1. 액체 사멸 분석 설정(기본 프로토콜)
메모: 이것은 하나의 박테리아 균주와 하나의 벌레 공급원에 대한 프로토콜입니다.
- 세포 스크레이퍼를 사용하여 Slow Killing 또는 SK 플레이트에서 녹농 균을 제거하고 ~ 5mL의 S Basal에 재현탁합니다. 필요한 경우 확장합니다. 분광 광도계(OD600)를 사용하여 박테리아 현탁액의 광학 밀도를 측정합니다.
- OD600 ≈ 0.09(최종 농도 3배)의 S Basal에 P. aeruginosa의 희석된 육수 24mL를 준비합니다. 웰당 최종 함량은 4.6.2를 참조하고 그에 따라 박테리아 희석량의 크기를 조정합니다.
- 액체 Slow Kill 배지 21mL를 추가합니다(NaCl 3g, CaCl2 및 MgSO4 가 보충된 펩톤/L 3.5g을 최종 농도 1mM까지 함). 다중 채널 피펫을 사용하여 45μL의 박테리아와 배지를 384웰 플레이트의 각 웰로 옮깁니다.
- 웜을 소스에서 50mL 원추형 튜브로 세척하고 웜이 중력에 의해 가라앉도록 합니다. 상청액을 5mL로 흡인합니다. 총 50mL S 기저에 재현탁합니다.
- 1.4단계를 두 번 반복합니다.
- 웜 분류기를 사용하여 약 22마리의 웜을 384웰 플레이트의 각 웰에 분류합니다.
메모: 이 설정은 각 웜을 ~1.1 μL의 액체에 떨어뜨립니다. 22개의 웜은 25μL에 달하여 총 분석 부피를 70μL/웰로 만듭니다.- 각 웰의 최종 조성물은 70μL로 구성됩니다. 이 부피의 45μL를 박테리아 배지로 첨가합니다(0.03 OD 24 μL S Basal에600 개의 박테리아, CaCl2 및 MgSO4가 보충된 21 μL SK). 나머지 25μL는 22개의 웜과 함께 추가됩니다.
- 여기에 사용된 분류기( 재료 표 참조)를 사용할 수 없는 경우, 웜을 S Basal에서 최종 농도 1 웜/μL로 희석하고 다중 채널 피펫을 사용하여 25 μL/웰로 피펫팅할 수 있습니다. 그러나 결과는 증가된 변동성을 나타낼 수 있습니다. 또는 Leung과 동료들이 설명한 대로 연동 액체 디스펜서를 사용할 수 있습니다.
- 웜을 384웰 플레이트에 분류한 후, 플레이트를 가스 투과성 필름으로 밀봉하고 플레이트를 25°C에서 24 - 48시간 동안 배양합니다.
- 원하는 시간에 마이크로플레이트 와셔를 사용하여 S Basal로 384웰 플레이트를 총 5회 세척합니다.
- 두 번째 세척 후, 대부분의 배지를 흡인하고 ~20μL를 남깁니다. 마이크로플레이트 와류기를 사용하여 플레이트를 최소 30초 동안 세게 흔들어 웰 바닥에서 파편을 느슨하게 합니다.
- 최종 세척 후, 상청액을 20μL까지 흡인합니다. 0.7μM의 최종 농도를 위해 384웰 플레이트의 웰 50μL의 0.98μM 핵산 염색( 재료 표 참조)/웰을 추가합니다.
- 실온에서 12 - 16시간 동안 배양합니다. 이 염료는 죽은 벌레만 염색합니다. 원하는 배양 기간이 지난 후 마이크로플레이트 와셔를 사용하여 플레이트를 세척하여 과도한 얼룩을 제거합니다(최소 3회 세척).
- 데이터 수집을 위해 분광 광도계 또는 자동 현미경을 사용하여 투과광과 형광(531nm 여기 및 593nm 방출)을 모두 이미지화합니다.