출처: Schildge, S. et al. 마우스 피질 성상세포의 격리 및 배양. J. Vis. 특급 (2013년)
이 비디오에서는 새로 태어난 마우스에서 성상세포를 순수하게 제제하는 방법을 설명합니다.
방법 논문
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2023년 4월 30일
출처: Schildge, S. et al. 마우스 피질 성상세포의 격리 및 배양. J. Vis. 특급 (2013년)
이 비디오에서는 새로 태어난 마우스에서 성상세포를 순수하게 제제하는 방법을 설명합니다.
동물 모델과 관련된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 검토 위원회에서 검토되었습니다.
1. 혼합 피질 세포의 분리 및 도금
성상교세포 배양을 위한 혼합 피질 세포 분리는 P1에서 P4 마우스 새끼를 사용하여 수행할 수 있습니다. 적절한 성상세포 밀도를 달성하려면 T75 조직 배양 플라스크당 4개의 마우스 강아지 피질을 사용해야 합니다. 따라서 다음 프로토콜의 부피는 4마리의 새끼 마우스를 사용한 세포 준비에 대해 계산됩니다.
2. 풍부한 성상세포 배양 획득
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그림 1. 출생 후(P3) 마우스 피질 해부.A) 전뇌. B) 후각구와 소뇌를 제거한 후의 뇌. C) 뇌에서 피질의 판 같은 구조를 벗겨냄으로써 피질을 격리한다. D, D') 수막이 있는 복부 및 등쪽 부위의 피질(검은색 화살표는 수막 동맥을 나타냄). E) 수막이 없는 피질. 눈금자, 1.5mm.

그림 2. 분리 후 다른 시점에서의 분리된 혼합 피질 세포와 순수 성상 세포 배양에 대한 형태학적 개요.A) 혼합 피질 세포를 도금한 후 1일. 첫째, 성상세포(astrocyte)는 플라스크의 바닥(검은색 화살표)에 부착되어 있고 죽어...
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| 이름 | 회사 | 카탈로그 번호 | 댓글 |
|---|---|---|---|
| 성상세포 배양 배지 | |||
| DMEM 고포도당 | 생명 기술 | 31966-021 | |
| FBS 열 비활성화 | 생명 기술 | 제10082-147 | 최종 농도 : 10 % |
| 페니실린-스트렙토마이신 | 생명 기술 | 15140-122 | 최종 농도 : 1 % |
| 뇌 조직 소화를 위한 솔루션 | |||
| HBSS (하이브에스) | 생명 기술 | 제14170-088 | |
| 2.5% 트립신 | 생명 기술 | 제15090-046 | 최종 농도 : 0.25 % |
| 다른 | |||
| 70%(vol/vol) 에탄올 | 로스 | 9065.2 | |
| 폴리-D-라이신 | 밀리퍼 A-003 | A-003-E | |
| 물 | 파아 | 시즌 15-012 | 세포 배양 등급 |
| PBS (PBS) | 파아 | H15-002 | 세포 배양 등급 |
| 0.05% 트립신-EDTA | 생명 기술 | 제25300-062 | |
| 0.45μm 제균 필터 | 싸토리우스 | 16555 | |
| 3.5cm 페트리 접시 | BD 팔콘 | 353001 | |
| 15ml 팔콘 튜브 | BD 팔콘 | 352096 | |
| 50ml 팔콘 튜브 | BD 팔콘 | 352070 | |
| 75 cm2 조직 배양 플라스크 | BD 팔콘 | 353136 | |
| 겸자 미세함 | 뒤몽 | 2-1032년; 2-1033 | #3c; #5 |
| 집게 플랫 팁 | KLS 마틴 | 12-120-11 | |
| 13cm 수술용 가위 | 에스큘랍 | 기원전-140-R | |
| 실체현미경 | 라이카 | MZ7.5 | |
| 실체현미경 + 카메라 | 라이카 | MZ16F; 재질 보기 DFC320 | |
| 현미경 + 카메라 | 자이스; 카논 | 프리모 버트; 파워샷 A650 IS | |
| 원심 분리기 | 에펜도르프 | 5805000.017 | 원심분리기5804R |
| 오비탈 셰이커 | 써모 사이언티픽(Thermo Scientific | 쉬케 4450-1CE | 맥스Q 4450 |
| 수조 | 줄라보 | SW20; 37 °C |
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