2025年11月7日
この記事では、クライオ電子断層撮影法とそれに続く血球凝集素糖タンパク質のサブトモグラム平均を使用して画像化されたインフルエンザウイルスのデータ処理のためのプロトコルを紹介します。このプロトコルは、画像の前処理から最終的なモデルの改良まで、段階的なデータ処理をカバーします。
私たちの研究室は構造生物学を用いてウイルスと薬剤耐性の進化を研究しています。本研究では、インフルエンザヘマグルチニンが受容体結合時にどのように構体構造を変化させるかを特徴付けています。私たちはクライオ電子断層撮影を活用し、ウイルスの形態の組織と構造を可視化しています。
具体的には、このクライオ電子顕微鏡法を用いて多形ウイルスインフルエンザの画像化を行っています。当プロトコルにより、未保存ウイルス上のインフルエンザヘマグルチニンの組織構造をサブナノメートル分解能で研究できます。この高解像度により、これまで隠されていた相互作用を可視化できます。
まずは、Conda環境を起動するためのLinux端末を起動します。ターミナルを使ってISOネットをインストールしたConda環境を起動します。「tomo folder」というサブフォルダを作成し、すべてのトモグラムファイルをそのフォルダに移動させます。
次に、そのコードを使ってプロジェクトフォルダ内のスターファイルを生成します。テキストエディタを使って生成された星形ファイルを開き、0度傾き画像のおおよそのデフォーカス値を4列目に入力します。次に端末でCTFD畳み込みコマンドを実行します。
デコンボリューション後、EMAN2のGUI環境を起動し、パーティクルピックのための前処理を開始します。トモグラフィーの欄で、生データの横にある矢印を左クリックし、ドロップダウンメニューからトモグラムのインポートを選択し、ファイルを選びます。次に、分割の横にある矢印を左クリックして、事前処理済みトモグラムを選択します。
適切なデフォルトパラメータを使いましょう。前処理後、プロセスのトモグラフィーファイルのベース名に一致する空白のJSONファイルを含む情報ディレクトリが自動的に作成されます。進める前にファイルにオングストロームピクセル情報を追加してください。
畳み込みニューラルネットワーク(CNN)を学習してHA糖タンパク質を認識させるには、使用予定のトモグラムの場所をワーキングディレクトリに変更します。その後、端末を使ってCNNトレーニングインターフェースを開きます。窓が4つ開いているか確認してください。
1つはディレクトリ内のCNNパラメータやトモグラムの情報、残りの3つのウィンドウにはCNNが選択した良い参照点、悪い参照点、粒子の画像が入っています。CNNのGUIで、新しいオプションをクリックして、デフォルトの学習率0.0001、ボックスサイズ8のCNNを初期化できます。ファイル名列の下で、代表的なトモグラムを左クリックして開きます。
開いているトモグラムの上にカーソルを合わせ、マウスのスクロールホイールをクリックすると新しいウィンドウが開きます。左クリックでNの数字スライダーを操作してZ軸を移動します。次に、オープントモグラムで良好な参考パネルを使ってHAに対応する10〜20の特徴を選択します。ポジティブウィンドウにはポジティブイメージが現れます。
削除するには、Shiftを押しながら左クリックしてください。次に悪い参照パネルに切り替え、空の膜パッチ、RNP密度、フィデュシャルマーカー、デブリなどの特徴に対応する10〜20の参照を選択します。反復回数を50に設定し、列車アイコンをクリックしてCNNトレーニングを開始します。
トレーニング終了後は「適用」ボタンを押してください。選ばれた粒子はトモグラム上で青い丸として表示されるか、粒子ウィンドウで確認できます。さらに、ポジティブ・ネガティブなリファレンスを追加で選択し、定期的に保存をクリックして進行状況を保持しましょう。
CNNが満足のいく動作をしたら、「全て適用」をクリックして粒子選択を実行します。その後、複数のトモグラムで結果を評価し、必要に応じて再トレーニングを行います。各トモグラムの座標を保存するには、コマンド e2projectmanager.py を使ってEMAN2のGUIを再起動してください。
サブトモグラム平均の矢印をクリックして、手動ボクシングを選択してください。次に、トモグラムの名前を入力して「起動」をクリックします。次に、ファイルをクリックし、ボックスコードを保存し、tomogram_haします。
座標を保存するためにtxtを送ります。Neural Netのサブフォルダとinfoサブフォルダに移動してバックアップとネットセーブを行ってください。HDF、列車の出発。
HDF、隔離政策。hdf、およびboxes3Dref.hdf。トレーニングボックスのサイズを8から14に変更して、2つ目のCNNを訓練してM1タンパク質層とVRNPの存在を検出します。
パーティクルをキュレーションするには、まずGitHubリポジトリからノートブックをダウンロードしてください。次に、IPYNBノートブックをCNNパーティクルクリーニングして必要なモジュールを読み込みます。HAとM1の座標テキストファイルをノートブックに読み込みます。
オープンな3Dライブラリを使って3D雲として表示してください。次に、オープン3D統計的外れ値除去法を用いてHA座標の外れ値をフィルタリングします。次に、HA点群とM1点群間の距離を計算し、M1から20ピクセル以上離れたHA点を外れ値として特定し、残りの座標を出力テキストファイルに保存します。
すべてのパーティクルを連結し、pts2 star fileを使ってstarファイルとして保存します。IPYNB。WarpToolsを用いて、4倍の係数を曲げる粒子を抽出し、コードを使ってRELION-4の初期サブトモグラム平均を行います。ワープスターファイルをRELION 4形式に変換してください。
次に、RELIONのリファインMPIを使って粒子のサブセットに対して初期参照を生成します。RELION refine MPIでサブトモグラムの3D自動精緻化を行います。収束後、タイタンの移動を8にオフセットし、ステップを2にして自動精錬を繰り返します。
RELIONの精錬を用いて2D分類を活用してジャンク粒子を廃棄しましょう。コードを使って良いクラスのスターファイルを作成し、その後個別のスターファイルを組み合わせます。代表的なトモグラムでは、球状から細長い形状まで多様な多形型ウイルス粒子が明らかになりました。
最終的なサブトモグラム平均は、局所分解能が5〜7オングストロムの範囲で、グローバル解像度は6.0オングストロムに達しました。最終的なHA再構築ではアルファヘリックスとベータシートが解明され、精緻マップの構造的品質を支持しました。HAの頭部および茎の4か所で糖鎖化部位が確認され、最終再構築時に糖団密度の可視性が確認されました。
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この記事では、凍結電子断層撮影法を用いて、受容体結合時におけるインフルエンザ血球凝集素の構造を研究するためのプロトコルを提示します。このプロトコルは、サブナノメートル分解能でウイルスの形態と構造の可視化を可能にします。
Subnanometer-resolution cryo-electron tomography of influenza hemagglutinin (HA) enables direct structural interrogation of viral glycoproteins in their native context, addressing a critical challenge in target validation for antiviral discovery. This workflow enhances predictive confidence in structure-based drug design and supports mechanistic de-risking at the earliest stages of antiviral portfolio development. The robust pipeline for HA visualization on intact virions positions structural biology as a foundational capability for translational virology programs.
This cryoET pipeline integrates into the discovery continuum from early target validation through lead identification and preclinical research for antiviral programs.