방법 논문

Whole-Cell Patch Clamp를 사용한 형광 뉴런의 흥분성 연구

2025년 7월 8일

이 논문에서

초록

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출처: Briz, C. G., et al., In Utero Electroporation Approaches to Study the Excitability of Neuronal subpopulations and single-cell connectivity. J. Vis. 특급 (2017년)

이 비디오는 전체 세포 패치 전류 클램프를 사용하여 형광 단백질을 발현하는 신경 세포의 흥분성을 연구하는 방법을 보여줍니다. 전류 클램프 모드에서는 신경 흥분성을 나타내는 활동 전위가 생성됩니다.

프로토콜

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동물 샘플과 관련된 모든 절차는 해당 동물 윤리 검토 위원회에 의해 검토되고 승인되었습니다.

1. 전기생리학

참고: 이 프로토콜의 목표는 GFP 전기천공된 마우스 뇌(또는 이전에 전기천공된 다른 형광 단백질)에서 GFP 발현에 의해 시각적으로 식별된 레이어 II/III 피라미드 세포 뉴런에서 전체 세포 전류 클램프 기록을 얻는 것입니다. 이 프로토콜을 사용하면 IUE에 의해 도입된 유전자 변형이 뉴런의 전기적 특성에 미치는 영향을 연구할 수 있습니다. 특정 발사 모드의 획득은 광범위한 이온 채널 레퍼토리의 동적 발현을 포함하는 점진적인 분화 과정이며, 그 결과 출생 후 후기 단계 전에 일시적인 발사 모드가 발현됩니다. 예를 들어, P16 이전의 체성 감각 마우스 피질의 II/III층에서는 성숙한 전기 반응이 관찰되지 않습니다.

  1. 급성 슬라이스에 대한 사전 요구 사항
    1. 119 mM NaCl, 26 mM NaHCO3, 11 mM 포도당, 2.5 mM KCl, 1.2 mM MgCl2, 2.5 mM CaCl2 및 1 mM NaH2PO4를 포함하는 고순도 (이중 증류수)를 사용하여 ACSF 1L를 준비합니다. HCl 또는 NaOH를 사용하여 pH를 7.3 - 7.4로 적정합니다. 삼투압을 290mOsm으로 조정합니다.
    2. pH를 7.3 - 7.4로 안정화하기 위해 테프론 튜브(~ 1mm)를 사용하여 15 - 20분 동안 탄수화물(95% O2/5% CO2)로 ACSF를 거품화합니다.
  2. 전체 셀 기록을 위한 전제 조건
    1. 전기생리학 스테이션에 기록 챔버, 관류 시스템, 현미경, 전극(기록, 자극 및 접지), 매크로 및 마이크로 매니퓰레이터, 견고한 진동 방지 탁상용 및 패러데이 케이지, 자극기, 증폭기 및 아날로그-디지털(A/D) 변환기, 수집 소프트웨어가 있는 컴퓨터, 유전자 변형 뉴런을 분석하기 위한 GFP(또는 기타 형광 색소) 필터가 장착되어 있는지 확인합니다(그림 1A).
    2. 115mM 글루콘산칼륨, 2mM MgCl2, 10mM Hepes, 20mM KCl, 4mM Na2ATP 및 0.3mM Na3GTP를 함유하는 세포내 용액을 KOH에 의해 pH 7.2 및 KCl에 의해 290mOsm으로 조정했습니다.
    3. 붕규산 유리 모세관을 당겨 패치 피펫을 만듭니다. 마이크로피펫 풀러를 사용하여 패치 전극을 준비합니다. 붕규산 모세관(외경 1.5mm, 내경 0.86mm, 길이 10cm)을 사용합니다. 세포 내 용액으로 채워질 때 3-10MΩ의 저항을 보여주는 패치 전극을 만듭니다.
    4. ACSF로 기록 챔버를 2mL/분의 속도로 관류합니다. 챔버의 온도를 약 33°C로 유지합니다.
  3. 전체 세포 기록
    1. 파스퇴르 피펫(긴 끝을 잘라냄) 또는 작은 브러시를 사용하여 슬라이스를 기록 챔버로 옮깁니다. 하프로 슬라이스를 누릅니다. 2mL/분의 속도로 ACSF로 슬라이스를 지속적으로 관류합니다.
    2. GFP 양성 뉴런을 패치합니다.
      1. 슬라이스를 기록실에 넣고 저배율(10X)로 현미경을 통해 관심 영역을 찾습니다. 그런 다음 60x 대물렌즈를 사용하여 패치할 GFP 양성 셀을 찾습니다.
      2. 기록 전극을 세포 내 용액으로 채웁니다. 필터(4mm 필터)와 마이크로 로더 팁에 연결된 주사기를 사용하여 기록 전극을 세포 내 용액으로 채웁니다.
      3. 유리 피펫을 피펫 홀더에 놓습니다. 피펫 팁을 수조에 넣고 팁에 초점을 맞춥니다. 피펫이 수조에 들어가면 배압 제어 시스템을 통해 양압을 가합니다.
      4. 형광 뉴런을 패치합니다(그림 1B).
        1. 시각적 안내에 따라 관심 세포에 접근하는 동시에 파이펫의 배압을 유지합니다. 세포 표면에 작은 보조개가 나타나면 압력을 해제하십시오. 이 시점에서 단단한 밀봉(1GΩ보다 큰 저항)이 형성될 수 있습니다. 그렇지 않으면 가벼운 음압 (흡입)을 가하여 용이하게하십시오.
        2. 씰이 형성되는 동안 유지 전압 클램프를 -60mV로 가져옵니다. GΩ 씰이 형성되면 흡입 펄스를 적용하여 피펫 아래의 세포막을 파열하고 전체 세포 모드로 전환합니다.
      5. 전류 클램프 조건을 사용하여 활동을 기록합니다. 전체 셀 모드에 들어가면 전압 클램프에서 전류 클램프 모드로 전환하고 녹음을 시작합니다. 예를 들어, 세포 여기성을 기록하려면 500ms 길이의 탈분극 전류 주입(100 - 400pA)을 적용합니다.
        1. 입력 전류를 증가시키기 위해 열차를 따라 활동 전위의 수를 플로팅하여 발사 속도를 계산합니다.
          메모: 휴지 멤브레인 전위, 입력 저항 및 멤브레인 커패시턴스도 기록으로부터 계산될 수 있습니다.

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결과

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그림 1. 전기생리학 설정 및 발사 반응의 예. A. 사진은 급성 절편에서 패치 클램프 실험에 사용되는 전기생리학 설정을 보여줍니다. 이 설정은 소음을 제거하기 위해 패러데이 케이지에 포함되어 있으며 장비는 진동 방지 테이블 위에 있습니다. 전극에 대한 전동 미세 조작기의 컨트롤러는 왼쪽에서 관찰됩니다. B. GFP로 전기천공된 마우스의 피라미드 뉴런, 명시야 및 녹색 형광 조건에서 관찰. GFP+ 셀에 부착된 기록 피펫이 눈에 띕니다. 눈금 막대 = 10μm. C. CAG-GFP 전기천공 대조층 II-III 뉴런의 발사 패턴은 전형적인 규칙적인 스파이크 반응을 보여줍니다. 활동 전위의 분포는 입력 ...

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공개 사항

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선언된 이해 상충이 없습니다.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
붕규산 유리 모세관(100mm, 1.0/0.58 외경/내경)윌 정밀 기기 Inc.AN-번호 1B100F-4
교정된 미세모세관 피펫을 위한 흡인기 튜브 어셈블리시그마 -알드리치A5177-5개
자당시그마 -알드리치S0389
형광 이미징용 현미경 - MZ10F라이카
Axiovert 200 현미경자이스
P-97 마이크로펫 풀러셔터 인스트루먼트 컴퍼니P-97
패치 클램프 해석 소프트웨어(p-Clamp Clampfit 10.3)분자 장치-
수집 소프트웨어(MultiClamp 700B 증폭기)분자 장치DD1440A
전동 마이크로 매니퓰레이터 + 회전베이스셔터 계기MP-225
에어 테이블뉴포트-
미니어처 연동 펌프WPI (영어)
시리즈

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Whole Cell Patch ClampNeuronal ExcitabilityFluorescent NeuronsCurrent Clamp ModeAction PotentialsGFP Positive NeuronsIntracellular SolutionRecording PipetteHolding PotentialMembrane Seal

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