면역요법

이 영상은 불변 자연적인 살해 T 세포, 일컬어 iNKT 세포를 고립시키기를 위한 방법을 설명합니다. 절차는 비장에 있는 iNKT 세포의 활성화 그리고 증식을 자극하기 위하여 합성 당지질을 쥐로 주입하는 것으로 시작됩니다. 연속적으로, 단 하나 세포 현탁액은 비장에서 준비되고 형광단으로 레테르를 붙인 iNKT 세포 인식 복합물로 배양되고, 자석 구슬 근거한 별거가 뒤이어, iNKT 세포를 고립시키기 위하여 배양됩니다.

이 비디오는 키메라 항원 수용체(CAR) T 세포를 생체 외에서 제조하는 기술을 보여줍니다. 인간 T 세포는 인터루킨-2(IL-2)가 보충된 배지와 함께 항-CD3 및 항-CD28 항체로 코팅된 자기 비드로 배양되어 T 세포의 활성화 및 증식을 유도합니다. 형질전환 렌티바이러스 벡터가 도입되어 형질전환 RNA가 숙주 게놈에 통합되고 전이유전자를 발현할 수 있습니다. 그 결과 형질도입된 T 세포가 표면에서 키메라 항원 수용체(CAR)를 발현합니다. T 세포는 CAR 발현 및 동결 보존을 평가하기 위해 정의된 시점에 수확됩니다.

이 비디오는 자연살해(NK) 세포에서 양이온 고분자 매개 바이러스 전달에 대한 분석을 보여줍니다. 세포는 형광 단백질을 인코딩하는 형질전환 렌티바이러스 벡터로 배양됩니다. 양이온성 폴리머를 추가하면 바이러스가 세포에 부착하고 RNA를 숙주 게놈에 통합하여 형광 단백질을 발현할 수 있습니다. 형광은 형질주입의 폴리머 유도 향상을 평가하기 위해 정량화됩니다.

이 동영상은 녹색 형광 단백질을 인코딩하는 변형된 mRNA로 일차 대식세포를 transfection하는 과정을 보여줍니다. 면역원성을 감소시키고 안정성을 개선하도록 설계된 이러한 변형된 mRNA는 형광 현미경 검사를 통해 확인된 녹색 형광 단백질의 성공적인 transfection과 후속 발현을 보장합니다.

이 동영상은 근적외선 광면역요법을 통해 혼합 3D 세포 배양에서 특정 세포를 선택적으로 제거하는 기술을 보여줍니다. 이 방법에서는 NIR 광흡수제와 접합된 항체를 사용하여 표적 세포를 정확하게 식별합니다. 이후 적외선을 조사하면 세포 사멸을 유도하여 3D 배양에서 표적 세포를 효과적으로 제거할 수 있습니다.

이 동영상은 자가포식 플럭스를 방해하는 작은 간섭 RNA(siRNA) 기반 기술을 보여줍니다. FIP200 mRNA를 표적으로 하는 siRNA는 전기천공법을 사용하여 단핵구 유래 미성숙 수지상 세포(iDC)에 도입되어 FIP200 발현을 knockdown하고 자가포식을 통해 핵 lamin 파괴를 억제합니다. 단순 헤르페스 바이러스(HSV)를 추가하면 자가포식 플럭스(autophagic flux)를 통한 라민 파괴가 없기 때문에 바이러스 자손의 핵 유출이 억제됩니다.

이 비디오는 인간 유도 만능 줄기 세포(iPSC) 유래 CD8+ T 세포를 사용하여 마우스에서 B형 간염 바이러스(HBV) 복제를 억제하는 분석을 보여줍니다. HBV 특이적 수용체로 조작된 이 T 세포는 형질전환 마우스로 전달됩니다. 그런 다음 복제 가능한 HBV 게놈 플라스미드를 간에 직접 주입하여 바이러스 DNA 흡수를 가능하게 합니다. 바이러스 항원이 하이브리드 MHC-I 분자에 의해 발현되고 제시되면 조작된 T 세포는 이러한 복합체를 인식하고 결합합니다. 이는 세포독성 분자의 방출을 유발하여 HBV에 감염된 간 세포를 파괴하고 바이러스 복제를 억제합니다.

이 비디오는 종양 항원 특이적 키메라 항원 수용체(CAR) T 세포의 생체 외 생성 기술을 보여줍니다. 형질전환 RNA를 운반하는 레트로바이러스 벡터는 인터루킨-2가 보충된 배지에서 비장 세포와 혼합되어 T 세포의 생존과 증식을 촉진합니다. 그런 다음 혼합물을 재조합 인간 피브로넥틴 단편으로 코팅된 플레이트로 옮기고 원심분리하여 바이러스와 세포의 융합을 촉진함으로써 RNA가 숙주 게놈에 통합되고 종양 항원을 표적으로 하는 표면 결합 CAR을 생산할 수 있도록 합니다.

이 비디오는 CRISPR-Cas9 시스템을 통해 유전자 변형 CAR T 세포를 만드는 과정을 간략하게 설명합니다. T 세포를 CRISPR과 CAR 렌티바이러스에 감염시키면 표적 유전자가 변형되고 키메라 항원 수용체(CAR)가 합성되어 궁극적으로 유전적으로 변형된 CAR T 세포가 형성됩니다.

이 동영상은 CRISPR-Cas9 기술을 사용하여 인간 T 세포에서 유전자 편집을 수행하는 방법을 보여줍니다. 1차 CD4+ 및 CD8+ T 세포의 혼합물은 CRISPR-Cas9 리보핵단백질 복합체와 결합되어 knockout을 위한 특정 유전자를 표적으로 합니다. 전기천공법(electroporation) 시 sgRNA는 Cas9을 타겟 DNA 염기서열로 유도하여 정밀한 절단을 생성합니다. 그런 다음 이러한 절단은 세포의 비상동 말단 결합 메커니즘에 의해 복구되어 유전자 녹아웃으로 이어집니다.

이 비디오는 1차 자연살해(NK) 세포의 Cas9 리보핵단백질 매개 유전자 변형 기술을 보여줍니다. CRISPR RNA(crRNA)와 trans-activating crRNA(tracrRNA)를 염기쌍으로 하여 형성된 가이드 RNA(gRNA)에 결합된 Cas9 엔도뉴클레아제로 구성된 Cas9 리보핵단백질은 전기천공법을 통해 1차 자연살해세포에 도입됩니다. 리보핵단백질은 표적 부위에서 숙주 DNA를 표적화하고 절단하여 세포 복구 기계를 통한 표적 유전자의 변형을 통해 유전자 녹아웃을 유도합니다.

이 비디오는 형광 단백질을 발현하는 3D 종양 스페로이드에 대한 CAR T 세포의 세포 독성 효과를 평가하는 체외 분석을 보여줍니다. 이 평가는 CAR T 세포와 상호 작용한 후 세포사멸 암세포의 외부 소엽에 노출된 포스파티딜세린 잔기에 결합하는 Annexin V 적색 형광 프로브를 사용합니다. 프로브에서 방출되는 적색 형광은 이러한 세포를 녹색 형광을 방출하는 건강한 세포와 구별하는 데 도움이 됩니다.

이 동영상은 3차원 종양 스페로이드와 T 세포 공동 배양을 확립하는 방법을 보여줍니다. 종양 스페로이드를 함유하는 마이크로웰이 있는 아가로스 캐스트를 준비한 후 T 세포를 첨가합니다. 배양 후 이 설정을 통해 통제된 3차원 환경에서 T 세포와 종양 스페로이드의 상호 작용을 연구할 수 있습니다.

이 비디오는 키메라 항원 수용체(CAR) T 세포 활성을 검증하기 위한 체외 분석을 보여줍니다. CD19 항원을 발현하는 B세포 림프종 세포와 세포질 루시페라아제를 CD19 특이적 CAR T 세포와 공동 배양합니다. 종양의 CD19에 대한 CAR 결합은 CAR T 세포가 종양 세포 독성을 유발하는 사이토카인과 독소를 방출하도록 유도합니다. CAR T 세포 활성은 종양 세포에서 방출된 사이토카인과 감소된 루시페라제 매개 생물 발광을 정량화하여 평가합니다.

이 비디오는 표적 암세포에 대한 자연살해(NK) 세포의 세포독성을 결정하기 위해 젖산 탈수소효소 방출 분석을 수행하는 방법을 보여줍니다. 이 분석은 형성된 붉은 색 생성물의 흡광도를 측정하여 암세포에서 세포질 젖산 탈수소효소의 방출을 정량화합니다.

이 동영상은 레트로바이러스 형질도입을 통해 항원 특이적 키메라 항원 수용체(CAR) T 세포를 생성하는 기술을 보여줍니다. 활성화된 쥐 CD8+ T 세포를 재조합 피브로넥틴 단편으로 코팅된 마이크로웰 플레이트에 첨가합니다. 그런 다음 항원 특이적 키메라 항원 수용체(CAR)를 인코딩하는 형질전환 RNA를 포함하는 레트로바이러스 벡터를 도입하고 플레이트를 원심분리하여 형질도입을 용이하게 합니다. 배양 후, 형질도입된 세포는 표면에 항원 특이적 CAR을 발현합니다.

이 동영상은 골수 줄기세포를 멤브레인 필터에 빠르게 통과시켜 원형질막 소포를 생성하는 방법을 보여줍니다. 이러한 PMV는 세포질 대체 요법의 잠재력을 보여줍니다.

이 비디오는 항혈관신생 종양 관련 호중구(TAN)를 생성하는 분석을 보여줍니다. pro-angiogenic TAN을 포함하는 쥐 흑색종 종양을 채취하면 형광 활성화 세포 분류(FACS)를 사용하여 단일 세포를 분리하고 NIPOMAMIDE phosphoribosyl transferase(NAMPT) 억제제로 처리하여 혈관 신생을 자극하는 능력을 줄입니다.

이 비디오는 β-글루칸을 사용하여 반응성 산소 종인 과산화물 라디칼 생성을 위해 미세아교세포를 활성화하는 체외 분석을 보여줍니다. 뇌암세포에서 생성된 반응성 산화물질은 종양세포 증식을 능동적으로 억제하고 세포의 사멸을 유도합니다.

이 비디오는 고염 처리된 항원 제시 수지상 세포(DC)를 마우스로 입양하는 절차를 보여줍니다. 쥐 CD11c+ 수지상 세포(DC)는 다량의 나트륨을 함유한 배지에 노출되어 세포에서 이소레부글란딘(IsoLG)-단백질 부가물을 형성합니다. 이러한 부가물은 신생항원 역할을 하며 DC 표면에 표시됩니다. 고염 처리된 세포는 입양 세포 전달을 통해 마우스에 주입됩니다.

이 동영상은 종양 항원 특이적 유도만능줄기세포(iPSC) 유래 CD8αβ+ T 세포를 생성하는 분석을 보여줍니다. 종양 항원 특이적 iPSC는 기질 세포 단층에서 성장하며 조혈전구세포(HPC)로 분화됩니다. HPC는 분화 배지를 사용하여 CD4+, CD8+, 이중 양성 T 세포로 분화됩니다. 그런 다음 이러한 세포를 자극하여 CD8을 발현하는 단일 양성 T 세포를 생성합니다.

이 비디오는 루시페라아제를 발현하는 종양 세포를 나타내는 공학적 마우스 모델에서 폐암을 치료하기 위한 근적외선 광면역요법 기술을 보여줍니다. 종양 세포의 특정 항원에 결합하는 항체-광감작 접합체(APC)를 주입하면 마우스는 근적외선에 노출되어 APC에 광화학적 변화를 유도하고 결합된 종양 세포의 괴사를 유발합니다. 치료의 효과는 루시페라제 기질인 루시페린을 주입하고 종양 성장과 상관관계가 있는 시간 경과에 따른 생물 발광을 측정하여 모니터링됩니다.

이 비디오는 인간 면역 체계(HIS) 마우스를 생성하는 기술을 보여줍니다. CD34+ 조혈모세포(HSC)는 항체로 코팅된 마그네틱 비드를 사용하여 인간 제대혈 버피 코트 세포에서 분리됩니다. CD34+ HSC는 사이토카인이 풍부하고 동결 보존된 성장 배지에서 확장됩니다. 마지막으로, 해동된 HSC를 면역결핍 새끼 마우스에 주입하여 HIS 마우스 모델을 확립합니다.

이 비디오는 불완전하게 절제된 피하 종양이 있는 마우스 모델에서 보조 요법 또는 추가 요법을 테스트하는 방법을 보여줍니다. 부분적으로 종양이 절제된 마우스는 T 조절 세포의 항세포독성 단백질을 표적으로 하는 항체로 치료되어 잠재적으로 종양 재성장을 줄이고 효과적인 보조 요법을 제안합니다.

이 비디오는 인간 면역결핍 바이러스-1(HIV-1)에 감염된 인간화 마우스 모델에서 경구용 복합 항레트로바이러스 요법(구강 cART)의 효과를 평가하기 위한 분석을 보여줍니다. 뉴클레오시드 역전사효소 억제제(nucleoside reverse transcriptase inhibitors) 및 인테그라제 가닥 전달 억제제(integrase strand transfer inhibitors)를 포함하여 HIV-1을 표적으로 하는 약물을 영양 보충제 및 항생제와 함께 투여합니다. HIV-1에 감염된 인간화 마우스가 이 혼합물을 섭취한 후, 마우스에 대한 주기적인 검사를 통해 바이러스 복제의 효과적인 억제를 평가합니다.

이 비디오는 호중구 반응이 억제된 면역 결핍 마우스에 인간 피부를 이식하는 방법을 보여줍니다. 이 방법은 인간의 분할 두께 피부를 마우스의 이식 침대에 적용하고 밀봉한 다음 복구를 위해 덮는 것입니다. 결국 인간의 피부가 쥐의 피부에 달라붙어 혈관 형성과 순환을 확립하여 성공적인 피부 이종 이식을 가능하게 합니다.

이 비디오는 인간화된 이종 이식 마우스 모델을 생성하기 위한 분석을 보여줍니다. 면역이 저하된 마우스에게 시클로포스파마이드를 주사하여 면역 세포를 고갈시킵니다. 하이드로겔에서 인간 말초 혈액 단핵 세포(PBMC)와 혼합된 환자 유래 종양 세포를 마우스에 피하 주입하여 T 세포가 침투하는 종양을 형성합니다.

이 비디오는 면역 치료제의 투여를 용이하게 하기 위해 뇌종양 마우스 모델에서 두개내 캐뉼라 이식 절차를 제시합니다. 종양 미세환경에서 글리피칸-2 특이적 키메라 항원 수용체 T 세포의 전달은 T 세포 활성화를 유발하여 종양 용해 및 종양 퇴행을 초래합니다.

이 비디오는 간세포 암종에 대한 치료 접근법으로 간 동맥 주사를 통한 종양 용해성 바이러스의 국소 전달을 보여줍니다. 이러한 바이러스는 종양 세포에서 선택적으로 복제되어 세포 용해를 유도하고 종양 세포 관련 항원을 방출합니다. 이 과정은 면역원성 세포 사멸을 유발하여 항종양 반응을 유도합니다.

이 비디오는 마우스 방광암 모델에서 Helicobacter pylori 호중구 활성화 단백질(HP-NAP)의 항종양 활성을 평가하는 기술을 보여줍니다. HP-NAP는 종양세포 호중구와 상호 작용하여 전염증성 사이토카인을 생성함으로써 미접촉 T 세포를 1형 T helper(Th1) 및 1형 세포독성(Tc1) T 세포 표현형으로 분화시킵니다. Th1 및 Tc1 세포는 인터페론-감마를 분비하여 종양 혈관 신생을 억제하고 세포독성 T 세포 매개 종양 파괴를 촉진하여 종양 부피를 감소시킵니다.

이 비디오는 마우스의 자가면역 관절염에 대한 세포 기반 치료법을 보여줍니다. 오브알부민 특이적 수용체를 발현하는 iPSC 유래 T 조절 세포에 보조제에서 유화된 메틸화된 소 혈청 알부민(mBSA)을 주입합니다. 쥐 항원제시세포(APC)는 mBSA를 처리하여 T세포에 전달하여 T세포가 활성화되고 무릎 관절의 활액막으로 이동하도록 유도합니다. 후속 주사에는 왼쪽 무릎에 mBSA만 투여하고 오른쪽 무릎에 mBSA와 오브알부민을 조합하여 투여합니다. 왼쪽 무릎에서는 mBSA에 대한 면역 반응이 관절염을 유발하는 반면, 오른쪽 무릎에서는 오브알부민과 상호 작용하는 T 조절 세포가 염증을 완화하여 관절염 증상을 개선합니다.

이 비디오는 인간 뇌종양을 운반하는 쥐 모델에 인간 효과기 T 림프구를 투여하는 입체 주사 기술을 보여줍니다. 종양이 있는 마취된 마우스를 정위 프레임에 배치하고 두개골의 주입 위치에 버 구멍을 만들면 종양 부위에 effector T 림프구를 주입합니다.

이 비디오는 기능적인 인간 면역 체계와 안정적인 생착 인간과 유사한 장내 미생물 군집을 가진 이중 인간화 뼈 BLT(골수, 간 및 흉선) 마우스를 생성하는 방법을 보여줍니다.

이 비디오는 약물 에어로졸의 생성과 에어로졸 발생기가 장착된 흡입 장치를 사용하여 이러한 에어로졸을 마우스에 코로만 전달하는 것을 보여줍니다. 마우스는 코 전용 억제기에 구속되고 흡입 장치에 연결되어 약물을 마우스의 비강으로 직접 전달합니다. 그 후, 약물은 기관을 통과하여 폐로 들어갑니다.

이 비디오는 동종면역 유도 혈관 거부 반응을 연구하기 위해 마우스 대동맥 삽입 모델을 생성하는 방법을 보여줍니다. 마취된 기증자 마우스를 앙와위 자세로 눕힌 후, 하부 대동맥(IAA)을 주변 구조와 조심스럽게 분리합니다. 분지 혈관이 결찰되고 IAA의 양쪽 끝이 고정되어 절제 전에 혈류를 방지합니다. 그 후, 공여자의 IAA를 동종 수용 마우스에 이식하고, 문합을 통해 혈류를 회복시켜 동종면역에 의한 혈관 거부 반응을 조사합니다.

이 비디오는 혈관화된 이종성 비장 이식의 마우스 모델을 생성하는 수술 방법을 보여줍니다. 마취된 기증자 마우스의 복강을 외과적으로 열어 비장을 제거합니다. 하대정맥(inferior vena cava)과 대동맥(infrarenal aorata)을 확인하고, 요추 가지를 결찰하고, 선천성 기증자 마우스(congenic donor mouse)의 비장을 이종(heterotopic transplant)으로 이식할 수 있는 구멍을 만듭니다. 혈관 문합을 완료하고 이식된 비장으로의 혈류를 회복시키면 절개 부위를 봉합하고 마우스의 회복을 모니터링합니다.

이 비디오는 대뇌 피질 탈수초화가 널리 퍼진 쥐 모델을 생성하는 방법을 보여줍니다. 이것은 재조합 미엘린 수초 단백질로 준비된 쥐에 전염증성 사이토카인을 주입하여 혈액-뇌 장벽을 파괴하는 것을 포함합니다. 이 과정은 면역 세포의 침투를 촉진하여 광범위한 대뇌 피질 탈수초를 초래합니다.

이 비디오는 황색포도상구균에 감염된 생체 외 양피부 모델의 생성을 보여줍니다. 여기에는 양의 이마 피부 생검 부위를 항생제로 치료하고, 상처 부위를 확립하고, 무항생제 배지가 있는 멀티웰 플레이트의 투과성 멤브레인에 배치하고, 피부 상처에 박테리아 감염을 확립하는 것이 포함됩니다.

이 영상은 마이크로니들을 이용한 침술을 통해 인터루킨-15 인코딩 플라스미드 DNA를 인터루킨-15 결핍 마우스 모델의 피부 조직으로 직접 전달하는 방법을 보여줍니다. 이 미세침은 가장 바깥쪽 피부층에 미세천공을 생성하여 플라스미드 DNA가 피부 조직 내의 각질세포를 포함한 표피 세포로 흡수 및 형질주입되는 것을 용이하게 합니다.

이 비디오는 결장 염증이 있는 인터루킨-10 결핍 마우스의 대변 미생물군 이식 절차를 보여줍니다. 장내 집락화된 대변 미생물은 2차 대사 산물을 방출하여 항염증성 사이토카인 방출을 유도하고 대장 염증을 감소시킵니다.

이 비디오는 인간 면역 체계와 간 세포를 가진 이중 인간화 마우스 모델을 생성하는 방법을 보여줍니다. 이는 인간 간 세포와 조혈 줄기 및 전구 세포를 비장 내 주사를 통해 형질전환 면역 결핍 마우스에 이식하여 간 세포의 생착과 인간 면역 세포의 발달을 유도하는 것을 포함합니다.

이 비디오는 낭포성 섬유증 제브라피시 배아에서 녹농균 감염을 표적으로 하는 파지 요법 기술을 보여줍니다. 파지 요법은 박테리아에 감염된 CF 제브라피시 배아에서 박테리아 부하를 효과적으로 줄이고 전염증성 면역 반응을 완화하여 CF 배아 치사율을 감소시킵니다.

이 비디오는 쥐의 절편된 아킬레스건에 혈소판이 풍부한 혈장(PRP)을 주입하는 기술을 보여줍니다. 수혜자 쥐의 아킬레스건에서 작은 부분을 절제하고, 해당 부위를 봉합하고, 쥐가 회복할 수 있도록 합니다. 동시에, 기증자 쥐에서 전혈을 채취하고 원심분리하여 PRP를 얻은 다음 활성화하고 수혜자 쥐의 봉합 부위에 주입하여 힘줄 복구를 유도합니다.

이 비디오는 인간 면역 결핍 바이러스(HIV)에 대한 줄기 세포 기반 엔지니어링 면역을 가진 인간화 마우스 모델을 생성하는 기술을 보여줍니다. 인간 태아 흉선 조직과 조작된 조혈모세포(HSC)는 면역이 심하게 저하된 쥐의 신장 캡슐에 이식됩니다. HIV에 대항하여 키메라 항원 수용체(CAR)를 발현하는 HSC는 흉선 조직과의 공동 국소화를 촉진하는 젤라틴 단백질 혼합물에 혼합되어 있습니다. 시술 후 HSC는 다양한 인간 면역 세포로 분화되어 HIV에 대한 기능적 인간 면역 체계를 가진 인간화 마우스 모델을 개발합니다.

이 비디오는 형질전환된 효모 세포를 마우스 모델로 경구 투여하는 방법을 보여줍니다. 형질전환된 효모 세포는 위(gavage) 기법을 사용하여 경구 투여되어 마우스의 위장에 도달합니다. 그 후, 세포는 소장으로 이동하고, 여기서 마이크로폴드 세포가 세포를 집어삼키고 Peyer's patch로의 전달을 용이하게 하고 장 면역 체계에 접근할 수 있습니다.

이 비디오는 청력과 전정 기능의 손상을 최소화하면서 반고리관을 통해 쥐의 내이로 국소 약물을 전달할 수 있는 절차인 이관절개술을 보여줍니다. 이 방법을 사용하면 바이러스 벡터, 의약품 및 소분자를 마우스의 내이에 접종할 수 있습니다.

이 비디오는 이식된 루시페라제 발현 베타 세포를 비만하지 않은 당뇨병성 면역결핍 마우스로 시각화하는 이미징 기반 방법을 보여줍니다. 당뇨병이 있는 쥐에서 비장세포를 도입하면 점진적인 베타 세포 파괴가 일어나며, 기질 도입 후 발광이 감소하여 시각적으로 확인됩니다.

이 비디오는 세포 기반 종양 백신 접종 분석을 보여줍니다. 종양 형성을 위해 B16-F10 흑색종 세포를 피내 주입한 마우스는 발병한 종양 근처에서 Flt3L 사이토카인을 분비하는 B16-F10 세포를 접종합니다. 백신에서 분비된 Flt3L은 수지상 세포의 성숙 및 증식을 촉진한 후 림프절의 T 세포에 종양 항원을 제시하여 표적 항종양 면역 반응을 유발합니다.

이 동영상은 다가 표시 외막소포체(OMV) 백신을 생성하는 방법을 보여줍니다. 포유류 세포는 SpyTag 및 폴리히스티딘 태그에 융합된 바이러스 항원을 발현하고 분비하기 위해 transfection됩니다. 그런 다음 이러한 항원은 니켈-니트릴로트리아세트산(Ni-NTA) 친화성 컬럼을 사용하여 정제됩니다. 정제된 항원은 표면 결합 SpyCatcher(SC) 단백질을 발현하는 외막 소포와 혼합됩니다. 여러 항원이 SpyTag(ST)를 통해 SpyCatcher에 공유 결합되어 항원을 표시하는 OMV를 생성하여 다가 백신 역할을 합니다.

이 비디오는 나노 에멀젼 종양 백신의 생산을 보여줍니다. 합성 펩타이드와 보조제를 운반하는 안정적인 오일 저장소 저장소는 저에너지 나노에멀젼으로 생산되어 종양 면역 요법에 대한 상당한 가능성을 제공합니다.

이 비디오는 마우스의 비강 내 BCG 면역을 보여주며, 선천성 면역 반응과 적응 면역 반응을 모두 활성화하여 폐 상주 기억 T 세포와 효과기 B 세포의 발달로 이어져 마이코박테리움 감염에 대한 보호를 강화합니다.

이 비디오는 한랭 적응 재조합 인플루엔자 바이러스를 만드는 방법을 보여줍니다. 이 연구는 인간 세포를 양방향 플라스미드로 형질주입한 후 저온 배양에서 배양하여 백신 생산에 적합한 바이러스를 생성하며, 따뜻한 조건에서 복제가 감소하는 것이 특징입니다.

이 비디오는 지연된 버스트 방출을 가능하게 하는 폴리머 버블 또는 폴리버블 기반의 새로운 플랫폼을 생성하는 방법을 보여줍니다. 폴리에스테르 기반 폴리머를 사용하여 코어-쉘 구조의 폴리버블을 형성하고 소분자 및 항원을 화물로 사용할 수 있습니다.

이 비디오는 락토바실러스 무세포 상등액(LCFS)의 항암 효과를 연구하기 위한 체외 분석을 보여줍니다. 결장직장암 스페로이드를 다양한 용량의 LCFS에 노출시키면 LCFS의 박테리아 대사 산물과의 상호 작용은 암세포의 세포사멸을 유도하여 스페로이드 구조를 파괴하고 용량 의존적 방식으로 세포 사멸을 초래합니다.

이 비디오는 고분자 나노 입자를 사용하여 mRNA 백신 후보를 생성하는 방법을 보여줍니다. 양이온 고분자는 음전하를 띤 mRNA와 상호 작용하여 폴리플렉스를 형성합니다. 폴리플렉스의 형성은 mRNA를 안정화시켜 면역 치료 응용 분야에서 향후 mRNA 백신의 잠재적 후보가 됩니다.

이 비디오는 친화성 액체 크로마토그래피를 사용하여 히스티딘 태그가 지정된 자체 조립 단백질 나노 입자 또는 SAPN의 정제를 보여줍니다. 그 결과 정제된 SAPN 분획은 백신 개발에 적합하며 잠재적인 면역 치료 응용 분야에 대한 가능성을 가지고 있습니다.

이 비디오는 인간 환자의 타액선에 치료 약물을 투여하는 초음파 유도 주사 기술을 보여줍니다.

이 비디오는 Mycobacterium bovis BCG에 항원을 적재하여 면역원성을 개선하는 기술을 보여줍니다. 이 방법은 avidin-biotin 시스템을 사용하여 박테리아 표면을 외인성 항원으로 코팅합니다.

이 비디오는 인간 병원체인 지카 바이러스에 대한 항바이러스 활성이 있는 인터페론을 스크리닝하기 위한 체외 분석을 보여줍니다. 숙주 세포 내에서 지카 바이러스는 내재화 시 증식을 거쳐 주변 세포를 감염시키고 뚜렷한 영역 또는 바이러스 플라크를 생성합니다. 항바이러스제 역할을 하는 I형 인터페론은 바이러스 증식을 방해하여 숙주 세포 단층에서 바이러스 플라크의 형성을 방지합니다.

이 비디오는 생쥐 모델에 살아있는 약독화 포자형성물을 면역시키기 위한 분석을 보여줍니다. 방사선 감쇠된 Plasmodium sporozoites는 쥐 귀의 등쪽에 주입됩니다. 양쪽 귀의 여러 위치에 주사를 맞은 후 마우스가 회복할 수 있습니다.