
	<li>L-WRNメディアの最終的な作業ソリューションを準備します。<ol><li>100 μLのペニシリン/ストレプトマイシンを10 mLアリコートのL-WRN培地に加えます(ステップ2.1.3を参照)(4°Cで2週間安定)。</li>
		<li>ペニシリン/ストレプトマイシンを含む900 μLのL-WRN培地にサプリメントを追加します:1 mg/mL EGFの0.9 μL+ 10 mM Y-27632二塩酸塩の0.9 μL。 注:ボリュームは9つのウェルに基づいています。Y-27632二塩酸塩は、0日目(めっき時)にのみ添加されます。</li>
	</ol></li>
	<li>各ウェルに100 μLの培地を加えます。ドームを乱さないように注意してください。</li>
	<li>5%CO2 を用いて37°Cで24時間インキュベートする。</li>
</ol>4.文化におけるクローディン-7ノックアウトの作成
<ol><li>陰窩がメッキ後24時間培養で正常に成長するのを待ちます。</li>
	<li>1.5 mLの微量遠心チューブに、2.7 μLの1 mmol / L 4-ヒドロキシタモキシフェン(4OH-タモキシフェン)を900 μLのL-WRN培地(最終濃度3 μmol/L)+ 0.9 μLの1 mg/mL EGFに加えます。 注:4OH-タモキシフェンの原液は、粉末状の4OH-タモキシフェン( 材料の表を参照)を1x PBSと1 mmol / Lの濃度で混合することによって調製されます。</li>
	<li>真空吸引 によって ウェルから古い培地を取り除きます。</li>
	<li>100 μLの4OH-タモキシフェン含有培地を各ウェルに加え、クローディン-7 cKO/4OH-TAMとしてラベル付けします。 注意: DMSOをコントロールウェルに追加する必要があります。新鮮な4OH-タモキシフェン含有培地は2日ごとに追加する必要があります。</li>
	<li>次の培地交換(~2-3日)まで37°Cでインキュベートします。</li>
</ol>5.結腸オルガノイドの維持
注意: メディアは2〜3日ごとに交換する必要があります。12日までの文化。
<ol><li>L-WRN培地の新鮮な最終作業溶液を調製します:900 μLのL-WRN培地+ 0.9 μLの1 mg/mL EGF。</li>
	<li>真空吸引 によって ウェルから古い培地を取り除きます。ウェルに新しい培地を追加します。 注意: ドームを乱さないように注意してください。</li>
	<li>次の培地交換まで37°Cでインキュベートします。 注:培養物は、実験に必要な期間維持および継代することができます。本研究の培養物は通常9〜12日間維持されましたが、さらに15〜20日間継続することもできます。</li>
</ol>6. 結腸オルガノイドの採取と包埋
<ol><li>真空吸引 によって ウェルから古い培地を取り除きます。</li>
	<li>オルガノイドを4%パラホルムアルデヒド(PFA)で室温で1時間固定します。 注意: PFAは有毒物質です。この試薬を使用するときは注意してください。</li>
	<li>真空吸引 によって ウェルから4%PFAを除去し、30%スクロースを4°Cで24時間加えます。</li>
	<li>プラスチック金型にラベルを付け、最適な切削温度(OCT)コンパウンドで90%まで充填します(材料表を参照)。</li>
	<li>真空吸引 により ウェルから30%スクロースを除去します。10 μLの1x PBSを各ウェルに加えます。</li>
	<li>ピペットチップでウェルの底をそっと引っ掻き、オルガノイドを含むドームを解離します。</li>
	<li>ピペットで、解離したオルガノイドを含むPBSを取り出し、OCTを含む型に液体をロードします。 注: OCT コンパウンドに気泡を入れないでください。</li>
	<li>すべてのオルガノイドがすべてのウェルから除去されるまで、このプロセスを続けます。</li>
	<li>ステンレス鋼のデュワーフラスコに、ドライアイスペレットと2-メチルブタン(ドライアイスペレットを覆うのに十分)を追加します(材料の表を参照)。</li>
	<li>オルガノイド含有OCTブロックを2-メチルブタンの上にしっかりと保持して瞬間凍結させる。</li>
	<li>オルガノイド含有OCTブロックは、切片化の準備ができるまで-80°Cで保管します(最大1年間保存できます)。</li>
</ol>7.免疫蛍光
<ol><li>オルガノイド含有OCTブロックをクライオスタット( 材料表参照)を用いて5 μmの厚さで-20°Cで切片化した。</li>
	<li>各切片について、顕微鏡でオルガノイドが捕捉されたことを確認します。切片作成が完了したら、染色の準備ができるまでスライドを-80°Cで保管します(最大6か月間保存できます)。</li>
	<li>スライドを10 mMクエン酸ナトリウム緩衝液中で94°Cで10分間加熱します。 注:バッファーは、クエン酸ナトリウムを脱イオン水に溶解することによって作られます。塩酸でpHを6に調整します。</li>
	<li>スライドをベンチトップで20分間冷まします。蒸留水で5分間すすいでください。</li>
	<li>スライドを0.2%Triton X-100を含む染色ラック( 材料表を参照)に組み立て、100 mMグリシンで15分間インキュベートします。</li>
	<li>1x PBSでそれぞれ5分間3回すすぎます。5%ウシ血清アルブミン(BSA)で室温で45分間ブロックします。</li>
	<li>クローディン-7抗マウスウサギ一次抗体22 (1%BSAで希釈)とともに4°Cで一晩インキュベートします。 1x PBSでそれぞれ10分間3回すすぎます。</li>
	<li>Cy3抗ウサギ二次抗体23 (1%BSAで希釈)とともに室温で1時間インキュベートします。1x PBSでそれぞれ10分間3回すすぎます。</li>
	<li>DAPIを使用して適切な封入剤( 材料表を参照)を使用してスライドをマウントし、カバーガラスを追加します。</li>
</ol>8.細胞死の検出
<ol><li>ウェル内のオルガノイドを4%パラホルムアルデヒドで室温で1時間固定します。1x PBSで5分間すすぎます。</li>
	<li>培養プレートを氷上で、冷たい0.1%クエン酸ナトリウムバッファー中の0.1%Triton X-100と共に2分間インキュベートします。1x PBSでそれぞれ5分間2回すすぎます。</li>
	<li>in situ細胞死検出キットであるTMR Redを使用してTUNEL反応24,25を調製します(材料の表を参照)。50 μLのTUNEL反応試薬を各ウェルに加えます。</li>
	<li>加湿雰囲気中で、暗所で37°Cで1時間インキュベートします。 注意: 残りの手順はすべて暗闇の中で完了する必要があります。</li>
	<li>1x PBSでそれぞれ5分間3回すすぎます。1:2,500ヘキスト(1x PBSで希釈、 材料表を参照)で3分間インキュベートします。</li>
	<li>1x PBSでそれぞれ5分間3回すすぎます。TRITCフィルターを使用して、蛍光顕微鏡で画像を視覚化します( 材料表を参照)。</li>
</ol>

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</ol>

著者は利益相反を宣言しません。

オルガノイド培養は、幹細胞機能、腸生理学、創薬、ヒト腸疾患、および組織再生と修復を研究するための優れたモデルです7,8,9,10,11,26。多くの利点がありますが、確立するのは難しい場合があります。プロトコル全体のすべてのステップで注意を払う必要がありますが、最も重要なのはめっき段階でです。単離されたクリプトをゲルマトリックスと混合する場合は、遠心分離後に形成されたクリプトペレットを分解し、クリプトをマトリックス全体に均等に分配するために、完全にピペットで上下にピペットしてください。同時に、ピペッティング中にマトリックスに気泡を導入しないようにしてください。これを行うには、ピペットチップを1.5 mLチューブの底に向けてゆっくりとピペッティング...

腸オルガノイド培養は、幹細胞が一次組織の腸陰窩から単離され、ゲルマトリックスに播種される3次元(3D)ex vivoシステムです1,2。これらの幹細胞は、自己複製、自己組織化、および臓器機能2が可能です。オルガノイドは組織の微小環境を模倣しており、細胞よりも操作性は劣りますが、2次元(2D)in vitro細胞培養モデルよりもin vivoモデルに似ています3,4。このモデルは、適切な細胞間接着の欠如、細胞-マトリックス相互作用、均質な集団など、2Dモデルで遭遇する障害を排除し、高コストや長期間を含む動物モデルの制限も軽減します5。腸管オルガノイド(結腸陰窩由来の幹細胞から増殖したものに対してコロノイドとも呼ばれる)は、本質的に、生体内に存在するすべての細胞型を含む上皮と内腔を含むミニ臓器です。このモデルにより、システムを操作して、幹細胞ニッチ、腸生理学、病態生理学、腸の形態形成など、腸の多くの側面を研究することができます3,5,6。また、創薬、炎症性腸疾患(IBD)や結腸直腸癌などのヒト腸疾患の研究、患者固有の個別化治療開発、組織再生の研究のための優れたモデルを提供します4,7,8,9。さらに、オルガノイド系は、細胞コミュニケーション、薬物代謝、生存率、増殖、および刺激に対する応答を研究するためにも使用できます7,8。動物モデルは、腸の病理学的状態の潜在的な治療法をテストするために使用できますが、一度に複数の薬物を研究することは課題となるため、非常に限られています。in vivoにはより多くの交絡変数があり、関連するコストと時間はそれぞれ高くて長いです。一方、オルガノイド培養システムは、より短い期間で一度に多くの治療薬のスクリーニングを可能にし、患者由来のオルガノイド培養の使用による個別化治療も可能にします4,8。結腸オルガノイドが組織組織、微小環境、および機能を模倣する能力は、再生と組織修復を研究するための優れたモデルにもなります9。当研究室では、小腸オルガノイド培養系を確立し、クローディン-7が小腸幹細胞機能に及ぼす影響を研究しています10。この研究では、大腸オルガノイド培養システムを確立して、条件付きクローディン-7ノックアウト(cKO)モデルで幹細胞の自己複製、分化、増殖能力または能力の欠如を研究します。
クローディン-7は、腸内で高発現する非常に重要なタイトジャンクション(TJ)タンパク質であり、TJの機能と完全性を維持するために不可欠です11。cKOマウスはIBD様表現型に苦しんでおり、重度の炎症、潰瘍、上皮細胞の脱落、腺腫、およびサイトカインレベルの上昇を示します11,12。クローディンが上皮バリア機能に不可欠であることは広く受け入れられていますが、クローディンの新しい役割が浮上しています。それらは、増殖、遊走、癌の進行、および幹細胞機能に関与しています10、12、13、14、15、16、17。クローディン-7が幹細胞のニッチと結腸幹細胞の機能にどのように影響するかは現在不明です。腸は約5〜7日ごとに急速に自己更新するため、幹細胞ニッチの維持と活性幹細胞の適切な機能が不可欠です18。ここでは、結腸幹細胞ニッチに対するクローディン-7の潜在的な調節効果を調べるためのシステムが確立されています。

<table><tbody><tr><td>0.09立方フィートの省スペース真空デシケーター&nbsp;</td><td>United States Plastic Corp</td><td>78564</td><td>麻酔チャンバー</td></tr><tr><td>0.5 M EDTA pH 8.0</td><td>Invitrogen</td><td>AM9261</td><td></td></tr><tr><td>1.5 mL 微量遠心チューブ</td><td>ThermoFisher</td><td>69715</td><td></td></tr><tr><td>15 mL 円錐形遠心チューブ</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-959-53A</td><td></td></tr><tr><td>1x Dulbecco'リン酸緩衝生理食塩水</td><td>Gibco</td><td>14190-144</td><td></td></tr><tr><td>2-メチルブタン</td><td>Sigma</td><td>277258</td><td></td></tr><tr><td>4% パラホルムアルデヒド</td><td>ThermoFisher</td><td>J61899.</td><td></td>AK</tr><tr><td>4-ヒドロキシタモキシフェン(4OH-TAM)</td><td>シグマ</td><td>579002</td><td></td></tr><tr><td>50 mL円錐形遠心分離管</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>14-432-22</td><td></td></tr><tr><td>70 & マイクロ;m ナイロン細胞ストレーナー</td><td>Corning</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>96 well culture plate</td><td>Greiner Bio-One</td><td>655180</td><td></td></tr><tr><td>B-27 Supplement (50x)</td><td>Gibco</td><td>12587-010</td><td></td></tr><tr><td>Bovine serum albumin</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP1605-100</td><td></td></tr><tr><td>Claudin-7 anti-mouseine rabbit antibody</td><td>Immuno-Biological Laboratories&nbsp;</td><td>18875</td><td></td></tr>カバー<tr><td>ガラス(24 x 50-1.5)</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>12544E</td><td></td></tr><tr><td>クライオモールド</td><td>vwr</td><td>25608-916</td><td></td></tr><tr><td>Cultrex RCF BME、タイプ2</td><td>R&D Systems</td><td>3533-005-02</td><td>ゲルマトリックス</td></tr><tr><td>Cy3 抗ウサギ抗体</td><td>Jackson Immunoresearch</td><td>111-165-003</td><td></td></tr><tr><td>デュワーフラスコ</td><td>Thomas Scientific</td><td>1173F61</td><td></td></tr><tr><td>DMEM High Glucose with L-Glutamine</td><td>ATCC</td><td>30-2002</td><td></td></tr><tr><td>EVOS FLoid Imaging System</td><td>ThermoFisher</td><td>4477136</td><td></td></tr><tr><td>Fluoro-Gel II with DAPI</td><td>ElectronMicroscopy Sciences</td><td>17985-50</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX (100x)</td><td>Gibco</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>Glycine</td><td>JT Baker</td><td>4059-02</td><td></td></tr><tr><td>HEPES (1 M) 緩衝液</td><td>Gibco</td><td>15630-080</td><td></td></tr><tr><td>Hoechst</td><td>ThermoFisher</td><td>62249</td><td></td></tr><tr><td>In situ 細胞死検出キット、TMR Red</td><td>Roche</td><td>12156792910</td><td></td></tr><tr><td>イソフルラン</td><td>Pivetal</td><td>07-893-8440</td><td></td></tr><tr><td>L-WRN Media</td><td>ハーバード大学医学部 胃腸オルガノイド 誘導と文化</td><td>コア N/A</td><td></td></tr><tr><td>マウス手術キット</td><td>ケントサイエンティフィックコーポレーション</td><td>INSMOUSEKIT</td><td></td></tr><tr><td>マウス EGF</td><td>PeproTech</td><td>315-09-500UG</td><td></td></tr><tr><td>N2 サプリメント (100x)</td><td>Gibco</td><td>17502-048</td><td></td></tr><tr><td>最適切削温度 (OCT) コンパウンド&nbsp;</td><td>寒天科学</td><td>AGR1180</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>Sequenza Rack</td><td>vwr</td><td>10129-584</td><td></td></tr><tr><td>クエン酸ナトリウム</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>S-279</td><td></td></tr><tr><td>ショ糖</td><td>Sigma</td><td>S9378</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma</td><td>X100</td><td></td></tr><tr><td>真空フィルター (0.22 & micro;m;セルロースアセテート)</td><td>コーニング</td><td>430769</td><td></td></tr><tr><td>Y-27632二塩酸塩</td><td>トクリスバイオサイエンス</td><td>1254</td><td></td></tr></tbody></table>

腸幹細胞機能をex vivoで研究するためのマウス結腸陰窩の三次元培養

Three-Dimensional Culture of Murine Colonic Crypts to Study Intestinal Stem Cell Function Ex Vivo

腸上皮は5〜7日ごとに再生し、陰窩領域の底に位置する腸上皮幹細胞(IESC)集団によって制御されています。IESCには、自己複製してさまざまな上皮細胞タイプに分化する活性幹細胞と、損傷の場合に予備幹細胞として機能する静止幹細胞が含まれます。腸上皮の再生は、これらの活性IESCの自己複製および分化能力によって制御される。さらに、陰窩幹細胞集団のバランスと幹細胞ニッチの維持は、腸の再生に不可欠です。オルガノイド培養は、幹細胞の生存と機能を調節するタンパク質、シグナル伝達分子、および環境の手がかりを研究するための重要で魅力的なアプローチです。このモデルは、動物モデルよりも安価で、時間もかからず、操作可能です。オルガノイドはまた、組織の微小環境を模倣し、 in vivo 関連性を提供します。本プロトコルは、結腸陰窩の単離、これらの単離された陰窩細胞を3次元ゲルマトリックスシステムに埋め込み、陰窩細胞を培養して自己組織化、増殖、自己複製、および分化が可能な結腸オルガノイドを形成することを記載しています。このモデルにより、クローディン-7などの特定のタンパク質をノックアウトしたり、シグナル伝達経路を活性化/不活性化したりする環境を操作して、これらの効果が結腸幹細胞の機能にどのように影響するかを調べることができます。具体的には、結腸幹細胞機能におけるタイトジャンクションタンパク質クローディン-7の役割を調べた。クローディン-7は、腸の恒常性とバリア機能と完全性を維持するために不可欠です。マウスにおけるクローディン-7のノックアウトは、腸の炎症、上皮過形成、体重減少、粘膜潰瘍、上皮細胞の脱落、および腺腫を示す炎症性腸疾患様表現型を誘発します。以前、クローディン-7は小腸の腸管上皮幹細胞機能に必要であることが報告されていました。このプロトコルでは、大腸におけるクローディン-7の役割を研究するために結腸オルガノイド培養システムが確立されています。

結腸幹細胞に対するクローディン-7の調節効果を調べるために、結腸陰窩を上記のようにマウス結腸組織から単離し、 図1Aに示した。陰窩が一次組織から単離されたら、96ウェルプレートの3Dマトリックスに播種して11日間増殖させました(図1)。正常な健康な陰窩は、2日目までに内腔を閉じてスフェロイドになり、最終的には約5日目に出芽し始め、さまざまな上皮細胞タイプを形成します(図1B)。コロノイドは11日目まで成長させ、そこでさらなる実験のために収穫しました(図1B)。培養中のクローディン-7をノックアウトするために、陰窩は24時間正常に成長することを許可された。24時間後、陰窩を3 μmol/L 4OH-タモキシフェン(TAM)で処理し、さらに10日間培養しました。新鮮な4OH-TAMを含む培地を2日毎に交換した。DMSOは、コントロールウェルのビヒクルとして使用されました。クローディン-7欠損陰窩(クローデ...

本プロトコルは、クローディン-7ノックアウトモデルにおける結腸幹細胞の活性および機能を研究するためのマウス結腸オルガノイド系の確立を記載する。

The intestinal epithelium regenerates every 5-7 days, and is controlled by the intestinal epithelial stem cell (IESC) population located at the bottom of ...

このプロトコルは、動物モデルよりも低コストで操作可能な環境で結腸幹細胞の機能を研究する方法を提供します。オルガノイド培養により、免疫のない環境で幹細胞機能を研究することができます。これにより、クローディン-7のノックアウトなど、特定の原因の影響を特定することができます。幹細胞の機能機構を理解することで、炎症性腸疾患や大腸がんなどの衰弱性疾患の新たな治療標的が明らかになる可能性があります。安楽死させたマウスから結腸陰窩の分離を開始するには、マウスの正中線を約2インチ切開します。次に、皮膚をピンで留めて腹部を露出させます。結腸を分離するために、近位側からコエカムのすぐ下、遠位側から直腸の上を切断します。次に、鉗子を使用して結腸に付着した脂肪組織を取り除きます。鉗子の平らな端で単離された結腸から糞便を押し出した後、組織を縦方向に切り開きます。鉗子による洗浄の間に組織をPBSで回転させることにより、冷たいPBSで組織を10〜15回洗浄します。次に、清潔で鋭いはさみを使用して、組織を約3〜5ミリメートルの範囲の小片に切ります。別の安楽死マウスから結腸を分離した後、冷たい上皮解離培地を含む50ミリリットルの遠沈管ですべての組織片を結合し、結腸組織片を上皮解離培地で摂氏4度で90分間インキュベートします。インキュベーション後、組織片をチューブの底に沈めます。落ち着いたら、組織片を破壊することなく上皮解離培地を廃棄します。冷たいPBSで組織を10〜15回洗浄するときに、このプロセスを繰り返します。最終洗浄中にできるだけ多くのPBSを廃棄してください。次に、50ミリリットルのチューブで洗浄した結腸組織片に冷陰窩解離培地を加え、手で5〜10分間振とうします。細胞培養フードの下で、組織を含む培地を70ミクロンのナイロンセルストレーナーでろ過し、新鮮な50ミリリットルの遠沈管に入れます。ろ過後、チューブを200 Gで室温で10分間遠心分離し、ペレット化された陰窩を乱すことなく上清を廃棄します。ペレットを3〜4ミリリットルの冷たいPBSに再懸濁します。顕微鏡スライド上に一列に10マイクロリットルの陰窩懸濁液をピペットで入れる。顕微鏡を使用して、完全で長い陰窩の数を数えて陰窩濃度を推定し、96ウェルプレートにマイクロリットルあたり10個の陰窩をプレートするのに必要な陰窩の適切な量を計算します。1.5ミリリットルのマイクロ遠心チューブで適量の単離された陰窩を200 Gで摂氏4度で5分間遠心分離します。その後、ペレット化された陰窩を破壊することなく、1, 000マイクロリットルのピペットを使用して上清を除去します。次に、気泡を導入せずにペレット化された陰窩に100マイクロリットルのゲルマトリックスを追加します。ゲルマトリックスが部分的に固まるまで1〜2分待ちます。次いで、10マイクロリットルのゲルマトリックスを予め加温した96穴培養プレートの各ウェル内の陰窩と混合したプレートがドーム形状を形成した。プレートを摂氏37度、二酸化炭素5%下のインキュベーターに入れて、ゲルマトリックスが完全に固まるまで10〜20分待ちます。最後に、抗生物質を添加したL-WRN培地の新たに調製した作業溶液100マイクロリットルを各ウェルに加え、プレートを摂氏37度、5%二酸化炭素下で24時間インキュベートします。オルガノイドを回収するには、真空吸引を適用してウェルから古い培地を取り除き、オルガノイドを4%パラホルムアルデヒドで室温で1時間固定します。次に、真空吸引によってウェルから4%パラホルムアルデヒドを除去し、オルガノイドをウェルあたり100マイクロリットルの30%スクロースで摂氏4度で処理します。24時間後、各ウェルに10マイクロリットルのPBSを加える前に、真空吸引によってウェルから30%スクロースを除去します。ピペットチップを使用してウェルの底を軽く引っ掻き、ドーム含有オルガノイドを解離します。次に、解離したオルガノイドを含むPBSをピペットでウェルから取り出し、最適な切断温度(OCT)コンパウンドを90%充填したラベル付きプラスチックモールドに移します。すべてのオルガノイドがすべてのウェルから除去されるまで、このプロセスを続けます。ドライアイスペレットを含むステンレス鋼のデュワーフラスコに2-メチルブタンを加え、ペレットを覆うのに十分です。OCTブロックを含むオルガノイドを2-メチルブタンの上に安定して保持することにより、瞬間凍結します。最後に、オルガノイド含有OCTブロックを摂氏マイナス80度で切断する準備ができるまで保管します。代表的な画像は、クローディン-7を含む通常の陰窩からのコロノイドの成長の成功を強調しています。クローディン7を含む陰窩は、2日目までに回転楕円体を形成し始め、5日目に発芽し始め、9日目に収穫されるまで成長と発芽を続けました。対照的に、クローディン-7を欠く陰窩は適切なコロノイドを形成することができませんでした。4-ヒドロキシタモキシフェンで2〜3日間処理した後、クローディン-7ノックアウト陰窩は細胞の円形の塊として現れた。対照とは異なり、陰窩は健康な回転楕円体に成長しませんでした。回収したコントロールおよび条件付きノックアウトオルガノイドにおけるクローディン-7の免疫蛍光染色により、培養におけるクローディン-7のノックアウトの成功が確認されました。対照のコロノイドは、9日目にアポトーシスシグナルをほとんど示さなかった。しかし、クローディン-7ノックアウトコロノイドは同時に高いアポトーシスを示しました。めっきする前に部分凝固を確認してください。部分凝固前のメッキは、ゲルマトリックスを拡散させ、ドームが形成されず、陰窩の生存と成長に影響を与えます。このプロトコルは、創薬、細胞コミュニケーション、薬物代謝、生存率、増殖の研究、および患者固有の個別化治療の開発に利用することができます。オルガノイド培養の確立は、病気の研究と個別化医療に革命をもたらしました。

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免疫成分を用いた基本的な3次元(3D)腸管モデルシステム

学ぶマウス結腸陰窩の三次元培養法で、ex vivo環境における腸幹細胞機能を解析する手法です。claudin-7ノックアウトの影響を評価し、炎症性腸疾患や大腸がん治療への新たな標的発見に貢献します。

腸幹細胞機能をex vivoで研究するためのマウス結腸陰窩の三次元培養

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