출처: Marston, D. A. et al. 광견병 진단을 위한 Pan-lyssavirus 실시간 RT-PCR. J. Vis. 특급 (2019).
이 비디오는 실시간 역전사 PCR을 사용하여 바이러스 감염을 감지하는 정량적 방법을 보여줍니다. 역전사 단계는 RNA를 cDNA로 변환한 다음 PCR 주기를 통해 증폭합니다. 샘플에 바이러스 RNA가 존재한다는 것은 PCR에서 얻은 DNA의 증폭 및 해리 곡선을 분석하여 확인합니다.
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방법 논문
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2025년 7월 8일
출처: Marston, D. A. et al. 광견병 진단을 위한 Pan-lyssavirus 실시간 RT-PCR. J. Vis. 특급 (2019).
이 비디오는 실시간 역전사 PCR을 사용하여 바이러스 감염을 감지하는 정량적 방법을 보여줍니다. 역전사 단계는 RNA를 cDNA로 변환한 다음 PCR 주기를 통해 증폭합니다. 샘플에 바이러스 RNA가 존재한다는 것은 PCR에서 얻은 DNA의 증폭 및 해리 곡선을 분석하여 확인합니다.
1. 마이크로 볼륨 분광 광도계를 사용한 RNA 정량화
2. 종말점 감도를 결정하기 위한 RNA 희석 시리즈 준비
3. Real-time RT-PCR 반응 준비
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표 1: Pan-lyssavirus real-time RT-PCR 마스터 믹스 시약.
분 분 호 ...| 시약 | μL/반응 |
| 분자 등급의 물 | 7.55 |
| 2x 범용 RT PCR 반응 혼합물 | 10 |
| 프라이머 포워드 [20 μM] | 0.6 |
| 프라이머 리버스 [20 μM] | 0.6 |
| RT 효소 믹스 | 0.25 |
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| 이름 | 회사 | 카탈로그 번호 | 댓글 |
|---|---|---|---|
| Art Barrier 피펫 팁(다양한 크기) | 써모피셔 | 다양한 | |
| 원심 분리기 | 베크만 | 알레그라 21R | 96개의 웰 플레이트를 수용할 수 있는 로터가 필요합니다. 3.8 단계. |
| 원심분리기(마이크로) | 시그마 | ||
| Finnpipettes(0.5-1000 μL 분주용) | 써모피셔 | 다양한 | |
| iTaq Universal SYBR Green 원스텝 RT-PCR 키트 | 바이오 라드 | 제172-5150 | 검증된 경우 동등한 키트를 사용할 수 있습니다. |
| MX3000P 또는 MX3005P Real-Time PCR 시스템 | 스트라타젠 | 해당 사항 없음 | 검증된 경우 동등한 기계를 사용할 수 있습니다 |
| MicroAmp 반응 플레이트베이스 | 모든 적합한 | 튜브 스트립과 플레이트를 단단히 고정하는 데 사용됩니다. | |
| 광학적으로 투명한 플랫 클리어 스트립 (8) | ABgene | AB-0866 | |
| 완벽한 핏 프레임(튜브 스트립을 사용하는 경우) | 스트라타젠 | 해당 사항 없음 | 기계에만 해당됩니다. |
| 프라이머: 프라이머 세부 사항은 표 2를 참조하십시오. | 0.05μmole 규모의 HPLC 정제로 주문했습니다. | ||
| Thermo-Fast 96웰 플레이트, 비스킷 | ABgene | AB-600 | |
| Thermo-Fast 스트립 (8) 써모튜브 | ABgene | AB-0452 | |
| 소용돌이 기계 / 월리 믹서 | Fisons Scientific 장비 | SGP-202-010J | |
| 명시되지 않는 한 대체 장비를 사용할 수 있습니다 |