출처: Tsvilovskyy, V., et al. Ca2+ 이미징 및 탈과립 분석을 통한 복막 유래 비만 세포의 분리 및 기능적 특성화. J. Vis. 특급 (2018).
이 비디오는 성체 마우스의 복막강에서 성숙한 결합 조직형 비만 세포를 분리하기 위한 복막 세척 방법을 보여줍니다. 복막강에서 1차 면역 세포의 혼합물을 분리한 후, 적절한 배양 조건에서 비만 세포의 선택적 증식을 수행합니다.
방법 논문
1.8K 조회수
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2025년 7월 8일
출처: Tsvilovskyy, V., et al. Ca2+ 이미징 및 탈과립 분석을 통한 복막 유래 비만 세포의 분리 및 기능적 특성화. J. Vis. 특급 (2018).
이 비디오는 성체 마우스의 복막강에서 성숙한 결합 조직형 비만 세포를 분리하기 위한 복막 세척 방법을 보여줍니다. 복막강에서 1차 면역 세포의 혼합물을 분리한 후, 적절한 배양 조건에서 비만 세포의 선택적 증식을 수행합니다.
동물 모델과 관련된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 검토 위원회에서 검토되었습니다.
1. 복강내 세척에 의한 PMC 분리
표 1: 1단계 재료.
개 개 개 개 개 분 세 세 세 분 분 세 의 분 세 분 분 분| 1 | 얼음 |
| 2 | 10mL 주사기 |
| 3 | 바늘 27g |
| 4 | 바늘 20g |
| 5 | 스티로폼 블록 및 핀 |
| 6 | 수집 튜브(50mL 플라스틱 원심분리기 튜브) |
| 7 | 70% 에탄올 |
| 8 | RPMI Medium (사전 냉각 후 얼음에 보관) |
| 9 | PMC 배지: RPMI 배지 + 20% FCS(송아지 태아 혈청) + 1% 페니실린 스트렙토마이신 용액(Pen-Strep) |
| 10 | Dulbecco의 인산염 완충 식염수 - DPBS (Ca2+ 및 Mg2+ 제외) |
| 11 | 문화 플라스크 (25cm) |
| 12 | 성장 인자 원액(IL-3: 1μg/μL; SCF: 2.5 μg/mL) |
| 13 | 혈청학적 피펫(10mL) |
| 14 | 피펫 팁 멸균 (20–200 μL) |
| 15 | 혈구계 |
| 16 | 벤치 원심분리기 |
| 17 | 가위와 집게 |
| 18 | 마우스용 CO2 챔버 |
| 19 | 개방형 멸균 후드 |
| 20 | 폐쇄형 멸균 후드 |
| 21 | 세포 배양기(37°C 및 5% CO2) |
| 22 | 이송 피펫(20–200 μL) |
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| 이름 | 회사 | 카탈로그 번호 | 댓글 |
|---|---|---|---|
| RPMI 배지 | 써모 사이언티픽(Thermo Scientific | 21875034 | |
| 디피에스 | 시그마-알드리치 | 14190144 | |
| 증권 시세 | 써모 사이언티픽(Thermo Scientific | R92157 | |
| 일리노이 -3 | R&D 시스템 | 403 밀리리터 | |
| 증권 시세 | 써모 사이언티픽(Thermo Scientific | PMC2115 | |
| 펜스트렙 | 써모 사이언티픽(Thermo Scientific | 15140122 | |
| 문화 플라스크 (25cm) | Greiner 바이오 원 | 69160 | |
| 15 mL 플라스틱 원심분리기 튜브 | 사르슈테트 | 6,25,54,502 | |
| 벤치 원심분리기 | 헤레우스 | 메가푸지 1.0R |
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