인간 참가자와 관련된 모든 절차는 인간 복지를 위한 제도적, 국가적, 국제적 지침에 따라 수행되었으며 지역 기관 검토 위원회의 검토를 거쳤습니다.
1. 말초혈액 단핵세포(PBMC)의 분리
- 시약의 준비
- PBS/EDTA: 인산염 완충 식염수(PBS)를 준비하고 2mM 에틸렌디아민테트라아세트산(EDTA)을 보충합니다. 이 용액은 0.2μm 필터를 통한 여과로 멸균합니다. 참고: PBS/EDTA는 4°C에서 보관하고 사용하기 전에 실온으로 데우십시오.
- 염색 완충액 준비: 인산염 완충 식염수(PBS) 보충제에 2% 소 태아 혈청(FBS), 10mM 4-(2-하이드록시에틸)-1-피페라진에탄술폰산(HEPES) 및 2mM 에틸렌디아민테트라아세트산(EDTA). 이 용액은 0.2μm 필터를 통한 여과로 멸균합니다.
- 블러드 콘에서 혈액 채취
메모: 혈구에는 병원에서 혈소판 채취 후 채취한 백혈구 성분이 포함되어 있습니다. 헤파린 또는 EDTA 튜브에 혈액이 채취된 경우 PBS로 혈액을 1:1 비율로 희석하고 1.3단계로 진행합니다. 버피 코트를 받으면 PBS가 함유된 버피 코트를 1:2 비율로 희석하고 1.3단계로 진행합니다.
- 혈액이 50ml 튜브로 흘러 나오도록 원뿔의 양쪽 끝을 자릅니다.
원뿔에는 일반적으로 10ml의 혈액이 들어 있습니다.
- PBS/EDTA 30ml가 함유된 뭉툭한 주사기를 사용하여 콘을 세척하고 50ml 튜브에 모읍니다.
- PBS/EDTA로 혈액을 최종 부피 80ml로 더 희석합니다.
- 밀도 원심분리에 의한 PBMC 분리
- 15ml Ficoll을 각각 4개의 신선한 50ml 튜브에 분주합니다.
- 25ml의 혈청학적 피펫을 사용하여 Ficoll 층에 희석된 혈액 20ml를 추가합니다. 50ml 튜브를 45도 각도로 잡고 계간을 방해하지 않도록 주의하십시오.
- 브레이크 없이 805 x g에서 튜브를 30분, 20°C 동안 원심분리합니다.
- 플라즈마 층을 제거하고 파스퇴르 피펫으로 플라즈마 층 바로 아래에있는 PBMC의 고리를 수집합니다. PBMC 튜브 4개를 50ml 튜브 2개로 결합합니다. PBMC 아래의 투명 층을 수집하지 않도록 주의하십시오.
- PBMC 튜브당 50ml의 최종 부피에 PBS/EDTA를 추가하고 브레이크를 사용하여 548 x g에서 20°C, 10분 동안 원심분리합니다.
- 상층액을 흡입하고 25ml의 염색 완충액으로 각 튜브에 펠릿을 재현탁시키고 하나의 50ml 튜브로 결합합니다.
- 367 x g의 원심분리기, 5분, 4°C 브레이크 포함.
- 상층액을 흡입하고 10ml의 염색 완충액으로 펠릿을 재현탁합니다.
2. 자기 분리에 의한 단핵구 농축
- 셀 번호 확인
- PBMC 세포 현탁액 20μl를 20μl의 트리판 블루와 혼합하여 세포분석기를 사용하여 살아있는 세포의 수를 계산합니다.
- 원심분리기 셀 서스펜션, 367 x g, 10분, 4°C 브레이크 포함.
- 상층액을 완전히 흡인하고 세포 펠렛을 염색 완충액 80μl당 107 세포의 농도로 재현탁합니다.
- 마그네틱 라벨링
- 107 cells당 20 μl의 CD14 microbeads를 첨가하고 잘 혼합한 후 2 - 8 °C에서 15분 동안 배양합니다.
- 107 셀당 1ml의 염색 완충액을 첨가하여 셀을 세척하고 367 x g에서 브레이크를 사용하여 10분, 4°C 동안 원심분리합니다.
- 상층액을 완전히 흡인하고 염색 완충액 50μl당 107 세포 농도로 세포 펠렛을 재현탁합니다.
- 자기 분리
- 최대 2 x 10총 8개의 셀에 중간 크기의 열을 사용합니다.
메모: 전체 셀의 수와 데이터시트에서 권장하는 CD14+ 셀의 수에 따라 적절한 열과 구분 기호를 선택합니다.
- 적절한 분리기의 자기장에 컬럼을 배치하고 500μl의 염색 완충액으로 헹궈 컬럼을 준비합니다.
- 세포 현탁액을 컬럼에 피펫팅하고 15ml 튜브로 컬럼을 통과하는 라벨링되지 않은 세포를 수집합니다.
- 컬럼 아래에 새 15ml 튜브를 교체하고 500μl의 염색 버퍼로 컬럼을 3회 세척합니다. 세척 사이에 새 염색 완충액을 추가하기 전에 컬럼 저장소가 비어 있는지 확인하십시오.
- 분리기에서 컬럼을 제거하고 새 15ml 튜브에 놓습니다.
- 얼룩 완충액 1ml를 컬럼에 피펫으로 싣습니다. 플런저(키트에 제공됨)를 컬럼 안으로 단단히 밀어 자기적으로 라벨링된 셀을 즉시 씻어냅니다.
- 새 컬럼에서 용출된 분획을 사용하여 2.3.2-2.3.6단계를 반복하여 CD14+ 세포의 순도를 높입니다. 비드는 3.2단계 동안 배양 중 세포에서 자동으로 방출됩니다.
3. 수지상 세포의 다른 활성화 상태에 대한 분화
- 시약 준비(모든 시약에서 내독소 수치가 0.1 EU/ml 미만이어야 함)
- 세포 배양 배지 준비: 10% 소 태아 혈청(FBS), 1% 비필수 아미노산(NEAA) 및 0.05mM 2-메르캅토에탄올(2ME)이 보충된 RPMI 1640. 이 용액은 0.2μm 필터를 통한 여과로 멸균합니다.
- 사이토카인 준비: 무균 조건에서 세포 배양 등급 물에서 IL-4 및 GM-CSF를 각각 0.25mg/ml의 농도로 재구성합니다. 사이토카인을 200μl 마이크로 원심분리기 튜브에 분취하고 -80°C에서 보관합니다.
- 비타민 D3 스톡을 준비합니다: 무균 조건에서 세포 배양 등급의 물에서 비타민 D3를 100mM의 농도로 재구성합니다. 비타민 D3를 1.5ml 마이크로 원심분리기 튜브에 넣고 -20°C에서 보관합니다.
- 덱사메타손 스톡을 준비합니다: 무균 조건에서 세포 배양 등급 물에서 덱사메타손을 10mM 농도로 재구성합니다. 디사메타손을 1.5ml 마이크로 원심분리기 튜브에 분취하고 -20°C에서 보관합니다.
- LPS 준비: 무균 조건에서 세포 배양 등급 물에서 지질다당류(LPS)를 1mg/ml의 농도로 재구성합니다. LPS를 1.5ml 마이크로 원심분리기 튜브에 분취하고 -20°C에서 보관합니다.
- 다양한 moDC 생성
- 6 웰 플레이트에 200ng/ml의 GM-CSF와 200ng/ml의 IL-4가 보충된 0.3 - 0.5 x 106/ml 세포 배양 배지의 농도로 CD14+ 단핵구 4세트를 시드합니다. 이것은 Day 0이고 각 6웰의 배지 부피는 2ml입니다.
- 조직 배양 인큐베이터에서 37°C에서 5% CO2로 세포를 배양합니다.
- 4일차에 배양액에서 배지 850μl를 제거하고 300 x g에서 4°C, 5분 동안 원심분리합니다.상층액을 흡입하고 2x(GM-CSF 200ng/ml 및 IL-4 200ng/ml)를 함유한 세포 배양 배지 1ml에 펠렛을 재현탁합니다. 이 세포 혼합물을 배양액에 다시 첨가합니다. GM-CSF 및 IL-4에 대해 첨가된 2x 농도는 1ml의 배지를 배양액에 다시 첨가할 때 1x가 됩니다.
- 5일차에 배지 ml 당 1μl의 비타민 D3 스톡과 1μl의 덱사메타손 스톡을 2세트에 추가하여 내성 moDC를 생성합니다. 비타민 D3의 최종 농도는 100nM이고 덱사메타손은 10nM입니다. 5일차에는 GM-CSF와 IL-4를 추가할 필요가 없습니다.
- 6일차에 GM-CSF 200ng/ml와 IL-4 200ng/ml를 모든 세트에 추가합니다.
- 6일차에 GM-CSF 및 IL-4만 처리한 세트 중 하나에 1μg/ml의 LPS를 추가하여 성숙한 moDC를 생성합니다.
- 6일차에 1μg/ml의 LPS를 1세트의 tolerogenic moDC에 추가하여 LPS 내성 moDC를 생성합니다.
- 유세포 분석 또는 기타 연구를 위해 PBS, EDTA로 배양 접시를 세척하여 7일차에 다양한 유형의 moDC를 수확합니다. 비부착성 세포만 수확됩니다. 미성숙 moDC, 성숙 moDC, 내성 moDC 및 LPS 내성 DC에 대한 CD14+ 단핵구의 수율 비율은 각각 약 90%, 50%, 60% 및 60%이며 헌혈자와 FBS lot에 따라 다릅니다.