검체 채취와 관련된 모든 절차는 연구소의 IRB 지침에 따라 수행되었습니다.
1. 실험을 위한 솔루션 준비
- 세포외 기질(ECM) 코팅 용액 준비(재료 표 참조): 얼음에서 ECM 혼합물을 해동합니다. ECM 혼합물을 염기성 배양 배지(신경 영양 인자 또는 소 태아 혈청(FBS) 없음)에 1:10으로 희석하고 얼음에 보관합니다.
- 배양 배지 준비(재료 표 참조): FBS 또는 BDNF(Brain-Derived Neurotrophic Factor)를 포함하지 않는 Neurobasal 배지 스톡을 준비합니다. 세포 배양에 추가하기 직전에 새로운 FBS(10%) 및 BDNF(5ng/ml)로 neurobasal 배지를 보충합니다.
- 세포외 용액을 준비합니다(재료 표 참조).
2. MEA의 세척 및 살균
참고: 실험에 사용된 MEA에는 직사각형 그리드로 배열된 68개의 전극이 포함되어 있습니다(그림 1E). 각 전극의 크기는 40 x 40 μm2이며 중심에서 중심까지의 간격은 200 μm입니다. 전극은 백금으로 만들어집니다. 전극은 인듐 주석 산화물로 만들어진 회로에 의해 해당 접점에 연결됩니다. 이 회로는 5μm의 SU-8 층으로 절연되어 있습니다. 공급자에 대한 자세한 내용은 재료 테이블을 참조하십시오. 다른 MEA 레이아웃이 이러한 실험에 적합할 수 있습니다.
- 새로운 MEA의 경우: 70% 에탄올에 30초 동안 담가 헹구고 증류수로 30초 동안 세척합니다. 층류 후드에서 작업합니다.
- 층류 후드에서 MEA를 30분 동안 건조시킵니다.
- 각 MEA를 개별 멸균 페트리 접시(35mm x 10mm)에 넣고 호일로 밀봉합니다. MEA는 사용할 때까지 보관할 수 있습니다.
- 사용한 MEA의 경우: RT에서 오비탈 셰이커에서 1ml의 효소 용액(재료 표 참조) O/N이 포함된 페트리 접시(35mm x 10mm)에서 MEA를 배양하여 생물학적 물질을 제거합니다. 그런 다음 2.1.
단계에서와 같이 계속합니다.
메모: 끝이 고무로 덮인 집게를 사용하여 MEA를 주의해서 다루십시오.
3. 배양 실험을 위한 MEA 준비
- 밀봉 호일을 제거하고 전체 실험을 위해 MEA를 페트리 접시(35mm x 10mm)에 그대로 둡니다.
- 1.1에서 준비된 용액으로 MEA를 코팅: 차가운 200μl 피펫 팁(-20°C에서 보관)을 사용하여 전체 전극 영역을 덮는 각 MEA에 50μl의 코팅 용액을 피펫으로 코팅합니다.
- RT에서 30분에서 1시간 동안 MEA가 코팅되도록 합니다.
- 피펫을 사용하여 코팅 용액을 제거합니다. 10% FBS 및 5ng/ml BDNF가 보충된 100μl의 배양 배지를 적용하고 조직을 도금할 때까지 RT 상태로 둡니다.
- 코팅된 MEA가 들어 있는 페트리 접시 2개를 큰 페트리 접시(94mm x 16mm)에 넣고 가습을 위해 1.5ml의 PBS(Phosphate Buffered Saline)가 들어 있는 세 번째 작은 페트리 접시를 추가합니다.
메모: PBS를 함유한 작은 페트리 접시(3.5단계)를 추가하는 것은 배양 배지의 증발을 크게 최소화하는 데 중요합니다.
4. 나선형 신경절 해부
참고: 전체 해부는 층류 후드 외부에서 수행할 수 있습니다(단계 4.1에서 4.4). 미세 해부의 경우 멸균 상태(층류 후드)가 필수입니다(단계 4.5부터).
- 동물(5-7일 된 생쥐)을 사전 마취 없이 참수하여 안락사시킵니다.
- 70% 에탄올을 분사하여 머리를 살균합니다.
- 머리를 잡고 시상선을 따라 날카롭거나 날카로운 가위로 피부와 두개골 사이의 연결을 끊습니다.
- 두개골을 궁지처럼 자르고 날카롭거나 뭉툭한 가위를 사용하여 뇌를 제거합니다.
- 두개골에서 측두골을 잘라내고 멸균된 얼음처럼 차가운 행크스 균형 소금 용액(HBSS)이 들어 있는 페트리 접시에 넣습니다.
- 해부 현미경을 사용하여 미세한 집게를 사용하여 고막을 해부하고 내이를 분리합니다.
- 가는 집게를 사용하여 달팽이관의 뼈를 제거합니다.
- 나선신경절(SG)의 기저 부분과 SV를 겸자로 잡고 SV를 기저부에서 정점까지 천천히 풀어 나선형 인대와 선조혈관(SV)을 함께 제거합니다
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- 코르티(Corti, OC), SG 및 모디올러스(modiolus)의 기관을 분리합니다(그림 1A-C).
- 집게로 SG와 OC의 기저 부분을 잡고 OC를 기저부에서 정점까지 천천히 풀어서 OC를 SG 및 modiolus에서 분리합니다.
- 모디졸루스(그림 1D)에 아직 붙어 있는 나선신경절(spiral ganglion)에서 겸자와 마이크로 메스를 사용하여 측방외식(직경 200-500μm)을 자릅니다.
5. MEA에 대한 나선형 신경절 이식 문화
- 100 μl의 배양 배지로 미리 준비된 MEA의 전극 옆에 두 개의 나선형 신경절 외식재를 놓습니다.
- Corti의 기관을 전극 영역에서 약 5mm 떨어진 곳에 놓습니다.
- 겸자를 사용하여 외식부위와 코르티 기관을 MEA에 고정하면서 조직 손상을 방지합니다.
- MEA를 37°C 및 5% CO2에서 인큐베이터와 배양에 조심스럽게 놓습니다. 다음 날, 외식이 MEA에 부착되었는지 육안으로 검사합니다.
메모: 외식식물이 O/N을 부착하지 않은 경우 앞으로 며칠 동안 거의 부착하지 않습니다. OC는 영양/신경 영양 지원을 위해 배양에 인접하게 배치됩니다.
- 10% FBS 및 BDNF를 함유한 배양 배지 100μl를 연속 5일 동안 매일 첨가합니다.
- 6일차에 10% FBS와 5ng/ml BDNF를 함유한 배양 배지 2ml를 추가하고 추가로 13일 동안 조직을 배양합니다.