1. 피질 뇌 오가노이드 생성(그림 1)
참고: 프로토콜의 이 섹션에 있는 모든 단계는 달리 명시되지 않는 한 클래스 2 생물 안전 후드에서 발생합니다.
- 인간 만능 줄기 세포(hPSC)에서 2D 신경외배엽 집락 유도 2D 배양(-1-3일)
- 유도 전에 인간 배아 줄기 세포(hESC) 자격을 갖춘 기저막 매트릭스의 hPSC 콜로니를 20%-30% 밀도의 6웰 플레이트에 플레이트합니다. 60% 포화도의 6웰 플레이트의 1웰에서 6웰 플레이트의 3웰로 hPSC 콜로니를 통과시켜 이러한 밀도를 달성합니다.
- 기저막 매트릭스 코팅의 경우, 기저막 매트릭스를 일반 기저 매체에서 1:50의 비율로 희석합니다. 6웰 플레이트의 1mL/웰을 골고루 침전하고 실온(RT)에서 1시간 동안 배양한 다음 흡인합니다.
- 분화 전에 2mL의 무혈청 세포 배양 배지에서 1일 동안 hPSC 집락을 유지합니다.
- hPSC 분화 당일, 검출 가능한 분화가 없는 건강한 집락을 확인하기 위해 4배에서 10배 배율로 명시야 현미경을 사용하여 hPSC 집락을 검사합니다.
메모: 건강한 hPSC는 큰 핵, 매우 작은 세포질 및 두드러진 핵을 가진 세포로 촘촘한 가장자리 군체를 형성합니다. 분화된 iPSC 집락은 위에서 설명한 hPSC 집락과 뚜렷한 형태학적 차이를 보이며, 특히 집락의 바깥쪽 가장자리 주위 또는 중앙에서 그렇습니다.
- 표 1에 나열된 시약을 추가하여 분화에 필요한 N2 배지를 구성합니다. 사용하기 전에 이 매체를 RT로 가져오십시오.
- RT에서 6-well 플레이트의 각 well에서 무혈청 세포 배양 배지를 흡인하고 5mL 혈청학 피펫으로 부드럽게 첨가된 2mL의 N2 배지로 교체합니다.
- Decapentaplegic (SMAD) 억제제에 대한 이중 산모 억제제, SB-431542 (10 μM) 및 LDN 193189 (100 nM)을 추가합니다.
메모: SMAD 억제제는 배지를 각 웰에 배치한 후 N2 배지에 첨가하거나 무혈청 세포 배양 배지를 대체하기 전에 필요한 양의 N2 배지에 첨가할 수 있습니다. 억제제는 플레이트를 부드럽게 소용돌이치거나 배지와 억제제를 포함하는 튜브를 3-4회 뒤집어 배지에 균일하게 통합될 수 있습니다.
- 다음 2일 동안 SB-431542(10μM) 및 LDN 193189(100nM)이 보충된 새로운 N2 배지를 매일 각 웰에 추가합니다.
메모: SB-431542 및 LDN 193189 화합물을 용해하고 세포 독성을 방지하는 데 사용되는 Dimethyl sulfoxide(DMSO)에 세포의 장기간 노출을 줄이기 위해 신선한 N2 배지를 추가합니다.
- 유도된 2D 신경외배엽 집락에서 3D 신경외배엽 스페로이드 생성(3-7일차)
- 1.2.2-1.2.8 단계에 따라 dispase를 사용하여 유도된 신경외배엽 집락을 들어 올립니다.
- 먼저 6-well 플레이트에서 2mL의 N2 배지를 제거하고 HBSS로 1x를 세척하여 모든 N2 배지가 제거되었는지 확인합니다.
메모: N2 배지는 dispase의 효소 활성을 방해하여 우물에서 신경외배엽 집락이 적절하게 분리되는 것을 방지할 수 있습니다.
- 각 콜로니 함유 웰에 2.4 unit/mL dispase 1mL를 추가합니다.
- 37 °C에서 20-25 분 (최대 30 분) 동안 우물을 배양하십시오.정기적으로 식민지 분리를 확인하십시오.
메모: 작은 군체는 20분 이내에 분리될 수 있습니다. 30분 후에도 갇혀 있는 콜로니는 무시해야 합니다.
- 배양 후 웰에 N2 배지 1mL를 추가하여 디스페이아제 효소의 활성을 중지하고 광경 P1000 피펫 팁 또는 멸균 가위로 절단한 변형된 P1000 피펫 팁(광경 P1000 팁으로 만들기)을 사용하여 콜로니를 15mL 튜브로 옮깁니다.
- 군체 덩어리가 중력으로 튜브 바닥으로 가라앉도록 합니다.
메모: 이 과정은 약 1분 정도 소요됩니다.
- 덩어리가 가라앉으면 표준 P1000 피펫 팁으로 상층액을 조심스럽게 제거하고 1mL의 새 N2 배지로 교체합니다. 이 세척 단계를 세 번 반복하여 dispase.
를 완전히 제거합니다.
메모: 남아 있는 디스페이즈는 신경외배엽 스페로이드의 균일한 형성을 방지하고 세포 사멸을 유도합니다.
- 세척 후 세포 응집을 3mL의 N2 배지에 재현탁시키고 6웰 플레이트의 한 웰로 옮기고 40ng/mL의 염기성 섬유아세포 성장 인자(bFGF)를 추가합니다.
메모: 많은 수의 신경외배엽 집락이 분리되면 이러한 집락은 스페로이드 융합을 방지하기 위해 6웰 플레이트의 두 개 이상의 웰에 걸쳐 도금될 수 있습니다. 군체를 분산시킨 후 24시간 후에 스페로이드가 형성되었는지 확인합니다.
- 다음 3-4일 동안 동일한 배지에서 스페로이드를 유지하되 매일 각 웰에 새로운 bFGF(40ng/mL)를 추가하여 신경외배엽 세포 증식, 자가 조직화를 촉진하고 신경 상피를 유도 및 확장합니다.
메모: 스페로이드가 더 높은 밀도로 도금된 경우 배지가 노랗게 변할 수 있으며 2일마다 새 bFGF(40ng/mL)로 교체해야 합니다. 그러나 이는 권장되지 않으며 대신 이 문제를 방지하기 위해 각 웰에서 더 적은 수의 스페로이드를 유지해야 합니다. 스페로이드는 신경상피가 명백한 경우 3일 후에 기저막 매트릭스에 내장될 수 있습니다. 신경 상피가 뚜렷하지 않거나 강해 보이지 않으면 스페로이드를 하루 더 유지하고 다시 확인하십시오.
표 1: N2 중간. 이 표에는 N2 배지를 준비하는 데 필요한 시약이 나열되어 있습니다.
| 미디어 구성 요소 | 농도 |
| DMEM 영양 혼합물 F12 10x 500 mL (DMEM/F-12) | |
| N2 보충제 5 mL (100x) | 1% 공급 |
| B 27 보충제 10mL | 2% 보충 |
| MEM 비필수 아미노산 용액(100개) | 1%로 보충 |
| 페니실린-스트렙토마이신(10,000 U/mL) | 1%로 보충 |
| 2-메르캅토에탄올 50 mL(1000x ) | 0.1%로 보충 |