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동물 모델과 관련된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 검토 위원회에서 검토되었습니다.
1. 뇌에서 단세포 현탁액 준비
- 15mL 코니컬 튜브에서 PBS와 함께 밀도 구배 배지를 9:1 비율로 희석하여 최종 100% 용액을 생성합니다.
- EAE가 최고조에 달한 마우스를 1% 펜토바르비탈 나트륨(50mg/kg)의 복강 내 주사로 마취하고 20mL의 멸균 얼음처럼 차가운 PBS를 심내 관류합니다. 20mL 주사기를 사용하여 PBS를 심장의 좌심실에 천천히 꾸준히 주입하고 우심방을 열어 이를 달성하십시오.
- 코에서 목까지 두개골을 조심스럽게 자른 다음 두개골 상자에서 뇌를 제거하여 50mL 원추형 튜브에 10mL의 RPMI를 넣습니다. 잘 섞어 부착 된 적혈구를 제거하십시오. 그런 다음 흡인으로 배지를 제거하고 RPMI 10mL를 추가합니다.
- 뇌와 매체를 100mm 접시에 담습니다. 면도날로 잘게 자릅니다.
- 깨끗한 피펫을 사용하여 접시에서 6mL를 얼음처럼 차가운 7mL 소결 유리 균질기로 옮깁니다. 피펫에 많은 양의 조직을 남기지 마십시오. 소량은 피할 수 없습니다.
- 먼저 유봉의 "느슨한" 플런저를 사용하여 뇌를 갈아낸 다음 현탁액이 균질해질 때까지 "단단한" 플런저를 사용하고 미리 냉각된 15mL 원뿔형 튜브에 붓고 얼음 위에 두십시오.
- 모든 샘플이 균질화되면 부피를 추정합니다. RPMI로 부피를 7mL로 조정합니다. 그런 다음 냉각된 15mL 코니컬 원심분리 튜브에 얼음처럼 차가운 100% 기저막 매트릭스 3mL를 넣고 뇌 균질액 7mL를 추가하여 최종 30% 밀도 구배 배지를 생성합니다. 반전으로 몇 번 섞습니다. 소용돌이치지 마십시오.
- 선명한 계면을 보장하려면 3mL 피펫을 사용하여 RPMI에 1mL의 70% 언더레이 밀도 구배 매체를 조심스럽게 천천히 추가합니다.
- 800 x g에서 4°C에서 20분 동안만 원심분리기. 가속을 1로, 감속을 0으로 설정합니다. 원심분리 후 거의 모든 상부 단계를 흡인하고 상단의 미엘린을 완전히 제거하도록 주의합니다(그림 1).
- 새 15 원심분리기 튜브로 인터페이스를 제거합니다. RPMI를 사용하여 부피를 10mL로 조정합니다.
- 500 x g에서 10분 동안 원심분리기 원심분리 후 상층액을 흡인합니다. ~200 μL의 유세포 분석(FSC) 완충액에 펠릿을 재현탁합니다.