2025年7月25日
ヒトCARTと骨髄細胞の間の相互作用を研究するために利用できる異種移植モデルが限られていることを考慮して、CART細胞に対するヒトマクロファージの影響を理解するために、 in vitro および in vivo モデルを確立しました。この発見は、腫瘍微小環境におけるマクロファージの役割を評価し、マクロファージを標的とした免疫療法をテストするために一般化できる可能性があります。
私たちの研究は、マントル細胞リンパ腫の文脈における CA 19 抗腫瘍活性に対するヒト免疫抑制マクロファージの影響を理解するために、簡素化された in vitro および in vivo モデルを提供します。ヒトマクロファージと単球をin vivoで研究するために最も一般的に使用されるモデルは、根絶された免疫不全マウスに造血幹細胞を生着させることです。免疫不全マウスにヒト造血幹細胞を生着移植してマウスのヒト骨髄細胞を研究することは、時間と費用がかかる場合があります。
生着効率も制限される可能性があります。ヒトマクロファージ、CAR T、および腫瘍細胞間の相互作用を研究するために、より簡素化された in vitro および in vivo モデルを確立します。他のマクロファージ標的免疫療法のテストにも使用できます。
まず、単離された1,000万個のヒト古典的単球を摂氏4度で5分間300gで遠心分離します。上清を吸引し、細胞を培地に再懸濁し、最終濃度100万細胞/ミリリットルまでします。ヒト組換えGM-CSFを懸濁液に加えて最終濃度10ナノグラム/ミリリットルにし、完全に混合します。
単球をT25組織培養フラスコに移し、摂氏37度で7日間インキュベートします。7日目に、10分ごとに氷上で細胞を激しくピペットでピペットし、ほとんどのマクロファージが剥離するまで顕微鏡で確認します。分離した細胞を氷上の15ミリリットルの円錐形のチューブに移します。
次に、氷冷のPBSで細胞を洗浄して残りの細胞をほぐし、コニカルチューブ内で結合します。自動セルカウンターを使用して細胞をカウントし、摂氏4度で5分間300gで遠心分離します。上清を吸引し、ペレットを洗浄し、5ミリリットルの氷冷PBSで再懸濁します。
チューブを再度遠心分離し、上清を吸引した後、最終細胞ペレットを氷冷PBSに再懸濁して、1ミリリットルあたり2,000万細胞の濃度に達します。溶液を1.5ミリリットルの微量遠心チューブに移し、氷の上に置いてください。次に、調製した1,500万個のルシフェラーゼ陽性JeKo細胞を15ミリリットルの円錐形チューブに移します。
JeKo細胞を遠心分離した後、上清を吸引します。ペレットを氷冷PBSに1ミリリットルあたり4,000万細胞の濃度に再懸濁します。次に、同じ量のマクロファージ懸濁液と腫瘍細胞懸濁液を新鮮な1.5ミリリットルの微量遠心チューブで混合します。
同量の可溶化基底膜マトリックスを加え、氷上でよく混ぜます。対照として、残りのJeKo細胞を新しい微量遠心チューブ内で同量のPBSと混合します。同量の可溶化基底膜マトリックスを加え、氷上で混合します。
マウスを麻酔した後、ノーズコーンで加熱されたステージにマウスを置きます。角膜の損傷を防ぐために、マウスの両目に眼科用軟膏を塗布します。各マウスの右脇腹を剃って皮膚を露出させます。
100マイクロリットルのJeKoマクロファージ混合物を0.5ミリリットルの注射器に入れ、気泡を取り除きます。露出した皮膚をそっと持ち上げ、隆起した皮膚領域に針を挿入し、その部位に指で圧力をかけます。細胞を皮下層にゆっくりと注入し、針をそっと引き抜きます。
免疫抑制性マクロファージの in vivo への影響を評価するために、JeKo 細胞を単独で、または分化したマクロファージと組み合わせて生着した NSG マウスの生物発光イメージングによって腫瘍量の進行を追跡しました。分化マクロファージの存在は、JeKo単独と比較して、共生着マウスの17日目までに有意に大きな腫瘍量によって示されるように、in vivoでの腫瘍の進行を著しく加速しました。
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本研究では、マントル細胞リンパ腫におけるCAR T細胞の抗腫瘍活性に対するヒト免疫抑制性マクロファージの影響を調査するための、簡便なin vitroおよびin vivoモデルを構築します。これらのモデルは、腫瘍微小環境内におけるマクロファージの相互作用への理解を深め、マクロファージを標的とした免疫療法の検証を促進することを目的としています。
血液腫瘍におけるCAR T細胞療法の耐性は、多くの場合、腫瘍微小環境内の免疫抑制性骨髄系細胞によって引き起こされ、持続的な臨床反応を妨げます。本研究では、ヒトマクロファージがCAR T細胞機能に及ぼすメカニズム上の影響を調査するための、効率化されたin vitroおよびin vivoモデルを導入し、免疫療法のパイプラインにおける重要な生物学的リスクに直接的にアプローチします。これらのモデルを用いることで、トランスレーショナル研究チームはマクロファージ介在性の耐性リスクを低減させ、マクロファージを標的とした併用戦略の開発に役立てることが可能になります。
これらのモデルは、マクロファージとCAR T細胞の相互作用および治療的介入に関する仮説に基づいた検証を可能にすることで、初期の発見と前臨床検証の橋渡しをします。