Name: マウス心不全モデルにおける心拍数依存性拡張期機能の評価のためのペーシング制御手順 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-07-21T14:55:00.000+00:00
Duration: 7 min 49 s
Description: 学ぶマウス心不全モデルにおける経食道ペーシングを用いた心拍数依存性拡張期機能評価プロトコル。心拍数変化に関連する心機能の微妙な変化を検出し、HFpEFにおける拡張期機能障害の研究に新たなアプローチを提供する。

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本研究は、福田医療技術財団(E.T.、G.N.)および日本学術振興会科学研究費助成事業(E.T.)の研究助成を受けて行われました。

この動物実験計画書は、動物実験委員会で承認され、東京大学の動物実験等に関する規定に従ったものです。本研究では、8-12週齢の雄のC57/Bl6Jマウスを用いた。動物は市販の供給源から入手しました( 資料表を参照)。HFpEFのモデルは、前述のように、NG-ニトロ-L-アルギニンメチルエステルと組み合わせて高脂肪食を15週間投与することによって確立されました10。
1. カテーテルの準備と圧力/容量の校正
<ol><li>コンダクタンスカテーテルを生理食塩水に挿入し、PowerLab 8/35と圧力-体積ユニット(MPVSモジュール、 材料表を参照)で構成されるモジュールに取り付けます。</li>
	<li>MPVSモジュール3,11に所定の圧力(0mmHgおよび100mmHg)および体積パラメータ(これらはMPVSモジュールによって異なる)を記録して、圧力と体積を電子的に較正する(製造元の指示も参照)。</li>
</ol>2. カテーテル挿入のための動物の準備
<ol><li>麻酔と換気<ol><li>挿管の5〜10分前に、5 mg / kgのエトミデートと500 mg / kgのウレタンの腹腔内注射を投与します( 材料表を参照)。 注:ウレタンは、動物実験では麻酔薬として有効ですが、ヒトに対して発がん性があると疑われています。したがって、ウレタンが実験目的の達成に必要であり、代替剤が十分でない場合は、取り扱いに注意する必要があります。準備中は、手袋やマスクの着用、ドラフトの使用など、適切な保護対策が義務付けられています。可能な代替として、ケタミン(80 mg / kg、ip)が採用される可能性があります。</li>
		<li>2%イソフルランで飽和させた麻酔チャンバーにマウスを置き、麻酔導入時に38°C〜40°Cに維持された予め温めた加熱パッドに動物を移します。</li>
		<li>手術部位を剃ります。次に、ベタジンとアルコールを交互に3回投与して手術部位を消毒します。</li>
		<li>首を水平に切開(1〜2cm)し、気管の筋肉を切除し、気管を露出させます。外科用2-0シルク縫合糸を気管の下に通し、気管を持ち上げ、小さな切開(1〜2 mm)して開きます。</li>
		<li>気管内に気管内チューブを挿入し、100%酸素と2%イソフルランの混合物を送達する人工呼吸器に接続します(後で0.5%から1%に減らします)。</li>
	</ol></li>
	<li>中心静脈(CV)カテーテルの挿入と輸液注入<ol><li>胸鎖乳突筋の下にある内頸静脈を見つけます3。</li>
		<li>30 Gの針に取り付けられたPE-10シラスティックチューブ( 材料表を参照)で構成される中心静脈カテーテルを頸静脈に挿入します。</li>
		<li>体重10%アルブミン/ NaClの5〜6μL / gのボーラス注入を3分間投与し、その後5〜10μL / minの一定の注入速度で投与します。. 注:このステップは、麻酔によって引き起こされる末梢血管拡張に起因する低血圧を防ぐために重要です。内頸静脈は胸鎖乳突筋と頸動脈の間に位置し、動脈よりも色が濃く見えます。</li>
	</ol></li>
</ol>3.左心室カテーテル法(開胸法)の外科的処置
<ol><li>麻酔をかけたマウスの手術部位を剃ります。次に、ベタジンとアルコールを交互に3回投与して手術部位を消毒します。</li>
	<li>つま先をつまんで麻酔の深さを確認します。次に、剣状突起の下に水平切開(2〜3 cm)を行い、鈍いハサミを使用して皮膚を胸壁から分離します。</li>
	<li>電気焼灼を使用して胸壁の両側を横方向に切断します( 材料表を参照)。</li>
	<li>横隔膜を切開して心臓を露出させ、鉗子を使用して心膜を心臓からそっと取り除きます。</li>
	<li>左心室(LV)の頂点に27Gの針を挿入し、穿刺穴 から コンダクタンスカテーテルをLVに逆行性に挿入します。</li>
	<li>正方形の圧力-体積ループが得られるようにカテーテルの位置を調整します。</li>
	<li>下大静脈(IVC)閉塞時のPVループの形状を確認することで、負荷条件の変化が生じた際にカテーテルが乳頭筋に接触しないことを確認します。 注意: 適切な心臓への曝露は、手順を容易にし、クリアな視界を得るのに役立ちます。</li>
</ol>4.PVループデータを記録し、収縮末期圧力-容積関係(ESPVR)および拡張末期圧力-容積関係(EDPVR)を決定する
注:IVCオクルージョンによってプリロードを減らすことで、ESPVRとEDPVRの決定が可能になります。
<ol><li>信号安定化後(カヌレーション後5〜10分)に、LabChartソフトウェア( 材料表を参照)、PowerLab、およびMPVSモジュールを使用して、ベースラインの圧力-体積(PV)ループを記録および分析します。</li>
	<li>鉗子でIVCを圧縮してIVC閉塞を実行し、IVC閉塞中に少なくとも20心臓サイクルのPVループを記録します。PVループの収縮期末点を通る線形回帰直線をフィッティングしてESPVRを決定し、LabChartソフトウェアを使用してPVループの拡張期末点を通る曲線線フィッティングしてEDPVRを決定します。 注意: 肺の動きのアーチファクトを防ぐために、IVC閉塞中は人工呼吸器を停止してください。パンクロニウム(0.5-1 mg / kg)などの麻痺薬は、肺の動きが過剰である場合に役立つ可能性があり、安定した麻酔面が確認された後にのみ使用する必要があります。.</li>
</ol>5.経食道ペーシング
<ol><li>2-Fr四極電極カテーテルを食道に挿入し、カテーテルをパルス刺激装置に接続し( 材料表を参照)、心房捕捉閾値を決定します(通常、刺激振幅は3mA、パルス幅は1msです)。</li>
	<li>腹腔内に投与された20 mg / kgのイバブラジン( 材料表を参照)を使用して、HRを400ビート/分未満に減速します。.</li>
	<li>安定化後、400 拍/分から 700 拍/分までのさまざまなペーシング速度で、100 拍/分ずつ増分して、PV ループの 20 回の連続心臓サイクルを取得します。各ペーシングレートで5分以上のサイクルを取得します。</li>
</ol>6.生理食塩水校正と大動脈流量校正
<ol><li>人工呼吸器を不活性化し、CVカテーテルを介して5〜10μLの高張生理食塩水を静脈内投与します。.</li>
	<li>生理食塩水注入中の圧力と容量の変動を記録し、PowerLab 3,11 を使用して Vp 値を計算します。</li>
	<li>生理食塩水の校正を繰り返して、精度と再現性を高めます。</li>
	<li>音量信号を乱さないように、マウスを左側に回します。</li>
	<li>脊椎に向かってTh3からTh5の間で外側開胸術を行い、鉗子で下行大動脈のごく一部を静かに解剖します。</li>
	<li>血管流量プローブ( 材料表を参照)を大動脈の上に置き、心拍出量を測定します。 注:絶対体積を正確に計算するには、生理食塩水校正と大動脈流量校正の2種類の校正を使用する必要があります。過剰な塩負荷は収縮性の低下をもたらす可能性があるため、動物被験者への高張生理食塩水注入に関連する潜在的なリスクを認識することが重要です。.</li>
</ol>7.安楽死
<ol><li>研究後、子宮頸部脱臼 による 麻酔薬の過剰摂取下でマウスを安楽死させます。 注:生命機能の完全な停止を確実にするために、麻酔下での放血とその後の心臓組織採取など、安楽死の二次的な方法が採用されています。</li>
</ol>

心房ペーシングプロトコルを使用したHR依存性心臓パフォーマンスの探索

<ol><li>Backhaus, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exercise+stress+real-time+cardiac+magnetic+resonance+imaging+for+noninvasive+characterization+of+heart+failure+with+preserved+ejection+fraction%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Exercise stress real-time cardiac magnetic resonance imaging for noninvasive characterization of heart failure with preserved ejection fraction.</a> Circulation. 143 (15), 1484-1498 (2021).</li>
<li>Borlaug, B. A., Nishimura, R. A., Sorajja, P., Lam, C. S. P., Redfield, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exercise+hemodynamics+enhance+diagnosis+of+early+heart+failure+with+preserved+ejection+fraction.+Circulation%5BTitle%5D)+AND+%22Heart+Failure%22%5BJournal%5D)">Exercise hemodynamics enhance diagnosis of early heart failure with preserved ejection fraction. Circulation.</a> Heart Failure. 3 (5), 588-595 (2010).</li>
<li>Pacher, P., Nagayama, T., Mukhopadhyay, P., Bátkai, S., David, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+cardiac+function+using+pressure-volume+conductance+catheter+technique+in+mice+and+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Measurement of cardiac function using pressure-volume conductance catheter technique in mice and rats.</a> Nature Protocols. 3 (9), 1422-1434 (2008).</li>
<li>Cingolani, O. H., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pressure-volume+relation+analysis+of+mouse+ventricular+function%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology+-+Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">Pressure-volume relation analysis of mouse ventricular function.</a> American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. 301 (6), 2198-2206 (2011).</li>
<li>Numata, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+pacing-controlled+protocol+for+frequency-diastolic+relations+distinguishes+diastolic+dysfunction+specific+to+a+mouse+HFpEF+model%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology+-+Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">A pacing-controlled protocol for frequency-diastolic relations distinguishes diastolic dysfunction specific to a mouse HFpEF model.</a> American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. 323 (3), H523-H527 (2022).</li>
<li>Piña, I. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exercise+and+heart+failure%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Exercise and heart failure.</a> Circulation. 107 (8), 1210-1225 (2003).</li>
<li>Georgakopoulos, D., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Minimal+force-frequency+modulation+of+inotropy+and+relaxation+of+in+situ+murine+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Minimal force-frequency modulation of inotropy and relaxation of in situ murine heart.</a> Journal of Physiology. 534 (2), 535-545 (2001).</li>
<li>Takimoto, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Frequency-+and+afterload-dependent+cardiac+modulation+in+vivo+by+troponin+I+with+constitutively+active+protein+kinase+A+phosphorylation+sites%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Frequency- and afterload-dependent cardiac modulation in vivo by troponin I with constitutively active protein kinase A phosphorylation sites.</a> Circulation Research. 94 (4), 496-504 (2004).</li>
<li>Meyer, M., Lewinter, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+rate+and+heart+failure+with+preserved+ejection+fraction%3A+Time+to+slow+%CE%B2-blocker+use%3F+Circulation%5BTitle%5D)+AND+%22Heart+Failure%22%5BJournal%5D)">Heart rate and heart failure with preserved ejection fraction: Time to slow β-blocker use? Circulation.</a> Heart Failure. 12 (8), 006213(2019).</li>
<li>Schiattarella, G. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nitrosative+stress+drives+heart+failure+with+preserved+ejection+fraction%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Nitrosative stress drives heart failure with preserved ejection fraction.</a> Nature. 568 (7752), 351-356 (2019).</li>
<li>Abraham, D., Mao, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+pressure-volume+loop+analysis+using+conductance+catheters+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Cardiac pressure-volume loop analysis using conductance catheters in mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (103), e52942(2015).</li>
<li>Zhang, B., Davis, J. P., Ziolo, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+catheterization+in+mice+to+measure+the+pressure+volume+relationship%3A+Investigating+the+Bowditch+effect%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Cardiac catheterization in mice to measure the pressure volume relationship: Investigating the Bowditch effect.</a> Journal of Visualized Experiments. (100), e52618(2015).</li>
<li>Townsend, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+pressure+volume+loops+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Measuring pressure volume loops in the mouse.</a> Journal of Visualized Experiments. (111), e53810(2016).</li>
<li>Georgakopoulos, D., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estimation+of+parallel+conductance+by+dual-frequency+conductance+catheter+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology+-+Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">Estimation of parallel conductance by dual-frequency conductance catheter in mice.</a> American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. 279 (1), H47(2000).</li>
</ol>

競合する金銭的利害関係はありません。

経食道ペーシングの適用による圧力と体積の関係を評価する方法論を提示します。運動不耐症はHFpEFの重要な特徴の1つですが、運動中のマウスの心機能を評価するための技術はありません。私たちのペーシングプロトコルは、安静状態では明らかではない拡張期機能障害を検出するための貴重なツールを提供します。
正確で一貫した品質のPVループを実現するには、次の手順を細心の注意を払って実行する必要があります3,4,5,7,8,11,12,13,14:(1)動物は慎重に麻酔されなければならず、加熱パッドを使用して37〜37.5°Cの一貫した体温を維持する必要があります。<sup class=...

心不全は世界中の入院と死亡の主な原因であり、駆出率が保たれた心不全(HFpEF)は心不全診断全体の約50%を占めています。HFpEFは拡張期機能障害と運動耐性障害を特徴とし、拡張期機能障害などの関連する血行動態異常は、運動ストレス血行動態検査またはMRIスキャンによって明確に検出できます1,2。
しかし、実験モデルでは、HFpEFに関連する生理学的異常を評価するために利用可能なモダリティは限られています3,4。トレッドミル運動テスト(TMT)は、運動ストレス心臓の血行動態を反映する可能性のあるランニング時間と距離を決定するために使用されます。ただし、この方法は、体重、骨格筋力、精神状態などの外部変数からの干渉を受けやすいです。
これらの制限を回避するために、心拍数(HR)に基づいて拡張期パフォーマンスの微妙だが重要な変化を検出する心房ペーシングプロトコルを考案し、HFpEF5のマウスモデルでその有用性を検証しました。交感神経やカテコールアミン反応、末梢血管拡張、内皮反応、心拍数など、いくつかの生理学的要因が運動関連の心機能に寄与しています6。しかし、これらのうち、心拍圧関係(ボウディッチ効果とも呼ばれる)は、心臓の生理学的特徴の重要な決定要因として知られています7,8,9。
このプロトコルでは、ベースラインで従来の圧力-容積分析を実行して、収縮期および拡張期機能を評価することが含まれます 圧力発生速度(dp / dt)、収縮末期圧力-容積関係(ESPVR)、および拡張末期圧力-容積関係(EDPVR)などのパラメーター。ただし、これらのパラメータはHRの影響を受け、固有の心拍数の違いにより動物間で異なる可能性があることに注意してください。さらに、HRに対する麻酔の影響も考慮する必要があります。これに対処するために、心房ペーシングをイバブラジンと同時に投与することでHRを標準化し、心拍数の増加で心臓パラメータ測定を実施しました。注目すべきは、HR依存性心筋反応がHFpEFマウスと対照群マウスを区別したのに対し、ベースラインのPVループ測定(内因性心拍数を使用)では有意差は認められなかったことです5。
このペーシングプロトコルは比較的複雑に見えるかもしれませんが、よく理解すれば成功率は90%を超えます。このプロトコルは、HFpEFマウスモデルにおける拡張期機能障害の根本的なメカニズムを研究し、この状態の新しい治療法の開発に役立つ有用な方法を提供します。

<table><tbody><tr><td>2-0 silk suture, sterlie</td><td>Alfresa Pharma Corporation, Osaka, Japan</td><td>62-9965-57</td><td>Surgical Supplies</td></tr><tr><td>2-Fr tetrapolar electrode catheter</td><td>福田電子, 日本 and UNIQUE MEDICAL, Japan</td><td>custom-made</td><td>Surgical Supplies</td></tr><tr><td>Albumin Bovine Serum</td><td>Nacalai Tesque, Inc., Kyoto, Japan</td><td>01859-47</td><td>その他</td></tr><tr><td>C57/BI6J マウス</td><td>ジャクソン研究所</td><td></td><td>動物</td></tr><tr><td>コンダクタンスカテーテル</td><td>Millar Instruments, Houston, TX</td><td>PVR 1035</td><td></td></tr><tr><td>電気焼灼、電気焼灼 ナイフキット</td><td>ellman-Japan,Osaka, Japan</td><td>1-1861-21</td><td>手術用品</td></tr><tr><td>エトミデート</td><td>東京化学工業株式会社, 東京</td><td>日本 E0897</td><td>麻酔</td></tr><tr><td>グラスインスツルメント S44G スクエアパルス刺激装置</td><td>Astro-Med, WestWarwick, RI</td><td></td><td>Pacing equipment</td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Viatris Inc., Tokyo, Japan</td><td>8803998</td><td>Anesthetic</td></tr><tr><td>Ivabradine</td><td>Tokyo Chemical Industery Co., Ltd., Tokyo Japan</td><td>I0847</td><td>Miscellaneous</td></tr><tr><td>LabChart software</td><td>ADInstruments, Sydney, Australia</td><td>LabChart 7</td><td>Hemodynamic equipment</td></tr><tr><td>MPVS Ultra</td><td>Millar Instruments, Houston, TX</td><td>PL3516B49</td><td>血行動態機器</td></tr><tr><td>臭化パンクロニウム</td><td>Sigma Aldrich Co., St. Louis, MO</td><td>15500-66-0</td><td>Anesthetic</td></tr><tr><td>PE10 polyethylene tube</td><td>Bio Research Center&nbsp; Co. Ltd., Tokyo, Japan</td><td>62101010</td><td>Surgical</td></tr><tr><td>Supplies PowerLab 8/35</td><td>ADInstruments, Sydney, Australia</td><td>PL3508/P</td><td>Hemodynamic equipment</td></tr><tr><td>PVR 1035</td><td>Millar Instruments,ヒューストン、テキサス州</td><td>842-0002</td><td>血行動態機器</td></tr><tr><td>ウレタン(エチルカルバメート)</td><td>和光純薬工業株式会社、大阪、日本</td><td>050-05821</td><td>麻酔血管</td></tr><tr><td>フロープローブ</td><td>トランソニック、イサカ、ニューヨーク</td><td>MA1PRB</td><td>外科用品</td></tr></tbody></table>

マウス心不全モデルにおける心拍数依存性拡張期機能の評価のためのペーシング制御手順

A Pacing-Controlled Procedure for the Assessment of Heart Rate-Dependent Diastolic Functions in Murine Heart Failure Models

駆出率が保たれた心不全(HFpEF)は、拡張期機能障害と運動不耐症を特徴とする状態です。ヒトの拡張期機能障害の検出やHFpEFの診断には、運動ストレスによる血行動態検査やMRIが用いられますが、マウスモデルを用いた基礎研究では限界があります。この目的のために、マウスではトレッドミル運動テストが一般的に使用されていますが、その結果は体重、骨格筋力、および精神状態によって影響を受ける可能性があります。ここでは、心拍数(HR)依存的な拡張期パフォーマンスの変化を検出するための心房ペーシングプロトコルについて説明し、HFpEFのマウスモデルでその有用性を検証します。この方法では、麻酔、挿管、および心房ペーシングに付随する圧力-容積(PV)ループ分析を実行します。この研究では、コンダクタンスカテーテルを左心室頂端アプローチ で 挿入し、心房ペーシングカテーテルを食道に配置しました。ベースラインのPVループは、HRがイバブラジンで遅くなる前に収集されました。PVループは、心房ペーシング を介して 400bpmから700bpmの範囲のHR増分で収集および分析されました。このプロトコルを用いて、代謝誘発性HFpEFモデルにおけるHR依存性拡張期障害を明確に示しました。弛緩時定数(Tau)と拡張末期圧力-容積関係(EDPVR)は、対照マウスと比較してHRが増加するにつれて悪化しました。結論として、この心房ペーシング制御プロトコルは、HR依存性心機能障害の検出に役立ちます。この研究は、HFpEFマウスモデルにおける拡張期機能障害の根本的なメカニズムを研究する新しい方法を提供し、拡張期障害に対する新しい治療法の開発に役立つ可能性がある。

ベースラインのPVループデータを図1と表1に示します。ベースライン時(ペーシングなし)では、対照マウスとHFpEFマウスの間で、緩和時定数(Tau)、最小圧力変化率(dP/dt min)、EDPVRなどの拡張期パラメータに有意差はありませんでした。しかし、HFpEFマウスは、図1に示すように、より高い血圧と動脈弾性(Ea)を示し、心室収縮期に典型的な山型のPVループを示しました。これは、心室筋が圧力トランスデューサに直接接触することによって引き起こされるスパイクとは区別する必要があります(図2)。重要なことは、心房ペーシングを用いることで、対照マウスとHFpEFマウス5の間で拡張期機能を明確に区別できたことです(図3および図4)。対照群では、ペーシング率が増加す...

本プロトコルは、心不全のマウスモデルにおける拡張期機能の評価における貴重なツールとして役立つ経食道ペーシングによる圧力と体積の関係の取得について記述している。

Heart failure with preserved ejection fraction (HFpEF) is a condition characterized by diastolic dysfunction and exercise intolerance. While ...

心拍数に関連する関係は、特にHFpEFにおける心特性を決定するために重要です。このプロトコルは、心拍数依存性心機能を評価することを目的としています。心拍数関連の心機能を評価するために利用可能なモダリティである実験モデルは、トレッドミルの運動テストに限定されています。ただし、トレッドミルテストは、体重などの変数の影響を受けます。これらの制限を克服するために、心拍数に関連する後のパフォーマンスの微妙でありながら重要な変化を検出するための心房ペーシングプロトコルを中心に開発しました。私たちのプロトコルは、心拍数の変化によって現れる心機能障害を特定するためのさまざまなツールを提供します。また、心不全モデル、特にHFpEFのミラーリングにおける拡張期機能障害を研究するための多くのアプローチも提示します。

a-pacing-controlled-procedure-for-assessment-heart-rate-dependent

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

経胸壁心エコー検査は、マウスの心機能の評価のための非侵襲的方法を提供しています。超音波検査とドップラーイメージングモダリティの組み合わせは、一緒に心臓の収縮期および拡張期のパフォーマンスの評価を提供する、心臓と心臓内の血流の寸法測定を、得るために使用することができます。...

マウスにおける経胸壁心エコー

高周波ドップラー超音波は、局所的な心筋機能を評価するための新しい技術です。この作品は、心筋の歪み、DP / dtは、虚血 -...

高周波高分解能心エコー検査：虚血 - 再灌流マウス心臓における心筋ストレイン、収縮性、および僧帽弁閉鎖不全の非侵襲的な反復測定に関する最初の証拠

このプロトコルは、マウスの心臓および心臓弁機能の包括的な表現型のための心エコー検査アプローチの詳細な説明を提供します。...

マウスの弁膜症の包括的表現型の特徴のための心エコーアプローチとプロトコル

以下のプロトコルは、マウスの左心房容積（LAV）、大動脈（AO）の直径、および肺動脈（PA）の直径を得るために使用される心エコー画像の取得および分析のための方法を記載しています。この技術は、心肺機能の評価を可能にする非侵襲性、非末端の手順です。...

左心房、大動脈、肺動脈のマウス心エコー

ここでは、マウスにおける頂点4チャンバービューを得るための2つの位置を説明し、比較する。これらの位置は右心室機能の定量化を可能にし、同等の結果を提供し、交換可能に使用することができる。...

マウスにおける右心室拡張期パラメータの心エコー測定

このプロトコルは、駆出率が維持された高脂血症誘発性心不全(HFpEF)のマウスモデルを再現するための詳細なアプローチを示しています。このデザインは、アデノ随伴ウイルス9-心筋トロポニンT-低密度リポタンパク質受容体(AAV9-cTnT-LDLR)とポロキサマー-407(P-407)の投与を組み合わせたものです。...

駆出率を維持した高脂血症誘発性心不全のマウスモデル

このプロトコルは、高脂肪食の摂食とストレプトゾトシン注射の組み合わせを通じて糖尿病性心筋症を誘発する方法を概説しています。このアプローチは、糖尿病性心筋症の科学的調査のための信頼性の高いフレームワークを提供し、臨床治療への応用の可能性を探ることを目的としています。...

マウス糖尿病性心筋症モデルのモデリングと評価

左心疾患による肺高血圧症の前臨床モデルにおけるドップラー超音波検査を用いた拡張期機能評価のプロトコルを提示します。...

左心疾患による肺高血圧症のZSF-1ラットモデルにおける拡張期機能障害のパルス波ドップラー評価

ラット心臓における培養組織の移植

マウスの腎移植は、成功のための慎重な術後ケアと治療を必要とする技術的に困難な手順です。...

マウス腎移植の手順

学ぶマウス心不全モデルにおける経食道ペーシングを用いた心拍数依存性拡張期機能評価プロトコル。心拍数変化に関連する心機能の微妙な変化を検出し、HFpEFにおける拡張期機能障害の研究に新たなアプローチを提供する。

マウス心不全モデルにおける心拍数依存性拡張期機能の評価のためのペーシング制御手順

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