2025年6月27日
このプロトコルは、FEN1(皮弁エンドヌクレアーゼ1)活性および阻害剤開発を測定するためのゲルシフト生化学的アッセイを説明しています。
私たちは、FEN1ヌクレアーゼ活性を検出し、低分子阻害剤をスクリーニングする蛍光ベースの方法を開発し、診断と標的治療研究を前進させました。
現在の発現の課題には、従来の方法の複雑さと安全性への懸念、および既存の蛍光ベースの技術に必要な高コストと特殊な機器が含まれます。
このプロトコルは、従来の放射線学的方法と高コストの蛍光技術の欠点に対処し、より安全で効率的で使いやすい検出ソリューションを提供します。
私たちの研究室は、がん治療における FEN1 阻害剤の in vivo アプリケーションとメカニズムを調査するために、ハイスループット スクリーニング プラットフォームの最適化に焦点を当てます。
[講師]まず、FEN1の特異的切断活性に基づいてDNAオリゴヌクレオチド鎖を設計します。一本鎖DNAオリゴヌクレオチドをアニーリングバッファーで混合します。10マイクロリットルのアニーリングバッファーと脱イオン水を加えて、総容量を50マイクロリットルにします。次に、反応混合物を金属浴中で摂氏100度で1分間加熱します。すぐにチューブを摂氏72度に移し、10分間インキュベートします。次に、熱源を止め、溶液を徐々に室温まで冷却して、完全な二本鎖DNA基質を形成します。FEN1ヌクレアーゼ活性アッセイでは、まず2マイクロリットルのDNA基質を反応バッファー中のFEN1ヌクレアーゼと混合します。反応混合物を摂氏37度の金属浴中で15分間インキュベートします。20マイクロリットルの2Xターミネーションバッファーを加えて反応を停止します。次に、終端サンプル20マイクロリットルを、事前に調製された12%変性ポリアクリルアミドゲルにロードします。ゲルを100ボルトで60分間電気泳動します。完了したら、蛍光イメージングシステムの下で電気泳動結果を視覚化します。ピペットを使用して、2マイクロリットルのジメチルスルホキシドを1.5ミリリットルの微量遠心チューブに移します。2マイクロリットルのFEN1ヌクレアーゼと10マイクロリットルの2X反応バッファーをチューブに加え、6マイクロリットルの脱イオン水を加えます。溶液を完全に混合し、氷上で10分間インキュベートします。インキュベーション後、2マイクロリットルのDNA基質をピペットで取り入れ、最終反応量20マイクロリットルに達します。次に、ジメチルスルホキシド中の1モル原液から2倍の連続希釈を行うことにより、FEN1ヌクレアーゼ阻害剤FEN1-IN-4の作業希釈液を調製します。FEN1ヌクレアーゼと希釈したFEN1-IN-4阻害剤をそれぞれ2マイクロリットルを新しい1.5ミリリットルの微量遠心チューブにピペットで入れます。次に、10マイクロリットルの2X反応バッファーと4マイクロリットルの脱イオン水をピペットで取り入れます。穏やかに混ぜ、氷上で10分間インキュベートします。次に、2マイクロリットルのDNA基質をチューブに追加して、最終容量を20マイクロリットルにします。反応混合物を摂氏37度で金属浴中で15分間インキュベートします。次に、20マイクロリットルの終了バッファーを加えて反応を終了します。約45キロダルトンの透明なタンパク質バンドは、誘導発現からのFEN1ヌクレアーゼの精製に成功したことを確認しました。フルオレセイン標識二本鎖DNA基質は80キロダルトンで出現し、59キロダルトンの一本鎖基質と比較して合成が成功したことが確認されました。FEN1ヌクレアーゼは、80ヌクレオチドの二本鎖DNA基質を用量依存的に切断し、0.5マイクログラム/マイクロリットルで完全な切断が観察されました。FEN1-IN-4化合物は、80ヌクレオチドバンドの保持によって示されるように、FEN1による二本鎖DNA基質の切断を有意に阻害しました。FEN1-IN-4は、濃度依存的にFEN1ヌクレアーゼ活性を低下させ、最大阻害濃度の半分は14.03マイクロモルでした。
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この研究では、FEN1(フラップエンドヌクレアーゼ1)の活性を評価し、小分子阻害剤の開発を促進するための蛍光ベースの生化学的アッセイを提示します。この研究は、従来の方法に関連する限界を克服し、がん治療に関連するFEN1活性のより安全で効率的な検出ソリューションを提供することを目的としています。
Fluorescence-based detection of FEN1 nuclease activity addresses a critical need for safer, scalable, and quantitative assays in oncology drug discovery. This method enables rapid evaluation of FEN1 as a cancer-relevant target and supports high-throughput screening of small-molecule inhibitors, directly impacting early-stage portfolio triage and mechanistic de-risking. Its adoption streamlines the transition from target validation to lead identification in DNA repair-focused therapeutic pipelines.
This fluorescence-based assay positions FEN1 target validation and inhibitor screening at the interface of early discovery and lead identification, supporting seamless integration into oncology-focused R&D pipelines.