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表面プラズモン共鳴技術によるPD-1/PD-L1阻害剤の同定
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JoVE Journal Cancer Research
Identifying PD-1/PD-L1 Inhibitors with Surface Plasmon Resonance Technology

表面プラズモン共鳴技術によるPD-1/PD-L1阻害剤の同定

Full Text
1,179 Views
07:04 min
May 2, 2025

DOI: 10.3791/67859-v

Huifang Li1, Tess Puopolo1, Justin Gutkowski1, Navindra P. Seeram1, Chang Liu1

1Department of Biomedical and Pharmaceutical Sciences, College of Pharmacy,University of Rhode Island

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

このプロトコルは、表面プラズモン共鳴技術を使用したPD-1/PD-L1阻害剤の遮断アッセイを説明しています。デュアルステップの固定化戦略とカスタマイズされたバッファーシステムを採用して、レスポンスユニットを正確に測定し、化合物や生物製剤の封鎖率の評価を容易にします。さらに、PD-1/PD-L1阻害剤のハイスループット同定をサポートします。

私は創薬に携わっており、PD-1、PD-L1 などの新しいがん免疫チェックポイント阻害剤を発見しています。私の主な質問は、これを高速化するために高スループットのスクリーンプラットフォームをどのように設計できるかということです。近年、PD-1、PD-L1を標的とする生物学的医薬品は大きな進歩を遂げています。低分子医薬品はまだ開発の初期段階にありますが、PD-1、PD-L1を標的とした低分子医薬品の開発を目指しています。

均質時間分解蛍光、HTIF、およびaf-ah-ly-zerは、PD-1、PD-L1阻害剤のスクリーニングに応用できる2つの技術です。低分子の溶解度とバッファーの不一致は、現在の実験における主な課題です。

SPRは、結合親和性測定だけでなく、PD-1、PD-L1阻害剤のスクリーニングプラットフォームとしても開発できることを発見しました。

[講師]まず、表面プラスミン共鳴またはSPR装置のスイッチを入れます。[開いている]または[新しいウィザードテンプレート]をクリックし、[固定化]を選択して固定化方法を設定します。チップタイプをCM-5に設定します。Amin法とサイクルごとのフローセルを1に設定します。次に、フローセル1とフローセル2をSA-40マイクログラム/ミリリットルとして固定化します。固定化方法としてSAビオチンキャプチャを選択します。フローセル1をブランク固定用に設定します。フローセル 2 では、10 マイクログラム/ミリリットル、PD-1 をリガンドとして固定化レベル、目標は 4,000 応答単位を目指します。次に、実行する前にプライムを確認してください。バッファーインレットを含む2つのベイをHBSEPポジティブランニングバッファー溶液に入れます。メンテナンスセンサーチップを取り出し、CM-5チップを挿入します。固定化方法を再度開きます。次に、試薬ラック2を挿入し、試薬の位置を確認します。推定期間だけメソッドを実行します。2 つのベイを HBSEP ポジティブ ランニング バッファー溶液に入れます。メンテナンスセンサーチップを取り出し、SAチップを挿入します。固定化方法を再度開いた後、試薬ラック2を挿入し、試薬の位置を確認します。推定期間だけメソッドを実行します。PD-1、PD-L1相互作用の検証では、一般設定でデータ収集速度を10ヘルツに設定します。検出は複数です。サンプルコンパートメント温度は摂氏25度まで、濃度単位はマイクロモルです。アッセイステップで、コンディショニング反復を10回に設定します。10回の反復で速度論まで開始します。1回の繰り返しと摂氏25度の温度で速度論にサンプルを採取します。次に、接触時間を60秒、解離時間を60秒、流量を毎分30マイクロリットルに設定します。メソッド変数で、プロパティを変数として設定し、サンプルソリューションを選択します。評価変数で、評価目的を速度論的親和性として選択し、定義済みの変数を濃度とMWとして選択します。実行を設定し、2 から 1 と 4 から 3 の流路を選択します。分子量51,300ダルトンのゼロマイクロモル、0.037マイクロモル、0.111マイクロモル、および0.333マイクロモルの入力PD-L1濃度。200ミリリットルのHBSEP陽性ランニングバッファー溶液を調製し、ランニングバッファーでPD-L1希釈液を希釈します。すべての試薬をレイアウト上のそれぞれの位置に配置し、推定時間実行します。低分子阻害剤を使用したブロケードアッセイでは、バリデーションテストで行われたのと同じ設定と流量を使用します。ランを設定し、流路を選択したら、サンプルのPD-L1溶液と希釈したBMS 1166溶液を入力します。指定されたように、試薬ラックの2つのレイアウトにウェル位置を割り当てます。次に、5ミリグラムのBMS 1166を77.99マイクロリットルのDMSOに溶解して、100ミリモルの原液を調製します。すべての試薬を指定されたとおりに配置します。フローセル1およびフローセル2でのストレプトアビジンタンパク質の固定化では、2000応答単位の目標応答単位がほぼ達成されました。フローセル1は1902.3応答単位の最終応答を示し、フローセル2は1900.7応答単位を示しました。フローセル1のブランクセルはマイナス161と低い応答単位でしたが、フローセル2は4,000応答単位の目標を達成し、最終応答は3698.5でした。テストされたグリシンpH条件の中で、グリシンpH 2.0は、安定したベースライン応答で再生に最も最適であると特定され、PD-1タンパク質の損失が最小限に抑えられ、PD-L1の除去に成功したことが示されました。さまざまな濃度のPD-L1とPD-1との結合相互作用を定量化し、測定可能な応答をもたらしました。PD-1、PD-L1結合相互作用の遮断効果は、0〜3.125マイクロモルの間でBMS 1166希釈で観察されました。結合応答単位は、BMS 1166の濃度が増加するにつれて比例して減少しました。

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