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3 층 microfluidic의 perifusion 장치의 A.의 Microfabrication
하단 그럼 마스터 프로토콜 (150 μm의 깊은 우물)
- 필요한 경우 면도날을 사용하여 웨이퍼를 청소합니다. 아세톤, 메탄올과 IPA로 닦으십시오. 30 S. 50 왓츠에서 플라즈마 처리를 수행
- 스핀 SU8 - 100 @ 2000 RPM. [1 단계 : 500 RPM, 10 S, 100 RPM / s의 2 단계 : 2000 RPM, 30 S, 300 RPM / S].
[참고 : SU8 스피닝 후 핀셋으로 웨이퍼를 보유하지] - 소프트 베이킹 65 웨이퍼 ° C 20 분 및 95 °에서 50 분 C.
- 웨이퍼는 원하는 마스크를 통해 자외선에 노출됩니다. 150 μm의 높이에 대한 선량 650 MJ / cm 2입니다.
- 포스트 노출은 65에서 웨이퍼를 구워 ° 1 분 및 95에서 C ° 12 분 C.
- 15 분 SU8 개발자의 웨이퍼를 개발.
Microchannel 마스터 프로토콜 (500 μm의 깊은 우물)
- 필요한 경우 면도날을 사용하여 웨이퍼를 청소합니다. 아세톤, 메탄올과 IPA로 닦으십시오. 30 S. 50 왓츠에서 플라즈마 처리를 수행
- 스핀 SU8 - 2150 @ 1000 RPM. [1 단계 : 500 RPM, 10 S, 100 RPM / s의 2 단계 : 1000 RPM, 30 S, 300 RPM / S].
- 소프트 베이킹 65 웨이퍼 ° C 15 분 및 95 °에서 2 시간 30 분 C.
- 웨이퍼는 원하는 마스크를 통해 자외선에 노출됩니다. 650 μm의 높이에 대한 노출 선량은 685 MJ / cm 2입니다.
- 포스트 노출은 65에서 웨이퍼를 구워 ° 5 분 및 95에서 C ° ~ 35 분 C.
- 20-30 분 SU8 개발자의 웨이퍼를 개발.
PDMS 솔루션 준비
- Polydimethylsiloxane (PDMS) 솔루션은 철저하게 표준 Sylgard 184 키트의 치료 요원 1 일부로 실리콘 탄성체의 10 부분을 혼합하여 준비가되어 있습니다.
- 혼합 과정에서 PDMS 솔루션에서 생성된 거품은 진공 건조기를 사용하여 제거됩니다.
- 거품없는 PDMS 솔루션은 천천히 SU8 마스터와 세 번째 레이어에 빈 페트리 접시에 적절합니다.
- 뜨거운 접시의 온도가 75로 설정되어 ° C와 PDMS는 2 시간이 온도에서 치료됩니다
- 인레츠, 콘센트 및 교환 우물은 적절한 크기의 구멍 구멍을 뚫는를 사용하여 밖으로 펀치입니다.
- 레이어는 휴대용 플라즈마 장치를 사용하여 유리 슬라이드 (크기 0.1 ㎜)에 함께 결합하고 있습니다.
B. 실험 설정
- 마이크로 장치를 통해 흐름을 70 % 에탄올은 소독 수 있습니다. 흐름 DI 물 에탄올을 씻어. microchannel 벽에 인슐린 이외의 구체적인 흡착을 방지하기 위해 장치를 통해 0.5 % BSA의 50 ML을 Perfuse.
- 포도당 램프 기울기와 펌프는 그라디언트가 안정되어 있는지 확인하기 위해 테스트하는 주사기와 통신 LabView 소프트웨어에 의해 생성된 기타 관련 그라디언트.
- 25-30 쥐 아일 레츠가 37 ° C에서 30 분 5 μm의의 Fura-2/AM (칼슘 표시기, 분자 프로브, CA) 및 2.5 μm의의 Rhodamine 123 (Rh123, mitochondrial 가능성 표시기, 시그마, MO)와 incubated되었습니다 이 MM 포도당을 포함한 크렙스 - 링어 버퍼 (KRB)
- 마우스 아일 레츠는 신중하게 유입 포트를 통해 microfluidic perifusion 장치로 pipetted 있습니다.
- microfluidic 네트워크는 다음 Tygon 관 그리고 Y - 커넥터 및 분획 수집기에 콘센트를 사용하여 주사기 펌프에 입구를 연결하여 설정합니다. 장치는 현미경에서 가열 단계 (37 ° C)에 자리하고 유입 튜브는 37 챔버 및 솔루션의 온도를 유지하기 위해 열판에서 가열 ° C.
- 즉시 설치 후, 쥐 아일 레츠는 KRB 그런 다음 10 분 25 분 포도당 램프 (2mM 25mM) 2 MM 포도당이 포함된 함께 perifused 있습니다.
- 시간 경과 이미지 SimplePCI 소프트웨어에 의해 매 15 s를 수집하고 분석합니다. perifusate 또한 엘리사 키트를 사용하여 인슐린 분비를 분석하기 위해 분획 수집기를 사용하여 매 순간을 수집합니다.
대표 결과
마우스 아일 레츠는 2-25 MM 포도당의 선형 그라디언트로 perifused되었습니다. 그림 1에 표시된, 칼슘 유입 및 인슐린 분비는 6 MM 포도당에 해당하는 perifusion 13 분 후에 실행됩니다. Mitochondrial 잠재력의 변화는 약 11 분, 이전에 예상대로 볼 수 있습니다. 이 데이터는 아일릿 생리 특징이 microfluidic 네트워크를 사용하는 장점을 보여줍니다.

그림 1. 세포 자극을 아일릿하는 생리 반응.