검체 채취와 관련된 모든 절차는 연구소의 IRB 지침에 따라 수행되었습니다.
1. 감각 신경절 해리
- 500μl Ganglia Dissociation Solution(GaDS)을 피펫으로 빼내고(표 1), 튜브에 신경절을 남깁니다. 1ml의 인산염 완충 용액(PBS)을 첨가하여 신경절을 한 번 세척하고 신경절이 튜브 바닥에 가라앉을 때까지 기다린 다음 PBS를 피펫으로 빼냅니다.
- 각 튜브에 GaDS 1ml와 소화 효소 22μl(콜라겐분해효소 I/II 및 프로테아제 혼합물, 물 중 2.5mg/ml)를 추가합니다.
- 포지티브 대조 튜브에 20μl Fast Blue(5.26mM)를 추가합니다.
- 튜브를 37°C로 설정된 수조 또는 가열 블록에 넣습니다.
- 15분마다 튜브를 짧게 흔들고 튕겨 신경절이 용액으로 덮여 있는지 확인합니다.
메모: 신경절 소화 시간은 소화 효소의 나이에 따라 다릅니다. 소화 효소를 용해 한 달 이내에 30 분 동안 소화하십시오. 2 - 6 개월 이내에 45 분 동안 소화하십시오. 효소가 6개월 이상 된 경우 60분 동안 신경절을 소화시킵니다.
- 신경절이 소화되는 동안 입자 용액(폴리비닐피롤리돈으로 코팅된 콜로이드 실리카 입자)을 사용하여 밀도 구배를 준비합니다.
- GaDS에 12% 입자 용액을 혼합하여 시료당 500μl를 사용합니다.
- GaDS에 28% 입자 용액을 혼합합니다(샘플당 500μl).
- 각 샘플에 대해 새로운 1.5ml 튜브에 400μl 28% 밀도 용액 위에 400μl 12% 밀도 용액을 천천히 조심스럽게 추가합니다. 두 레이어가 혼합되지 않도록 하십시오. 튜브에서 두 개의 뚜렷한 층이 보여야 하며 하나는 다른 것보다 더 어둡습니다.
- 적절한 소화 시간 후, 소화 효소로 GaDS를 제거하고 1ml PBS로 신경절을 2회 세척합니다. 각 튜브에 200μl의 새로운 GaDS를 추가합니다.
- 100μl 부피로 설정한 200μl 피펫을 사용하고 신경절을 위아래로 여러 번 피펫팅하여 세포를 분리합니다. 온전한 조직 조각이 보이지 않을 때까지 반복합니다. 용액에 거품을 만들지 마십시오.
- 해리된 세포를 70μm 세포 스트레이너에 통과시킵니다.
- 원래 해리 튜브에 100μl의 GaDS를 더 추가하여 남아 있는 표유 세포를 집어 들고 세포 여과기를 통해 추가 용액을 통과시킵니다. 새 피펫 팁을 사용하여 스트레이너를 통과하여 메쉬에 달라붙은 남아 있는 세포 함유 액체를 수집합니다. GaDS에 현탁된 세포의 최종 부피는 300μl입니다.
- 300 μl의 세포를 이전에 만든 밀도 구배 위에 조심스럽게 겹쳐 놓습니다. 기포와 밀도 층과 세포의 혼합을 피하십시오.
- 상온에서 2,900 x g에서 10분 동안 원심분리기
.
- 원심분리가 완료되면 상단 700μl 층을 조심스럽게 제거하고 폐기합니다. 이 층에는 세포 분류를 방해할 수 있는 대부분의 세포 파편이 포함되어 있습니다.
- 용액을 포함하는 나머지 세포에 700μl의 신선한 GaDS를 첨가하고 위아래로 여러 번 피펫하여 혼합합니다.
- 18. 2,900 x g에서 15분 동안 펠릿 세포로 원심분리기를 가열합니다.
- 19. 원심분리가 완료되면 상등액을 조심스럽게 제거하고 버리고 세포 펠릿을 남깁니다.
- 200 μl로 설정된 1,000 μl 피펫으로 위아래로 피펫팅하여 200 - 300 μl GaDS에 세포 펠렛을 여러 번 재현탁합니다. 얼음 위에 샘플을 넣으십시오.
표 1. Ganglia Dissociation Solution(GaDS)용 시약 혼합물.
| 성분 | 분량 |
| 고급 DMEM/f12 | 9.5 밀리리터 |
| 글루타민 | 100 μl |
| 헤페스 (10mM) | 100 μl |
| N2 보충제 | 100 μl |
| B27 (비타민 A 없음) | 200 μL |
| NGF (50 μg/ml) | 10 μl |