방법 논문

캡슐 형성 병원성 박테리아 균주의 배양 및 분리

2025년 8월 29일

이 논문에서

초록

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출처: Feltwell, T., et.al. 불연속적인 밀도 구배를 사용하여 캡슐 양으로 박테리아를 분리합니다. J. Vis. 경험. (2019년)

이 비디오는 다양한 캡슐 생산을 가진 박테리아 균주의 준비 및 특성화를 보여줍니다. 캡슐 관련 유전자에 서로 다른 돌연변이를 가지고 있는 병원성 균주를 배양하고, 액체 배지에서 성장시키고, 원심분리하여 펠릿 밀도를 기반으로 캡슐 표현형을 구별합니다. 완충액 처리는 캡슐 구조를 보존하면서 세포를 세척하고 안정화하는 데 사용됩니다.

프로토콜

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. 박테리아 균주 또는 돌연변이 라이브러리의 준비

1. 적절한 한천 플레이트에서 테스트할 균주를 줄무늬로 줄지어 만듭니다. 이들은 실험을 위한 스톡 플레이트입니다.

1. 단일 콜로니를 얻기 위해 원하는 온도에서 밤새 플레이트를 배양합니다. 이 실험을 위해 K. pneumoniae(NTUH-K2044 및 ATCC43816 균주)를 Luria 국물(LB) 한천에서 37°C에서 배양하고 S. pneumoniae(23F 야생형 및 23F Δcps)를 37°C의 가습 양초병에 혈액 한천에 배양합니다.

2. 스톡 플레이트(단계 1.1)에서 단일 콜로니를 선택하여 멸균 루프 또는 칵테일 스틱을 사용하여 적절한 국물 10mL를 접종합니다. 무작위 돌연변이 라이브러리의 스크리닝을 위해 국물에 무작위 돌연변이 라이브러리 스톡 10μL(TraDIS 라이브러리)를 접종합니다.

1. K. pneumoniae 균주를 37°C의 저염 LB 배지에서 흔들면서 배양하고, S. pneumoniae 균주를 뇌심장 주입(BHI) 배지에서 37°C에서 정적으로 배양합니다.

2. 하룻밤 배양액을 15mL 튜브로 옮기고 벤치탑 원심분리기에서 15mL 튜브 인서트와 에어로졸 단단한 뚜껑이 있는 스윙 아웃 버킷에서 3,200 x g으로 10분 동안 원심분리합니다.

3. 상청액을 버리고 펠릿을 1x 인산염 완충 식염수(PBS) 2mL에 재현탁합니다.

참고: 실험실에서 적절한 액체 생물학적 폐기물 경로를 통해 상청액을 폐기하십시오. 원심분리 및 재현탁 단계(1.2.2 및 1.2.3)의 목적은 구배에서 쉽게 시각화할 수 있도록 박테리아를 농축하는 것입니다. 원하는 경우 박테리아 배양물을 구배에 직접 로드할 수 있습니다. 심하게 캡슐화된 균주는 단단한 펠릿을 형성하지 않을 수 있습니다. 이 경우 박테리아 세포를 제거하지 않고 가능한 한 많은 상청액을 제거하고 최종 부피 5mL에 1x PBS를 첨가한 다음 펠릿을 재현탁합니다. 1.2.5단계로 프로토콜을 계속합니다.

5. 1.2.2단계에 설명된 대로 튜브를 원심분리합니다.

6. 상청액을 버리고 펠릿을 2mL의 1x PBS에 재현탁합니다. 이제 셀을 사용할 준비가 되었습니다.

참고: 박테리아 세포 현탁액의 밀도는 critica,l이 아니지만 그라디언트에서 시각화하기에 충분해야 합니다. 최소 OD600(600nm에서의 광학 밀도)은 4가 제안됩니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
로터 A-4-81 및 500mL 버킷이 있는 원심분리기 5810REppendorf5810 718.007
15mL 튜브용 어댑터Eppendorf5810 722.004
고정식 로터 F-34-6-38Eppendorf5804 727.002
2.6 - 7 mL 튜브 어댑터Eppendorf5804 739.000
로터 FA-45-24-11Eppendorf5424 000.460
2 mL 튜브Eppendorf0030 120.094
1.5 mL 튜브Eppendorf0030 120.086
P1000 피펫 및 팁
P200 피펫 및 팁

재인쇄 및 허가

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