방법 논문

염화세슘 기반의 게놈 함유 아데노바이러스 벡터 정제

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2026년 8월 31일

이 논문에서

초록

출처: Ehrke-Schulz, E., 등. 인간 아데노바이러스 5형 기반 고용량 아데노바이러스 벡터의 클로닝 및 대량 생산. J. Vis. Exp. (2016). 이 영상은 염화세슘 밀도 구배 초원심분리를 이용한 고용량 아데노바이러스 벡터의 정제 과정을 보여주며, 이를 통해 유전자 전달, 벡터 특성 분석 및 전임상 치료 연구에 적용 가능한 게놈 함유 비리온을 분리할 수 있습니다. Ehrke-Schulz, E., 외 등인간 아데노바이러스 5형 기반 고용량 아데노바이러스 벡터의 클로닝 및 대량 생산. J. Vis. Exp. (2016)

본 영상에서는 세슘 클로라이드 밀도 구배 초원심분리를 이용한 고용량 아데노바이러스 벡터의 정제 방법을 설명하며, 이를 통해 유전자 전달, 벡터 특성 분석 및 전임상 치료 연구에 활용 가능한 게놈 함유 비리온을 분리하는 과정을 보여줍니다.

프로토콜

  1. HCAdV(고용량 아데노바이러스 벡터)의 정제 및 투석
    1. 세슘 클로라이드(CsCl) 밀도 구배를 위한 바이러스 용해물을 준비하려면, 세포-바이러스 현탁액을 액체 질소에 급속 냉동시킨 후 워터배스에서 다음 온도로 해동하십시오. 37 °C 4배.
    2. 바이러스 용해물을 실온(RT)에서 500 x g로 8분간 원심분리하고, HCAdV(고용량 아데노바이러스 벡터)가 포함된 상층액을 수집한다.
    3. 초원심분리를 위해 다음과 같이 CsCl 용액을 준비하십시오. 37.5g(1.5 g/cm³의 경우)을 측정하여3), 33.5 g (1.35 g/cm³ 기준)3), 그리고 31.25 g (1.25 g/cm³의 경우)3)의 CsCl 분말을 각각 넣고, dH2O로 채웁니다.20~25 ml.
      1. 용액이 투명해질 때까지 교반한 후, 용액을 멸균 여과한다. 마지막으로 각 용액에서 1ml를 취해 정밀 저울로 무게를 측정하여 밀도가 정확한지 확인한다. 1ml의 무게는 각각 1.5g, 1.35g, 1.25g이어야 한다.
      2. 밀도가 너무 높을 경우, 소량씩 단계적으로 첨가하여 이를 조정하십시오(µl)의 멸균 증류수(dH2O)2O. dH2O 추가 후2밀도를 다시 측정하십시오. 필요한 경우 dH2O를 더 추가하십시오.2O.
      3. 밀도가 정확해질 때까지 이 절차를 반복하십시오. 밀도가 너무 낮은 경우, 소량의 CsCl 분말을 추가하여 조정하십시오. 다시 멸균 여과한 후 밀도를 확인하십시오. 밀도가 너무 높은 경우, dH2O를 추가하여 조정하십시오.2이전에 설명한 대로 진행하십시오. 밀도가 여전히 너무 낮으면 CsCl을 더 추가하고, 다시 멸균 여과한 후 밀도를 확인하십시오. 밀도가 적절해질 때까지 이 과정을 반복하십시오.
    4. 6개의 투명한 초원심분리관에 CsCl 단계 구배를 준비합니다. 다음 순서에 따라 CsCl 용액을 투명한 관에 조심스럽고 천천히 피펫팅합니다: 1.5 g/cm³ 농도의 CsCl 용액 0.5 ml3 CsCl 용액, 1.35 g/cm³ 3 ml3 CsCl 용액 및 1.25 g/cm³의 3.5 ml3 CsCl 용액 (그림 1C).
    5. 단계 1.2에서 얻은 맑은 벡터 상청액 약 4.5 ml를 1.25 g/cm³ 층 위에 층층이 쌓습니다.3 CsCl 층. 스윙 아웃 로터(SW-41)가 장착된 초원심분리기를 사용하여 기울기 층을 다음 조건으로 원심분리한다. 12 °C HCAdV 게놈을 포함하는 바이러스 입자를 빈 입자 및 세포 잔해로부터 분리하기 위해, 저속 가속 및 감속 조건에서 226,000 x g (35,000 rpm)로 최소 2시간 동안 원심분리한다.
      주의: 최적의 조건에서 튜브 상단에 세포 잔해(cell debris)가 확산된 띠 형태로 형성되었습니다. 그 아래로 두 개의 흰색 띠가 관찰됩니다. 위쪽 띠는 빈 입자(empty particles)를 포함하고 있으며, 아래쪽 띠는 HCAdV에 해당합니다.그림 1C2A).
    6. 세포 잔해와 빈 입자 층을 조심스럽게 제거하고, 각 튜브의 하단 밴드에서 1 ml씩 수집하여 깨끗한 피펫 팁을 이용해 멸균된 50 ml 튜브로 바이러스를 옮깁니다. 여기에 1.35 g/cm³의 용액을 최대 24 ml까지 첨가합니다.³ 수집된 바이러스 입자에 CsCl 용액을 첨가하고 조심스럽게 혼합한다.
    7. 원심분리관에 1.35 g/cm³의 용액을 채웁니다.3 CsCl-바이러스 용액을 상층에 얹고, 226,000 x g (35,000 rpm)에서 하룻밤 동안(18-20시간) 원심분리한다. 12 °C 느린 가속 및 감속 설정의 스윙아웃 로터(SW-41)가 장착된 초원심분리기를 사용하여.
    8. 두드러진 하단 밴드에 존재하는 HCAdV를 수집하십시오. 상단 밴드에는 빈 입자가 포함되어 있을 가능성이 있으므로, 피펫을 사용하여 위쪽 층을 제거하십시오(참조 그림 1C2B). 그런 다음, 피펫을 사용하여 아래쪽 밴드를 제거합니다.
    9. 수집된 바이러스 입자를 완충액 교체를 위해 투석하십시오.
      1. 분자량 컷오프(MWCO) 50,000인 투석 튜브를 약 8cm 길이로 잘라 멸균 증류수(dH2O)로 세척한다.2이 과정을 3회 반복합니다. 그런 다음 투석 튜브의 한쪽 끝을 플라스틱 클램프로 밀봉하고, 1ml 피펫을 사용하여 단계 5.8에서 수집한 바이러스를 튜브 안으로 옮깁니다. 튜브 내부에 기포가 생기지 않도록 주의하며, 반대쪽 끝 또한 플라스틱 클램프 투석 밀봉 장치로 닫습니다.
      2. 1L의 투석 완충액(10 mM Tris-HCl (pH 7.5), 10% 글리세롤, 1 mM MgCl2)에서 투석한다.2 (염화마그네슘)를 탈이온수(H₂O)에2O) 2시간 동안 다음 온도에서 4 °C 천천히 교반하며 반응시킨다. 투석 버퍼를 2 L의 투석 버퍼로 교체하고, 다음의 조건에서 밤새(O/N) 투석한다. 4 °C 천천히 저어주며 혼합합니다. 또는 sucrose 완충액(140 mM NaCl (염화나트륨), 5 mM Na2HPO4.2H2O (인산수소이나트륨, 1.5 mM KH2PO4 (인산이수소칼륨 및 730 mM 수크로스, pH 7.8).
      3. 1ml 피펫을 사용하여 단계 1.9.2에서 투석된 바이러스 입자를 수집하십시오. 원하는 소량(25-100 µl)하고 정제된 바이러스를 -에서 보관하십시오.80 °C.

결과

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그림 1. pAdVFTC로부터 HCAdV(고용량 아데노바이러스 벡터) 게놈의 클로닝 과정 및 방출에 대한 대표 결과. (A) PI-SceI 및 I-CeuI 소화를 통한 pHM5로부터의 목적 유전자(GOI) 발현 카세트 방출. (B) 정제된 GOI 발현 카세트 및 PI-SceI와 I-CeuI로 각각 소화하여 탈인산화 및 정제한 pAdVFTC. (C) GOI 포함 및 미포함 pAdVFTC 클론의 분석적 HincII 소화. (D) NotI 소화를 통한 pAdVFTC-GOI로부터 GOI를 포함하는 HCAdV 게놈의 방출

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그림 2. 염화세슘 처리 후의 대표적인 결과 (CsCl(염화세슘) 밀도 구배 원심분리. (A) 단계 구배 원심분리를 수행한 후(단계 1.5 참조); (B) 연속 구배 이후(단계 1.7 참조).

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
Ultra Clear 초원심분리기 튜브Beckmann Coulter344059밀도 구배 원심분리
초원심분리기Beckmann Coulter 밀도 구배 원심분리
SW-41 로터Beckmann Coulter 밀도 구배 원심분리
Spectrum Laboratories Spectrapor 막VWR132129투석 튜브
즉시 사용 가능한 투석 카세트Thermo66383투석
염화세슘Carl Roth8627.1밀도 구배 원심분리
LB 배지Carl RothX968.3세균 성장 배지
Tris-HCl 99%Carl Roth9090.3투석 완충액/ 용해 완충액
글리세롤 99.5%Carl Roth3783.1투석 완충액
MgCl₂₂ 98.5%Carl RothKK36.2투석 완충액
NaClCarl Roth3957.1선택적 투석 완충액
KH₂PO₄Carl Roth3904.2선택적 투석 완충액
자당Carl Roth9286.1선택적 투석 완충액
나트륨₂HPO₄·2H₂OCarl Roth4984.2선택적 투석 완충액
1.5 ml 튜브sarstedt72,730,005바이러스 제제 -도 보관80 °C

태그

염화세슘 정제기울기 초원심분리게놈 함유 비리온바이러스 입자 분리고용량 아데노바이러스밀도 기울기 분리포유류 세포 감염바이러스 용해물 준비완충액 교환 투석