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방법 논문

Effector T 림프구를 인간 뇌종양을 운반하는 마우스에 전달

845 조회수

2025년 7월 8일

이 논문에서

초록

출처: Jarry, U., et al. Stereotactic Adoptive Transfer of Cytotoxic Immune Cells in Murine Models of Orthotopic Human Glioblastoma Multiforme Xenografts. J. Vis. 특급. (2018).

이 비디오는 인간 뇌종양을 운반하는 쥐 모델에 인간 효과기 T 림프구를 투여하는 입체 주사 기술을 보여줍니다. 종양이 있는 마취된 마우스를 정위 프레임에 배치하고 두개골의 주입 위치에 버 구멍을 만들면 종양 부위에 effector T 림프구를 주입합니다.

프로토콜

검체 채취와 관련된 모든 절차는 연구소의 IRB 지침에 따라 수행되었습니다. 동물 모델과 관련된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 검토 위원회에서 검토되었습니다.

1. 세포독성 효과기 T 림프구의 비특이적 확장

  1. 35 Gy에서 공급세포를 준비하고 조사합니다. 2 x 105 - 4 x 105 effector cell의 자극을 위해 3개의 뚜렷한 건강한 donor로부터 10 x 106 peripheral-blood mononuclear cells (PBMC) 및 1 x 106 B-lymphoblastoid cell line (BLCLs)을 준비합니다.
  2. 10% 열 비활성화 태아 송아지 혈청(FCS), 2mM L-글루타민, 페니실린(100 IU/mL) 및 스트렙토마이신(0.1 μg/mL) 및 300 IU/mL 재조합 인터루킨-2(IL-2)가 보충된 15mL의 Roswell Park Memorial Institute 배지(RPMI)에 공급세포와 효과기 세포를 모두 재현탁합니다.
  3. 최종 농도 1μg/mL에서 파이토헤마글루티닌(PHA-L)을 추가하고, 조심스럽게 혼합한 후 96웰 U-바닥 플레이트에 웰당 150μL의 세포 현탁액을 분배합니다.
  4. 가습 된 분위기에서 37 ° C와 5 % CO2로 배양하십시오.
  5. 배양 웰에 큰 세포 덩어리가 형성될 때까지 매일 플레이트를 확인합니다(~7일차).
  6. 신선한 배양 배지에서 1 x 106 cells/mL의 배양 플라스크로 세포를 옮깁니다.
  7. 카운팅(주당 2회)을 통해 총 세포 수를 측정하고 신선한 배양 배지에서 1 x 106 cells/mL로 유지합니다.
    메모: 효과기 면역 세포는 휴지 상태(보통 초기 증폭 자극 후 3주)에서 치료 투여를 받을 준비가 되어 있어야 합니다. 이러한 effector cell의 순도와 반응성은 in vivo 주입 전에 확인해야 합니다(예: in vitro assay).

2. 수술 전 이펙터 세포 준비

  1. 효과기 세포 수를 확인한 후 원심분리(300 x g에서 5분 동안)로 50mL 튜브에 효과기 세포를 수집합니다.
    메모: 손실을 보상하려면 과도한 셀(: 50 x 106)을 준비합니다.
  2. 상등액을 조심스럽게 제거하고 15mL의 멸균 PBS에 세포를 재현탁시키고 300 x g에서 5분 동안 원심분리하여 세척을 수행합니다.
  3. 상등액을 신중하고 완전하게 제거한 다음 1mL의 멸균 PBS에 세포 펠릿을 재현탁합니다.
  4. 재부유 세포를 1.5mL 마이크로튜브에 옮겨 300 x g에서 5분 동안 원심분리합니다.
  5. 천천히 피펫팅하여 상층액을 조심스럽게 완전히 제거합니다.
  6. 세포 펠릿을 마우스당 8μL의 멸균 PBS에 재현탁합니다.
    메모: 이것은 중요한 단계입니다.
  7. 마이크로피펫을 사용하여 세포 현탁액의 부피를 측정합니다. 필요한 경우 멸균 PBS(투여량당 15μL의 PBS에 20 x 106개 세포)를 추가하고 조심스럽게 혼합합니다.
  8. 마이크로피펫을 사용하여 마우스당 최종 부피가 15 - 20 μL(반드시 20 μL< 측정)인지 확인합니다.
  9. 정위 주입이 될 때까지 세포를 얼음 위에 두십시오.
    메모: 3시간 이상의 시점은 테스트되지 않았습니다.

3. 정위 주입

  1. 장비 설정
    1. 두개내 주사의 정확성(: 주사기 크기, 원하는 부피 및 주사 속도)을 보장하기 위해 제조업체의 지침에 따라 소동물 정위 프레임을 조립하고 보정합니다.
      메모: 느린 주입 속도가 권장됩니다(, 2 - 3 μL/분).
    2. 미생물 안전 캐비닛(MSC) 아래에 재료를 설치하여 기기의 멸균 상태를 유지하고 마우스가 감염되지 않도록 보호합니다.
      메모: "등온 블록"을 37 °C의 수조에 놓습니다. 이 시스템은 수술 중 생쥐의 저체온증을 제한합니다. 시술 후 관리에 필요한 발열 패드는 지속적인 온도 모니터링 중에 사용해야 합니다.
  2. 수술 전 동물 준비
    1. 마우스 체중의 10μL/g에서 케타민(10mg/mL)과 자일라진(0.1mg/mL)을 복강내 주사로 마우스
    2. 에 마취합니다.
    3. 동물의 완전한 마취 및 진통제를 확인하기 위해 발가락 꼬집음 테스트를 수행합니다.
      메모: 모든 움직임은 깊은 진통이 없다는 표시이며, 그런 경우 작업을 반복하기 전에 몇 분이 더 필요합니다.
    4. 마우스가 제대로 마취되면 가위를 사용하여 수술 부위(두 귀 사이, 코까지)의 털을 제거합니다.
  3. 수술 전 세포 준비
    1. 세포가 뭉치는 것을 방지하기 위해 각 주입 전에 피펫으로(여러 번) 세포를 조심스럽게 재현탁합니다.
    2. 기포 흡입을 방지하기 위해 필요한 세포 현탁액(15 - 20 μL)을 22-G 마이크로 주사기로 조심스럽게 끌어옵니다.
      메모: 마이크로주사기에 대한 이 세포 로딩 단계는 주입된 부피의 차이를 최소화하는 데 중요합니다. 시술 사이에 각 개별 주입에 대해 세포를 재장전하여 세포 응집을 방지하고 코호트에서 균일한 수의 effector 세포 투여를 보장합니다.
    3. 그런 다음 주사기를 개조된 주사기 펌프에 넣습니다.
  4. 절차적 관리
    1. 포비돈-요오드 5% 용액에 적신 면봉으로 수술 부위를 최소 3회 소독합니다.
    2. 각막이 건조해지는 것을 방지하기 위해 쥐의 눈에 윤활 안과 연고를 바르십시오.
    3. 마취된 마우스를 멸균 플라스틱 랩으로 덮인 따뜻한 등온 블록에 정위 프레임에 놓고 수술 중 마우스의 온도를 유지하고 사망률을 제한합니다.
      메모: 시술 중 적절한 호흡 흐름을 보장하기 위해 마우스의 코와 이빨은 이빨 바 위에 적절하게 위치해야 합니다.
    4. 마우스가 치아 막대 위에 위치하면 마우스의 귀 아래에 이어바를 단단히 조여 머리를 고정시킵니다.
      메모: 고막을 손상시키거나 호흡을 손상시키지 않도록 주의하십시오.
    5. 멸균 가위로 두개골 상부를 따라 전방에서 후방으로 1 - 2cm의 정중선 시상 피부를 절개하여 두개골을 노출시킵니다.
    6. 주사 전에 정위 국소화를 위한 랜드마크 역할을 하기 위해 시상 봉합사와 관상 봉합사(Bregma)의 교차점을 식별합니다(그림 1 참조).
    7. 이 지점 위에 마이크로 주사기를 놓습니다.
    8. 마이크로 주사기를 브레그마의 오른쪽 측면 2mm, 전방 0.5mm로 이동합니다.
    9. 마이크로 드릴을 사용하여 미리 결정된 좌표에서 멸균 드릴 비트로 두개골에 작은 구멍을 만듭니다. 뇌의 외상성 손상을 피하기 위해 피상적인 상태를 유지하도록 주의하십시오.
      메모: 이 프로토콜에서는 확립된 종양 내에 면역 세포를 주입했습니다(종양 세포 주입 후 1주일). 피부를 다시 열어야 하며(흉터) 종양 세포 이식에 사용된 것과 동일한 좌표에서 주사를 수행합니다(구멍은 일반적으로 주사 후 최대 2주까지 여전히 존재함). 뇌 실질(brain parenchyma)에 종양(tumor)과 효과기(effector) 세포를 주입하기 위한 좌표가 선택되었다.
  5. 면역효과세포(Immune effector cell) 주입
    1. 뚫린 구멍에 마이크로 주사기를 조심스럽게 삽입하고 천천히 움직여 경막에서 바늘을 3mm 앞으로 내민 다음 0.5mm 뒤로 0.5mm 후진하여 최종 깊이 2.5mm를 주입한 후 이펙터 세포를 주입합니다.
    2. 2 - 3 μL/min의 속도로 effector cell injection을 실행하고 주입 시간 내내 마우스를 모니터링합니다.
    3. 주입이 완료되면 바늘을 1mm만 빼내고 마이크로 주사기를 1분 더 제자리에 유지한 후 주입 부위에서 누출을 방지하기 위해 마이크로 주사기를 천천히 완전히 빼냅니다.
      메모: 정위 장치에서 동물을 제거한 후 향후 실험을 위해 주입 장비를 즉시 청소하십시오.
  6. 수술 후 관리 및 마우스 추적 관찰
    1. 정위 프레임에서 동물을 제거하고 즉시 절개 부위에 포비돈 요오드 5% 용액을 바르고 적절한 외과 봉합사로 피부를 봉합합니다.
    2. 2% 리도카인 젤을 상처에 직접 바르고 시술 후 진통제를 위해 피하 주사로 0.15μg/g의 부프레노르핀을 투여합니다.
    3. 적절한 마우스 체온을 유지하고 저체온증을 방지하기 위해 마취된 마우스를 37°C로 설정된 가열 패드 위의 케이지에 다시 놓습니다.
      메모: 별도의 하우징은 필요하지 않습니다.
    4. 마우스가 마취에서 완전히 회복될 때까지 모니터링하고 수용실로 옮깁니다.
      메모: 현재까지 이 프로토콜은 예상치 못한 합병증이 거의 발생하지 않았기 때문에(주사된 마우스의 5% <) 잘 지원되고 있습니다.
    5. 매일 생쥐를 모니터링하고 건강 저하 징후(: 구부정한 자세, 이동성 감소, 엎드린 자세 또는 현저한 체중 감소[≥ 15%])가 관찰되면 안락사시킵니다.

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결과

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그림 1: 쥐 두개골의 주요 해부학적 랜드마크 사진. 여기에는 시상(빨간색 선) 및 관상동맥(파란색 선) 봉합사와 주사 부위의 방향을 잡는 데 사용되는 교차점(Bregma)이 포함됩니다. 축척 막대가 표시됩니다.

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공개 사항

선언된 이해 상충이 없습니다.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
PBMC3명의 다른 건강한 기증자로부터
BLCL3명의 다른 기부자로부터
로스웰 파크 메모리얼 인스티튜트 미디엄 (RPMI)지브코31870-025
증권 시세더처S1810-500
L-글루타민지브코제25030-024
페니실린/스트렙토마이신지브코15140-122
일리노이 -2노바티스프롤루킨
PHA-엘시그마엘4144
입체식 프레임Stoelting Co.51600
입체식 프레임을 위한 마우스 어댑테이터Stoelting Co.51624
마이크로 주사기 펌프 인젝터WPI (영어)UMP3-4 (영어
NanoFil 주사기WPI (영어)NF34BV-2
NSG 마우스찰스 리버NSGSSFE07S
케타민메리알이말젠 1000
자일라진바이엘롬푸르 2%
가위WPI (영어)201758
집게WPI (영어)501215
옴니드릴 115/230VWPI (영어)503598
빅릴 4-0에티콘VCP397H
자일로카인아스트라제네카3634461
표시기 시리즈 호 년 년 년 )

태그

정위 주입마우스 교모세포종 모델인간 뇌종양버홀 생성마이크로시린지 주입세포 현탁액 준비마취된 마우스 배치바늘 회수 기술수술 후 회복 관리