2025年8月15日
この研究では、Hippophae rhamnoides subsp. sinensis Rousi と Hippophae gyantsensis (Rousi) Y. S. Lian の多糖類含有量を、熱水抽出によって得られ、フェノール硫酸比色法によって定量化されました。また、これら2種のカバの多糖類のin vitro抗酸化活性を2,2-ジフェニル-1-ピクリルヒドラジルフリーラジカル消去実験を通じて調べました。
本研究では、Hippophae rhamnoides sub. sinensisとHippophae gyantsensisの多糖類含有量と抗酸化活性を比較し、その違いを解明した。この研究は方法論的に健全であり、多糖類特性の種特異的な違いに関する文献のギャップに対処しています。
この研究の結果は、品質評価と潜在的な医薬品用途にとって重要です。まず、5グラムのシーバックソーンサンプル粉末を250ミリリットルの丸底フラスコに移します。次に、50ミリリットルの無水エタノールを加え、摂氏25度の室温で24時間浸します。
翌日、浸したサンプル粉末をブフナー漏斗を使用してろ過し、フィルター残留物を取得します。フィルター残留物を50ミリリットルの脱イオン水で3回洗浄します。次に、脱脂したフィルター残留物を乾燥した250ミリリットルの丸底フラスコに移します。
150ミリリットルの脱イオン水を、1ミリリットルあたり1〜30グラムの固液比で加えます。80°Cの水浴で2時間2回逆流抽出を行います。次に、ロータリーエバポレーターを使用して抽出物を濃縮します。
濃縮溶液は、後で使用するために摂氏4度の冷蔵庫に保管してください。次に、Sevag試薬を粗多糖類溶液に1対4の体積比で加え、マグネチックスターラーに置きます。次に、混合物を50ミリリットルの遠心分離管に移します。
懸濁液を4, 000 gで15分間遠心分離し、上清を回収する。タンパク質除去後に多糖類抽出物を濃縮するには、無水エタノールを1〜3の体積比で添加して多糖類を沈殿させます。混合物を摂氏4度で一晩置きます。
翌日、エタノールの上層を取り除きます。混合物を50ミリリットルの遠心分離管に移し、以前と同じように遠心分離します。沈殿物を凍結乾燥して、総多糖類を得る。
3グラムのフェノールを茶色のメスフラスコに移します。50ミリリットルの脱イオン水を加えてフェノールを溶解します。均一になるまで振ってから、後で使用するためにフラスコにラベルを付けて保管します。
次に、10ミリグラムの無水ブドウ糖を10ミリリットルのメスフラスコに移します。脱イオン水を加え、混合物を完全に振とう。次に、フラスコにラベルを付けます。
試験サンプル溶液の調製のために、5ミリグラムの凍結乾燥シーバックソーン多糖類をメスフラスコに入れます。脱イオン水を加えて、それぞれを最終容量50ミリリットルにします。完全に溶解するまで各混合物を20分間超音波処理します。
標準的なグルコース溶液を脱イオン水で0.1ミリグラム/ミリリットルに希釈します。次に、マイクロピペットを使用して、200、300、400、500、600、および700マイクロリットルを6つのきれいな試験管に移します。純水を加えてそれぞれを総量 1 ミリリットルにし、各溶液を穏やかに混合して均一に希釈します。
各試験管に1ミリリットルの6%フェノール溶液と5ミリリットルの硫酸を加え、よく混ぜます。サンプルをキュベットに移します。純水をブランクとして使用し、紫外可視分光光度計で490ナノメートルの吸光度を3回繰り返し測定します。
精度試験の場合は、試験液を準備します。フェノール硫酸比色を行います。吸光度を決定し、6回繰り返して相対標準偏差を計算します。
安定性試験では、試験液を準備します。調製後0時間、2時間、4時間、6時間、8時間、10時間後に測色を行います。前述の時点での吸光度を決定して、相対標準偏差を計算します。
再現性テストでは、サンプルの6つの並列反復を準備します。フェノール硫酸比色を実施し、確立された手順に従って吸光度を測定します。回復テストを実行するには、テスト溶液の 9 つの並列反復を準備します。
総多糖類含有量の80、100、および120%に相当する参照量を追加します。次に、フェノール硫酸比色を行います。含有量を決定するために、サンプル溶液を調製します。
確立された方法に従ってフェノール硫酸測色を行います。次に、吸光度を決定します。2.7ミリグラムのDPPHを空の50ミリリットルのメスフラスコに入れます。
50ミリリットルの無水エタノールを加えてDPPHを溶解し、原液を調製します。次に、5ミリグラムのビタミンCを10ミリリットルの脱イオン水に溶かして、1ミリリットルあたり0.5ミリグラムの溶液を調製します。この溶液を連続的に希釈して、ビタミンC試験溶液を調製します。
次に、各シーバックソーン多糖類サンプル5ミリグラムを10ミリリットルの脱イオン水に溶解して、1ミリリットルあたり0.5ミリグラムの溶液を調製します。これらの溶液を連続して希釈して、試験濃度を取得します。DPPH溶液を基質として使用し、96ウェルプレートで試験群を調製します。
陰性対照群A0に150マイクロリットルの水と50マイクロリットルのDPPHを加えます。サンプルグループA1に150マイクロリットルのサンプルまたはビタミンC溶液と50マイクロリットルのDPPHを加えます。サンプルコントロールグループA2の場合、150マイクロリットルのサンプルと50マイクロリットルの無水エタノールを追加します。暗闇の中で30分間反応を進行させます。次に、517ナノメートルで吸光度を測定します。
グルコースの標準曲線は、0.02〜0.07ミリグラム/ミリリットルの範囲で吸光度と濃度の間に強い線形関係を示しました。Hippophae gyantsensisの平均多糖類収量は、Hippophae rhamnoides subspecies sinensisの平均多糖類収量よりも有意に高かった。精度テストでは、6回の測定で吸光度のばらつきが最小限で、RSDは0.21%であり、機器の精度が高いことが示されました。
安定性試験では、吸光度値が 10 時間にわたって一定に保たれ、RSD 値が 0.45% でサンプル溶液の安定性が確認されたことが示されました。再現性試験では、RSD が 0.5% で 6 回の繰り返しにわたって一貫した吸光度値が得られ、メソッドの再現性が検証されました。グルコース含有量の回収実験では、平均回収率は99.18%で、この方法の精度が確認されました。
Hippophae rhamnoides 亜種 sinensis の平均多糖類含有量は、Hippophae gyantsensis のそれよりも有意に高かった。Hippophae gyantsensisは、すべてのテスト濃度でHippophae rhamnoides subspecies sinensisよりもわずかに高い抗酸化活性を示しました。0.5ミリグラム/ミリリットルで、Hippophae gyantsensisのDPPHクリアランス率は81.93%に達し、Hippophae rhamnoides亜種sinensisは75.17%に達しました
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本研究では、Hippophae rhamnoides sub. sinensisとHippophae gyantsensisにおける多糖類含有量および抗酸化活性を比較しています。これにより、多糖類の特性における種特有の違いに関する文献上の空白を埋めることを目的としています。
Hippophae rhamnoides subsp. sinensisおよびHippophae gyantsensisにおける多糖類含量と抗酸化活性の比較定量分析を行うことで、天然物パイプラインにおける堅牢な品質評価が可能になります。収量、含量、および機能的活性を正確に測定することは、初期段階のリスク低減をサポートし、さらなる医薬品開発に向けた種の選定に寄与します。これらの検証済み分析結果は、下流における生理活性化合物の評価およびポートフォリオの選別における予測的な信頼性を高めます。
この比較分析ワークフローは、天然物研究開発の初期探索およびリード化合物同定段階に統合され、ターゲットのバリデーションとスクリーニングへの準備の両方を支援します。