Name: 幼虫 Ixodes scapularis Ticsへのヒトの実験的曝露モデル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-12-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 47 s
Description: 学ぶ、ヒトへのIxodes scapularis幼虫ダニの制御曝露モデル。ハイドロコロイドドレッシングを用いて快適な吸血環境を維持し、日常活動を継続しながら免疫応答やダニ媒介疾患の診断・予防法の研究を支援します。

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この研究は、NIH、国立アレルギー感染症研究所の学内研究プログラムの支援を受けました。私たちは、手順の開発に参加したLinden T. Hu氏、Sam R. Telford III氏、Kenneth Dardick氏、Carla Williams氏、Erin Chung氏、Christina Brandeburg氏に感謝します。

ボランティアをダニ刺されにさらすことは実験的な方法であり、関連する規制当局によって承認された臨床研究プロトコルの下で実施する必要があります。臨床試験(NCT01143558、NCT02446626、NCT05036707)は、それぞれの施設審査委員会によって承認され、米国食品医薬品局によって付与された治験機器の免除の下で実施され、Good Clinical Practiceガイドラインに従って実施されました。さらに、これらの研究は ClinicalTrials.gov に登録され、すべての参加者から書面によるインフォームドコンセントが得られました。
1. 封じ込めドレッシングの準備
<ol><li>測定テンプレートを作成するには、測定ラインの側面に沿って3インチ x 3インチのハイドロコロイド封じ込めドレッシングをコピーします(図1A および 材料表)。</li>
	<li>コピーしたテンプレートを 1" の線に沿ってカットします。次に、2インチの線に沿ってカットし、中心が1インチの2インチの円を作成します(図1B)。</li>
	<li>このテンプレートを使用して、非粘着性のフォームドレッシングをカットして、中心が1インチの2インチの円を作成します(図2A、B、 および材料の表)。</li>
	<li>同じテンプレートを使用して、4インチ x 4インチの極薄ハイドロコロイドドレッシングの中心に2インチの円を切り取ります(図2C、D)。</li>
	<li>3インチ x 3インチのコンテインメントドレッシングの親水コロイド層を11/2インチのラインで切断します。</li>
	<li>封じ込めドレッシングの親水コロイド層のペーパーライナーを引き戻して、接着剤を露出させます。カットしたフォームドレッシングを接着剤の2インチ円内に置きます(図3A)。これにより、フォームドレッシングが封じ込めドレッシングの開口部を超えて広がることが保証されます。ペーパーライナーをドレッシングのハイドロコロイド層に交換します(図3B)。 注:これらの測定値は、最大10匹の 幼虫I.scapularis ダニを含む研究に使用されました。最大30匹の 幼虫のI.scapularis ダニを対象とした研究では、フォームセンターのテンプレートを1インチと11/2インチのマーキングの間にカットして、配置の領域を広げました。封じ込めドレッシングの測定は、研究デザインに応じて適合させることができます。</li>
</ol>2.ダニの配置
<ol><li>ダニストレージ<ol><li>幼虫の I.scapularis ダニは、温度を9〜10°Cに設定した医療グレードの冷蔵庫に保管します。</li>
		<li>ダニは、適切な空気の流れを確保するために、メッシュキャップで覆われたバイアルに保管します。ダニのバイアルを密封可能なビニール袋に軽く湿らせたスポンジで包装して、湿度を維持し、乾燥を防ぎます。</li>
	</ol></li>
	<li>ティックの配置<ol><li>ダニを冷蔵庫から取り出して、室温まで温めます。ダニは冷蔵庫の外でわずか15分で活動的になります。</li>
		<li>配置領域の周りに白いシートを配置して、誤ってドロップしたティックを簡単に視覚化します。</li>
		<li>damp4 "x 4"ガーゼパッドをきれいな水または生理食塩水で使用し、それを使用して配置部位の皮膚をきれいにします。その領域は軽くたたいて乾かすか、自然乾燥させる必要があります。 注:ダニの配置のために体の部位を選択するときは、ボランティアの日常活動を制限しず、参加者がドレッシングの完全性を簡単に監視できる領域を考慮してください。直接の圧力によってダニが押しつぶされる可能性のある領域(背中など)にダニを置かないでください。参加者の体毛を評価し、必要に応じて、皮膚への損傷を避けるために、接着剤の部位でハサミを使用して余分な体毛を慎重にトリミングします。脱毛にカミソリを使用すると、皮膚の怪我や感染のリスクが高まる可能性があるため、避けてください。</li>
		<li>肌が乾いたら、準備したドレッシングのハイドロコロイド側から粘着ライナーをはがし、メッシュ層が開いたままになるように、配置部位の皮膚にしっかりと貼り付けます。</li>
		<li>木製の綿棒( 材料の表を参照)を半分に割って、ギザギザの端を露出させます。</li>
		<li>ダニのバイアルを慎重に開きます。</li>
		<li>木製の綿棒のギザギザの端を使用して、バイアルから活性ダニを移し、それらを封じ込めドレッシング内の皮膚に置きます(図4A)。追加のチームメンバーにダニ配置場所を監視してもらい、ダニが封じ込めドレッシング内に留まるようにします。このプロセス中にバイアルから逃げるダニを捕まえるために粘着テープを使用してください。 注:木製の綿棒を壊してギザギザの端を使用すると、ダニに損傷を与えることなく、ダニの操作と転送に効果的です。明るい色の柔らかい毛を持つ小さなブラシは、ダニを容器から皮膚部位に移すのにも機能します。</li>
		<li>スタディに指定されたティック数を配置したら、封じ込めドレッシングのメッシュ層から接着ライナーをはがし、開口部を覆って閉じます。</li>
		<li>接着剤がしっかりと取り付けられていることを確認した後、準備した4インチ x 4インチの極薄ハイドロコロイドドレッシングを封じ込めドレッシングの上に塗布して、セキュリティを強化します(図4B)。 注:病原体を含まないI.scapularisダニコロニーおよび引用された研究で使用されたダニ曝露手順の期間に関する追加情報は、公開された研究19,22の方法セクションにあります。</li>
	</ol></li>
</ol>3. サイトのお手入れ
<ol><li>研究参加者にウォーターバリアカバーと2インチの低刺激性テープ( 材料の表を参照)を提供します。</li>
	<li>ダニの封じ込め場所の手入れ方法を提供します。<ol><li>ドレッシングを定期的にチェックし、皮膚にしっかりと付着しているかどうか端を監視します。必要に応じて、ドレッシングエッジを補強するために追加のテープを貼ります。</li>
		<li>学習期間中は、ドレッシング部位を傷つけたり、ドレッシングを開けたり取り外したりしないでください。</li>
		<li>入浴や水に浸かることは避けてください。また、熱いシャワーを避け、シャワーの時間を制限してください。シャワーを浴びる前に、付属のウォーターバリアカバーで封じ込めドレッシングを保護し、シャワーが終わったら取り外してください。ドレッシングを軽くたたいて乾かし、しっかりと固定されていることを確認するために検査します。</li>
		<li>大量の発汗を引き起こし、ドレッシングの完全性を損なう可能性のある活動は避けてください(例:有酸素運動、長時間のハイキング)。</li>
	</ol></li>
</ol>4.ダニの除去
<ol><li>コレクションバイアルの準備<ol><li>ダニコレクションバイアルに目的の識別子(研究コード、日付など)をラベル付けします。</li>
		<li>生きているダニの保存が必要な場合は、バイアルのキャップに20Gの針で穴を開けます。キャップと一緒にナイロンまたはポリエステルメッシュの層を使用して、バイアルを密封します。湿ったスポンジの小片を、湿度を維持するためにダニのバイアルが入った密封可能なバッグに入れます。</li>
	</ol></li>
	<li>ティックの削除<ol><li>包帯部位の周りに白いシートを置き、収集池が手の届くところにあることを確認します。</li>
		<li>アルコールワイプを使用して、包帯を皮膚から慎重に取り除きます。</li>
		<li>完全に取り外したら、包帯を収集洗面器に置き、外れたダニの存在を調べます。</li>
		<li>付着したダニの配置場所を評価します。補充まで供給されたダニは分離します(図5A)。残りの付着したダニについては、先端の細い鉗子を使用して除去します(図5B)。</li>
		<li>アルコールワイプまたは石鹸と水で肌をきれいにします。</li>
	</ol></li>
</ol>

ダニ媒介性疾患研究のためのダニ幼虫へのヒト曝露

<ol><li>Yeh, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determining+the+duration+of+Ixodes+scapularis+%28Acari%3A+Ixodidae%29+attachment+to+tick-bite+victims%5BTitle%5D)+AND+%22J+Med+Entomol%22%5BJournal%5D)">Determining the duration of Ixodes scapularis (Acari: Ixodidae) attachment to tick-bite victims.</a> J Med Entomol. 32 (6), 853-858 (1995).</li>
<li>Piesman, J., Mather, T. N., Sinsky, R. J., Spielman, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Duration+of+tick+attachment+and+Borrelia+burgdorferi+transmission%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Duration of tick attachment and Borrelia burgdorferi transmission.</a> J Clin Microbiol. 25 (3), 557-558 (1987).</li>
<li>Vora, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ticks+elicit+variable+fibrinogenolytic+activities+upon+feeding+on+hosts+with+different+immune+backgrounds%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Ticks elicit variable fibrinogenolytic activities upon feeding on hosts with different immune backgrounds.</a> Sci Rep. 7, 44593(2017).</li>
<li>Narasimhan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunity+against+Ixodes+scapularis+salivary+proteins+expressed+within+24+hours+of+attachment+thwarts+tick+feeding+and+impairs+Borrelia+transmission%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Immunity against Ixodes scapularis salivary proteins expressed within 24 hours of attachment thwarts tick feeding and impairs Borrelia transmission.</a> PLoS One. 2 (5), 451(2007).</li>
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<li>Rosenberg, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vital+signs%3A+trends+in+reported+vectorborne+disease+cases+-+United+States+and+Territories%2C+2004-2016%5BTitle%5D)+AND+%22MMWR+Morb+Mortal+Wkly+Rep%22%5BJournal%5D)">Vital signs: trends in reported vectorborne disease cases - United States and Territories, 2004-2016.</a> MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 67 (17), 496-501 (2018).</li>
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<li>Bockenstedt, L. K., Mao, J., Hodzic, E., Barthold, S. W., Fish, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+attenuated%2C+noninfectious+spirochetes+in+Borrelia+burgdorferi-infected+mice+after+antibiotic+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22J+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">Detection of attenuated, noninfectious spirochetes in Borrelia burgdorferi-infected mice after antibiotic treatment.</a> J Infect Dis. 186 (10), 1430-1437 (2002).</li>
<li>Turk, S., Williams, C., Marques, A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTurk%2C+S+%22in+Borrelia+burgdorferi%3A+Methods+in+Molecular+Biology%22">in Borrelia burgdorferi: Methods in Molecular Biology</a>. Pal, U., Buyuktanir, O. , Springer. New York. 337-346 (2018).</li>
<li>Hodzic, E., Feng, S., Holden, K., Freet, K. J., Barthold, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Persistence+of+Borrelia+burgdorferi+following+antibiotic+treatment+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Persistence of Borrelia burgdorferi following antibiotic treatment in mice.</a> Antimicrob Agents Chemother. 52 (5), 1728-1736 (2008).</li>
</ol>

アドリアナ・マルケス博士は、US 8,926,989 B2の特許を取得しています。また、Global Lyme AllianceおよびAmerican Lyme Disease Foundationの無給の科学顧問でもあります。Siu Ping TurkとAleah Eschmanは、利益相反を引き起こす可能性のある関係を持っていません。この出版物の内容は、必ずしも保健社会福祉省の見解や政策を反映しているわけではなく、商号、商品、または組織についての言及は、米国政府による承認を意味するものでもありません。

ダニ4,5,6,7,21への曝露を含む動物実験は、ダニ媒介性疾患やダニ咬傷に対する宿主の応答についての理解を深める上で非常に貴重ですが、これらのモデルでは、ヒトの宿主応答をどの程度うまく予測するかには限界があります。このモデルは、制御された方法で人間をダニ刺されにさらすための方法論を説明しており、さまざまな研究の質問に答えるために簡単に適応でき、これらの必要な研究を人間で実行する能力を拡大します。
最初の研究では、マダニが何日も餌を食べながら、人間の被験者にとって快適で耐えられる新しいシステムの開発が必要でした。さまざまな技術を評価した結果、ここで説明した封じ込めドレッシングは最終的に最も成功しました。最初の試験中、ダニは収容包帯の円形の切り欠きの端までさまよ...

ハードダニ(Ixodidae:Acari)は、世界中で発生する義務的な血液供給性外部寄生虫であり、細菌、ウイルス、寄生虫など、医学的および獣医学的に重要な幅広い病原体を感染させることができます。マダニは、血の食事を完了するために数日間宿主に付着したままでなければならず、認識を回避し、局所的な血液凝固を防ぎ、長期的な摂食を促進しながら皮膚に付着したままにする能力を持っています1,2,3。動物実験では、非許容性宿主は、ダニへの繰り返しの曝露によるダニ咬傷に対する耐性を獲得し、病原体を感染させる能力の低下につながる可能性があることが示されており、一方、ダニは許容性宿主を繰り返し寄生する可能性があります。獲得されたダニ抵抗性は、宿主の免疫応答の性質に依存する4,5,6,7。
ダニ媒介性疾患は米国(US)で脅威を増大させており、報告された症例数は2004年から2016年の間に2倍以上に増加しています8,9。気候変動により、さまざまなダニの地理的範囲は拡大し続けています10,11。米国の主要なダニ媒介性疾患には、ライム病、アナプラズマ症、エーリキア症、斑点熱リケッチア症、バベシア症、野兎病、およびポワッサンウイルス病8が含まれます。ライム病は、Borrelia burgdorferi sensu latoの感染によって引き起こされ、米国とヨーロッパで最も一般的なダニ媒介性疾患です12。米国では年間約476,000人がライム病と診断されており、個人と社会に公衆衛生と経済的負担の両方がかかっています13,14,15。
Ixodes scapularis (クロアシダニまたはシカダニ)は、ライム病、アナプラズマ症、バベシア症、 ボレリア宮本 病、および米国のポワッサンウイルス病の主要な媒介者です。米国の他の医学的に重要なダニ種には、 Amblyomma americanum (ローンスターダニ)、 Dermacentor variabalis (アメリカ犬ダニ)、 Ixodes pacificus (ニシマダニ)、 Dermacentor andersoni (ロッキーマウンテンウッドダニ)、 Ixodes cookei (グラウンドホッグダニ)、 Dermacentor occidentalis (太平洋岸ダニ)、 Rhipicephalus sanguineus (茶色の犬ダニ)、 およびAmblyomma maculatum (メキシコ湾岸ダニ)が含まれます16。
研究ボランティアをダニに噛まれるようさらす方法の開発は、自然媒介を使用して感染の証拠を探すための研究、すなわちゼノ診断17,18,19,20,21、およびマダニへの曝露によって誘発される免疫についてさらに学ぶための研究をサポートし、これは抗ダニワクチンの発見に貢献できる5,6,7.ここで説明する手順は、2014年に発表された、抗生物質療法後のB.burgdorferi感染の異種診断のための実験室で飼育されたIxodes scapularis幼虫を使用した最初のヒト研究で開発および使用されました（NCT0114355819。このシステムは、陽性の異種診断がライム病の抗生物質治療後の症状の持続性と相関しているかどうかを調査する第2相試験(NCT02446626)や、ダニ刺されに対する宿主の反応を調査する研究(NCT05036707)で成功裏に使用されています。
この手順プロトコルは、収容被覆材を作成するプロセス、ダニ配置手順、ダニ除去手順、および収容被覆材を維持するために必要な現場の手入れについて説明しています。病原体を含まないI. scapularisダニのコロニーおよび上記の研究に使用されたダニ曝露手順に関する詳細は、以前に説明されている19,22。この方法論は、ダニ咬傷に対するヒト宿主の反応、ダニ予防薬の有効性、ライム病やその他のダニ媒介性疾患のさまざまな側面の研究に適応できる柔軟な研究ツールを提供します。

<table><tbody><tr><td>20G針</td><td>任意のブランド</td><td></td><td>バイアルキャップに穴を開けるため。</td></tr><tr><td>3インチ x 3インチ 封じ込めドレッシング</td><td>モナークラボの名前</td><td>ルフラップ</td><td>https://www.monarchlabs.com/ordering</td></tr><tr><td>4インチ x 4インチ 超薄型ハイドロコロイドドレッシング</td><td>ConvaTec</td><td>DuoDerm</td><td>https://www.convatec.com/products/advanced-wound-care/brand-names/pc-wound-duoderm-granluflex/duoderm-extra-thin-dressing/</td></tr> <tr><td>4インチ x 4インチ ガーゼ</td><td>モナークラボの名前</td><td></td><td>肌のクリーニング用</td></tr><tr><td>きれいな水または生理食塩水</td><td></td><td></td><td>肌の洗浄用</td></tr><tr><td>水分バリア (例: 7" x 7")</td><td>AquaGuard</td><td>TIDI</td><td>シャワー用、ttps://www.tidiproducts.com/product-listing/aquaguard-shower-cover-sheets&nbsp;</td></tr><tr><td>非粘着性フォームドレッシング</td><td>コロプラスト</td><td>ビアタイン https://www.coloplast.us/biatain-non-adhesive-en-us.aspx</td><td></td></tr><tr><td>ロール 2インチの低刺激性テープ</td><td>モナークラボは</td><td>デュラポア</td>を命名します <td>封じ込めドレッシングを補強するため。</td></tr><tr><td>粘着テープ</td><td></td><td></td>のロール <td>ダニを捕捉するための</td></tr><tr><td>収集用バイアル(クライオバイアルなど)</td><td>Ependorf</td><td>ECC200</td><td></td></tr></tbody></table>

幼虫 ixodes scapularis ticsへのヒトの実験的曝露モデル

A Model for Experimental Exposure of Humans to Larval Ixodes scapularis Ticks

ダニ媒介性疾患は、米国および世界中で重大な公衆衛生問題です。ダニは必須の血液供給節足動物です。マダニは、宿主の皮膚に付着したままで、血の食事を得るために数日間の摂食プロセスを完了する必要があります。動物をダニにさらすことは、ダニの咬傷やダニ媒介性疾患に対する宿主の反応を研究するための一般的な方法です。私たちは手順を開発し、最初のヒト研究を実施し、感染していない幼虫 のIxodes scapularis ダニに人間のボランティアを曝露した結果を発表しました。この記事では、封じ込めドレッシングの構築に使用される方法論、ダニを宿主に適用して固定する方法、ドレッシングを維持する方法、および宿主からダニを除去する方法について説明します。ボランティアをダニ刺されにさらすことは実験的な手順であり、適切な規制当局によって承認された臨床研究プロトコルの下で実施する必要があります。この方法により、トランスレーショナルリサーチが可能になり、マダニに噛まれた場合のヒトの反応をより深く理解し、ダニ媒介性疾患の診断、予防、治療法の開発を促進することができます。

この研究では、手技が安全で忍容性が高いことが示され、主な有害事象は咬傷部位の軽度のかゆみであり、手技の58%で観察されました。清潔な実験室で飼育された幼虫 I.scapularis ダニ19を使用した場合、この手順に関連する重篤な有害事象はありませんでした。実施された43の手順では、配置されたマダニと比較した付着したマダニの平均回復率は45%±27%(SD)であり、中央値は40%でした(図6)。
幼虫のI. scapularisマダニがヒトに付着するまでの正確な期間は、ダニの配置からダニの付着までの時間が日常的に観察されていなかったため、不明のままである。研究ボランティアが2時間半観察されたある例では、期間の終わりまでにマダニは付着していませんでした。幼虫のI.scapularisダニの配置から摂食まで4〜5日かかります19。
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この記事では、臨床研究のためにヒトを幼虫の Ixodes scapularis に曝露するための方法論を紹介します。この手法は比較的単純で、研究ボランティアが許容範囲内であり、実験のニーズに応じて変更することができます。このようなヒトを対象とした研究は、適切な規制当局によって承認された臨床試験プロトコルに基づいて実施されなければなりません。

幼虫 Ixodes scapularis Ticsへのヒトの実験的曝露モデル

Tickborne diseases are a significant public health problem in the United States and worldwide. Ticks are obligate blood-feeding arthropods; an ixodid tick ...

このプロトコルは、ダニへの人間の制御された曝露のための効果的な方法を提供します。研究では、このプロトコルを使用して、ヒトの免疫応答ダニ咬傷の研究、およびダニ媒介性疾患の診断と予防の開発を行うことができます。人間の研究ボランティアにダニを付けるための手順は公開されていませんでした。課題は、マダニが何日も餌を食べながら、参加者にとって快適であるシステムを開発することでした。このモデルには、摂食期間中のダニが含まれており、研究参加者はライフスタイルを少し調整して日常の活動を進めることができます。

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

ダニ媒介性病原体が病気を引き起こす方法感染したダニの体液のコレクション、唾液腺、唾液は勉強することが重要です。このプロトコルでは、餌から体液と唾液腺を収集する方法を示しています...

マダニScapularisダニの唾液、唾液腺、および体液コレクション

ライム病は、北米で最も一般的に報告された媒介疾患である。原因物質、 ボレリア·ブルグドルフェリティックマダニによって送信されたスピロヘータ細菌である。動物モデルでの感染の伝播および検出は、我々はここで説明するダニ送り、使用することによって最適化されています。...

ライム病研究における送信および外因診断法のために動物にダニの摂食

健康的な実験室飼育の生産は、ダニの生物学の研究、およびダニ病原体相互作用に不可欠であるダニ。ここでは、費用対効果およびマウスにストレスの少ないです未熟ダニ供給のための単純なプロトコルを示しています。...

飼育<em&gt; Ixodes肩甲骨、</em&gt;ブラック・ティック・ティック：未熟期をマウスに与える

ダニ hemolymph の分析は、いくつかの病原体が病気を引き起こす方法と、ダニ免疫学的がこの感染症にどのように反応するかに関する重要な情報源を表しています。本研究は、真菌 propagules を接種し、 Rhipicephalus microplusうっ積の雌から hemolymph...

無脊椎動物の病理学研究に向けた Hemolymph のMetarhizium Blastospores の収集とRhipicephalus Microplusダニへの接種の開示

本研究では、実験用マウスに付着したカプセルを用いて、硬ダニのニンファルおよび幼虫段階の給餌システムを開発した。供給カプセルは、柔軟な材料から作られ、少なくとも1週間はしっかりとマウスに取り付けられたままで、ダニの供給の快適なモニタリングを可能にします。...

実験室マウスにおける未熟なハードティックステージのカプセルベースモデル

ここに提示されるのは、様々なダニの生活段階の部分的または完全な充血を可能にするために、人工膜システム を介してインビトロで...

肩甲骨イクソデスのためのダニ人工膜給餌

自己免疫性下垂体炎は、マウス下垂体タンパク質の抽出物を注入することにより、マウスで再現することができる。...

実験的自己免疫性下垂体炎の誘導のためのマウス下垂体免疫原の調製

食物を与えられていないダニへのdsRNAの注射により、RNA干渉（RNAi）のための方法が記載されている。...

ダニのRNA干渉

ここでは、ゼブラフィッシュの耳介における局所的な細菌感染の生成とイメージングのためのプロトコルを提示します。...

のゼブラフィッシュ幼生モデルにおける先天性免疫応答の非侵襲的イメージング<em&gt;ストレプトコッカスイニエ</em&gt;感染

ヒト結核感染は複雑なプロセスであり、in...

上の機能的研究のための3Dヒト肺組織モデル<em&gt;結核菌</em&gt;感染

学ぶ、ヒトへのIxodes scapularis幼虫ダニの制御曝露モデル。ハイドロコロイドドレッシングを用いて快適な吸血環境を維持し、日常活動を継続しながら免疫応答やダニ媒介疾患の診断・予防法の研究を支援します。

幼虫 Ixodes scapularis Ticsへのヒトの実験的曝露モデル

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