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방법 논문

Detecting Hydrogen Peroxide Levels in Cultured Neurons Through Live-Cell Fluorescence Imaging

597 조회수

2025년 7월 8일

이 논문에서

초록

출처: Terzi, A. et al., ROS 신경 발달 중 라이브 셀 이미징.J. Vis. 특급 (2021).

이 비디오는 roGFP2-Orp1 바이오센서 및 라이브 셀 이미징 기술을 사용하여 망막 신경절 세포에서 실시간 과산화수소 수치를 감지하는 기술을 보여줍니다. 세포 준비, 형광 이미징 및 과산화수소 수치의 정량화와 관련된 단계를 간략하게 설명합니다.

프로토콜

1. 배양된 망막 신경절 세포(RGC) 뉴런의 체외 반응 산소 종(ROS) 이미징

  1. 이미징 당일(일반적으로 세포 도금 후 6-24시간)에 망막 신경절 세포를 현미경으로 검사하여 망막 신경절 세포의 성장을 확인합니다.
  2. 라이브 셀 이미징의 경우, 배양 접시에서 라이브 셀 이미징 챔버로 커버슬립을 옮깁니다.
  3. 이미징을 위한 현미경을 설정합니다. 미분 간섭 대비(DIC) 대물렌즈, OG590 장역 통과 적색 필터 및 EM-CCD 카메라가 장착된 도립 현미경을 사용합니다.
  4. 이미징하기 전에 혈청 및 항생제가 포함된 제브라피쉬 세포 배양 배지(ZFCM(+))를 혈청 및 항생제가 없는 제브라피쉬 세포 배양 배지(ZFCM(-))로 교체합니다.
  5. 10x 대물렌즈로 세포를 배치하면 높은 NA 오일 이멀젼 대물렌즈를 사용하여 60x 배율로 이미지를 획득합니다. 추가로 1.5배 확대를 사용합니다.
  6. 먼저 DIC 이미지를 획득합니다. 그런 다음 적절한 필터 세트를 사용하여 roGFP2-Orp1을 이미지화합니다. 405/20 및 480/30 nm excitation filter로 roGFP2-Orp1을 순차적으로 excite 하고 방출광이 dichroic mirror 505DCXR을 통과한 후 535/30 nm emission filter로 이미지를 획득합니다.
  7. 첫 번째 이미지 세트를 촬영한 후 다른 치료 용액이 포함된 미디어와 미디어를 교환합니다. pH 및 삼투압 변화를 방지하기 위해 이미징 30분마다 매체를 교체해야 합니다.

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공개 사항

선언된 이해 상충이 없습니다.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
35mm 배양 접시사르슈테트83-3900
커버 유리코 닝2850-22
일회용 페트리 접시 (100 x 15mm)폭스바겐제25384-094
소 태아 세럼써모피셔 사이언티픽26140087
도립 현미경니콘TE2000 (영문
라미닌써모피셔 사이언티픽23017-015
레보비츠의 L-15 페놀 레드 미디엄Gibco/Fisher Scientific제11-415-064
페놀 레드가 없는 Leibovitz의 L-15 미디엄Gibco/Fisher ScientificTel.: 21-083-027
페니실린/스트렙토마이신써모피셔 사이언티픽15140122
페놀 레드시그마 알디치P0290
폴리-D-라이신(PDL)시그마 알디치P7280
Steritop 0.22μm 필터밀리포어S2GPT05RE
Calcium Chloride Dihydrate (염화칼슘 이수화물) 피셔 사이언티픽 C79-500
포도당 시그마 알드리치 G7528 (영문
헤페스 시그마 알드리치 H4034
년 년 호 ) 년 호 (영문) )

태그

roGFP2 Orp1