1. 산화 다공성 실리콘(PSiO2) 캐리어 제작
- 실리콘(Si) 웨이퍼(단면 연마 <100>면, 붕소 도핑이 심한 p형, 0.95mΩ·cm)을 다이아몬드 팁 펜을 사용하여 1.5cm × 1.5cm 샘플로 절단합니다.
- Si 샘플을 관상로에서 400°C에서 주변 공기에서 2시간 동안 산화시킵니다(가열 속도: 25°C/min, 자연 냉각).
- Si 샘플을 불산(HF) 수성(48%), 이중 증류수(ddH2O) 및 에탄올(99.9%)(1:1:3 v/v/v) 용액에 5분 동안 담그고 샘플을 에탄올로 세 번 헹구고 질소 흐름에서 건조시킵니다.
참고: HF는 유리를 용해시키므로 HF 용액을 플라스틱 제품에만 준비하여 보관하십시오.
주의: HF는 부식성이 강한 액체이므로 각별한 주의를 기울여 취급해야 합니다. 노출된 경우 물로 철저히 헹구고 환부를 HF 해독제 젤로 치료하십시오. 즉시 의사의 진료를 받으십시오. - 알루미늄 호일 스트립을 후면 접점으로, 백금 코일을 상대 전극으로 사용하여 폴리테트라플루오로에틸렌 에칭 셀에 Si 샘플을 장착합니다.
- 250mA/cm2의 정전류 밀도에서 30초 동안 HF와 에탄올(99.9%)의 3:1(v/v) 용액에 희생층을 에칭합니다. 그런 다음 생성된 PSi 필름의 표면을 에탄올로 세 번 헹구고 질소 흐름에서 건조시킵니다.
- 갓 에칭된 다공성 층을 수산화나트륨(NaOH) 수용액(0.1M)에 2분 동안 용해시킵니다. 그런 다음 에탄올로 세 번 헹구고 질소 흐름에서 건조시킵니다.
샘플- 을 HF(48%), ddH2O 및 에탄올(99.9%)(1:1:3 v/v) 수용액에 2분 동안 담급니다. 그런 다음 에탄올로 세 번 헹구고 질소 흐름에서 건조시킵니다.
- Si 샘플을 HF 수성과 에탄올(99.9%)의 3:1(v/v) 용액에서 250mA/cm2의 정전류 밀도로 20초 동안 전기화학적으로 에칭합니다. 그런 다음 생성된 PSi 필름의 표면을 에탄올로 세 번 헹구고 질소 흐름에서 건조시킵니다.
- 새로 에칭된 PSi 샘플을 관형로에서 800°C의 관상로에서 주변 공기(가열 속도: 25°C/min, 자연 냉각)에서 1시간 동안 열산화하여 다공성 SiO2(PSiO2) 스캐폴드를 형성합니다.
- PSiO2 샘플을 4,000rpm에서 1분 동안 양극의 두꺼운 포토레지스트로 스핀 코팅한 다음 코팅된 샘플을 90°C에서 2분 동안 굽습니다(가열 속도: 5°C/min, 자연 냉각).
- 다이싱 톱을 사용하여 PSiO2 샘플을 8mm × 8mm 샘플로 다이싱합니다.
- 포토레지스트를 제거하려면 잘게 썬 샘플을 아세톤에 3시간 동안 담그십시오. 그런 다음 에탄올로 철저히 헹구고 질소 흐름에서 건조시킵니다.
2. 신경 성장 인자(NGF)로 PSiO2 로딩
- NGF 로딩 용액을 제조하기 위해 쥐 β-NGF 20μg을 0.01 M 인산염 완충 식염수(PBS) 및 ddH2O의 1:1(v/v) 용액 400μL에 용해시킵니다.
- PSiO2 샘플 위에 52μL의 로딩 용액을 첨가하고 뚜껑이 있는 접시에서 실온(RT)에서 2시간 동안 배양합니다.
참고: 배양 중에 용액이 건조되는 것을 방지하기 위해 접시에서 높은 습도를 유지하십시오. - PSiO2 담체 내에서 NGF 함량의 후속 정량화를 위해 샘플 위에 용액을 수집합니다.
참고: PSiO2로딩하는 NGF 로딩은 의도된 사용 직전에 수행해야 합니다. 단백질의 건조 및 변성의 위험 때문에 여기에서 프로토콜을 일시 중지할 수 없습니다.
3. NGF 탑재 PSiO2 보인체
- 쥐 갈색 세포종(PC12) 세포 배양
- 10% 말 혈청(HS), 5% 소 태아 혈청(FBS), 1% L-글루타민, 1% 페니실린-스트렙토마이신 및 0.2% 암포테리신을 Roselle Park Medical Institute(RPMI) 배지에 첨가하여 기본 성장 배지를 준비합니다.
- RPMI 배지에 1% HS, 1% L-글루타민, 1% 페니실린-스트렙토마이신 및 0.2% 암포테리신을 첨가하여 분화 배지를 준비합니다.
- 75 cm2 배양 플라스크에 10 mL의 염기성 성장 배지와 함께 세포 현탁액(106 세포)을 8일 동안 성장시키고, 2일마다 10mL의 염기성 성장 배지를 플라스크에 첨가합니다.
- 분화된 PC12 세포 배양을 생성하기 위해, 세포 현탁액을 원심분리 튜브로 옮기고; 200 x g 및 RT에서 8분 동안 세포를 원심분리한다. 상청액을 버린다.
- 세포를 5mL의 신선한 염기성 성장 배지에 현탁시키고 200 x g 및 RT에서 5분 동안 세포를 재원심분리합니다. 상청액을 버리고 세포 펠릿을 3mL의 염기성 성장 배지에 재현탁합니다.
- 세포 클러스터를 분리하려면 23G 주사기를 사용하여 세포를 10회 흡인합니다.
- 혈구계 세포 계수기를 사용하여 세포를 계산하고 분화 배지가 있는 상태에서 콜라겐 유형 I 코팅 플레이트에 104 cells/cm2 작업 영역을 시드합니다.
- 24시간 후, 플레이트당 신선한 쥐 β-NGF(50ng/mL) 또는 NGF 로딩 PSiO2 담체를 추가합니다.
>참고: 더 높은 NGF 농도(>50ng/mL)는 지정된 농도와 정확한 효과를 갖습니다. - 2일마다 감화 배지를 갱신하십시오.
- 세포 생존력을 평가하기 위해, 대표적인 시점에 생존율 지표 용액(레사주린 기반)의 10%(v/v)를 첨가하고 37°C에서 5시간 동안 배양하고, 분광 광도계를 사용하여 490nm에서 흡광도를 측정한다.