1. 표지된 암세포의 꼬리 정맥 주입
참고: Step 1.2.4는 syngeneic BALB/c 마우스에서 성장하는 4T1 세포에 최적화되었습니다. 다른 암 세포주와 마우스 균주를 사용하는 경우 주입되는 세포의 수와 분석의 길이를 먼저 최적화해야 합니다.
- 완전한 성장 배지에서 2개의 15cm 접시에서 2단계에서 생성된 4T1 세포주를 확장하여 주입 당일에 초과 세포를 사용할 수 있도록 합니다.
- 다음과 같이 꼬리 정맥 주입을 위해 세포를 준비합니다.
- 배지를 흡입하고 1x PBS로 세포판을 헹굽니다.
- 15cm 플레이트당 5mL의 트립신으로 세포를 2-5분 동안 트립신화합니다(세포는 웰 바닥을 자유롭게 헹궈야 함). 모든 세포를 원뿔형 튜브로 옮깁니다. 조직 배양 접시에 남아 있는 세포를 트립신을 담금질하기에 충분한 완전한 성장 배지로 세척하고 세척액을 동일한 원뿔형 튜브에 추가합니다.
- 자동화된 셀 카운터를 사용하여 셀 수를 계산하여 총 셀 수를 확인합니다.
- 122 x g에서 3분 동안 세포를 원심분리하고, 상층액을 흡인하고, 원하는 농도로 1x PBS에 세포를 재현탁합니다. 여기서, 2.5 x 104 세포는 100 μL의 PBS에 각 마우스에 주입되므로 2.5 x 105 cells/mL에서 세포를 재현탁합니다. 주입될 때까지 세포 현탁액을 얼음 위에 두십시오.
참고: 세포의 트립신화와 꼬리 정맥 주입 사이의 시간을 약 1시간으로 제한하는 것이 중요합니다.
- 다음과 같이 1.2.5단계의 4T1 세포를 측면 꼬리 정맥을 통해 마우스에 주입합니다.
- 동물 시설의 후드 안에서 작업하면서 튜브를 뒤집거나 1mL 주사기를 사용하여 세포가 균일하게 재현 유탁되도록 하여 세포를 부드럽지만 철저하게 혼합합니다. 주사기를 로드하기 전에 항상 세포가 재현탁되었는지 확인하십시오.
- 1mL Luer-lock 주사기에 세포 현탁액을 로드하고 과도한 기포를 배출합니다. 베벨이 위로 향하게 하여 주사기에 1/2인치, 30게이지 바늘을 놓고 기포를 배출합니다.
- 마우스를 설치류 구속기에 부드럽게 놓습니다.
- 측면 꼬리 정맥은 보이고 확장되어야 합니다. 그렇지 않은 경우 꼬리 바닥을 부드럽게 꼬집고 꼬리를 따뜻한 수돗물에 담궈 정맥을 확장시킵니다.
메모: 정맥의 확장은 마우스 케이지를 가열 램프 아래 및/또는 가열 패드 위에 배치하여 달성할 수도 있습니다.
- 알코올 물티슈를 사용하여 꼬리를 청소하십시오. 바늘을 꼬리 정맥에 삽입하고 경사면이 위로 향하게 한 다음 100μL의 세포 현탁액을 주입합니다.
메모: 바늘이 정맥에 제대로 삽입되면 앞뒤로 약간 쉽게 미끄러져야 하며 플런저를 밀 때 저항이 없어야 합니다. 성공적인 주사는 또한 주사 후 몇 초 동안 정맥의 파란색이 흰색으로 변하는 "플러시"를 초래해야 합니다.
- 천천히 바늘을 제거하고 멸균 거즈를 사용하여 주입 부위에 압력을 가하여 출혈을 멈춥니다.
- 마우스를 케이지로 되돌리고 15분 동안 모니터링하여 완전히 회복되도록 합니다. 생쥐는 매주 3번 통증이나 괴로움의 징후가 있는지 확인해야 합니다.
- in vivo 살아있는 동물 이미징 장치를 사용하여 3-6주(세포주 및 마우스 균주에 따라 다름) 동안 마우스의 전이 형성 및 성장을 모니터링합니다(단계 1.5 및 1.6 참조).