동물 모델과 관련된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 검토 위원회에서 검토되었습니다.
1. 동물
- Jackson Laboratory에서 구할 수 있는 유전자 조작 OR-IRES-tauGFP(OR = 후각 수용체, IRES = 내부 리보솜 진입 부위, tauGFP = 타우-녹색 형광 단백질) 마우스를 사용합니다. 이 마우스는 Peter Mombaerts 박사의 실험실에서 축삭돌기 표적화 및 후각 시스템의 발달을 분석하기 위해 개발되었습니다. 예를 들어, MOR23-IRES-tauGFP 라인(재고 번호 006643)은 공식 균주 이름 B6을 갖습니다. 129P2-OLFR16TM2엄마/엄마J; 마찬가지로 SR1-IRES-tauGFP 라인, 재고 번호 6717은 공식 이름 B6을 갖습니다. 129P2-OLFR124TM1엄마/엄마J.
- 동물의 나이에 관하여: 프로토콜의 더 나은 결과를 위해 생후 2주에서 4주 사이의 동물을 사용하십시오. 이 연령대에서는 해부가 더 쉬우며(뼈가 더 부드럽고 후각 상피가 더 단단함) 수지상 손잡이가 나이가 많은 동물에 비해 더 큽니다.
2. 전극 및 용액 준비
- 자극 피펫의 경우: 미리 당겨진 자극 피펫을 구입하십시오. 그렇지 않으면 수동으로 준비하십시오.
- 화염을 사용하여 1mm 유리 피펫 6개를 끝에서 약 1cm 떨어진 곳에 구부립니다. 이 6개의 피펫과 직선 7번째 피펫을 구멍으로 강화된 1.5cm 열수축 튜브에 삽입합니다.
- 열은 튜브를 수축시켜 함께 부착된 배럴을 유지합니다. 배럴의 다른 쪽 끝에 추가 열수축 튜브를 부착합니다. 이 자극적인 피펫을 멀티 배럴 풀러로 당기십시오.
- 구부러진 팁을 강화하기 위해 구멍 주위에 흰색 액체 접착제를 추가합니다. 밤새 말리십시오 (O / N).
- 1 또는 2 L의 일반 Ringer's extracellular solution(mM: NaCl 124, KCl 3, MgSO4 1.3, CaCl2 2, NaHCO3 26, NaH2PO4 1.25, 포도당 15, pH 7.6 및 305 mOsm)을 준비합니다. 사용할 때까지 4 °C를 유지하십시오.
- 세포 내 원액 제조 (mM) : KCl 70, KOH 53, 메탄 술폰산 30, 에틸렌 글리콜 테트라 아세트산 (EGTA) 5, 4- (2- 히드 록시 에틸) -1- 피페 라진 에탄 술폰산 (HEPES) 10, 자당 70; pH 7.2 (KOH) 및 310 mOsm. 사용할 때까지 4 °C를 유지하십시오. 몇 주 동안 좋습니다.
- 실험 전에 즉시(마지막 순간에) nystatin이 포함된 세포 내 기록 용액을 준비합니다.
- nystatin의 3 mg의 무게를 달고, dimethyl sulfoxide (DMSO)의 50 μl를 추가하십시오; 와류 20 초는 그 후에 완전히 묽게 될 때까지 2-3 분 초음파 처리한다.
- 세포 내 원액 5ml에 DMSO-nystatin 용액 20μl를 추가합니다. 소용돌이 20 초, 그 후 3 분 초음파 처리. 이 용액을 4°C로 유지하고 직사광선으로부터 보호하십시오, 니스타틴은 빛에 민감합니다. 이 솔루션은 몇 시간 동안 사용할 수 있습니다. 매일 교체하십시오.
- 일단 후각 상피 준비물이 현미경의 밑에 있으면, 전극을 채우기 위하여 화염 길쭉한 노란 끝을 가진 1개 ml 주사기에 있는 이 해결책의 몇몇을 가지고 가십시오; 직접적인 빛에서 보호하십시오. 실온(RT)에 도착하면 니스타틴 용액이 안정적이지 않습니다. 매시간 1ml 주사기에 담긴 용액을 교체하거나 얼음 속에 보관하십시오.
- 풀러로 기록 전극을 당겨 내부 니스타틴 용액으로 15-20MΩ의 저항으로 긴 목과 작은 팁(~2μm)을 얻습니다.
- 흄 후드 아래 DMSO에서 0.5M의 냄새 용액을 준비하십시오. 분취하고 사용할 때까지 -20 °C를 유지하십시오. 원하는 농도가 될 때까지 Ringer's solution에 냄새 물질을 희석합니다. 자극 피펫을 채웁니다.
3. 후각 상피의 준비
참고: OR-IRES-tauGFP 마우스는 OR promoter의 제어 하에 tauGFP를 발현합니다. 이 마우스에서는 관심 OR을 발현하는 모든 뉴런이 GFP로 표지됩니다. 이 프로토콜은 모든 영역에서 표현되는 OR에 맞게 조정됩니다. 그러나 해부 및 기록은 등쪽 영역에서 발현되는 OR에 대해 더 쉽습니다.
- 케타민과 자일라진(각각 체중 150mg/kg 및 체중 10mg/kg)의 혼합물을 주사하여 동물을 마취합니다. 참수는 어린 쥐의 경우 날카로운 가위로, 나이 든 쥐의 경우 적절하게 유지 관리되는 설치류 단두대로 수행할 수 있습니다.
- 고리 절개 가위를 사용하여 등쪽 피부를 통해 세로 내측 절개를 만듭니다. 피부를 당겨 제거하십시오. 가위를 사용하여 아래턱 관절을 자릅니다. 치아와 평행하게 절단된 관상동맥으로 위쪽 앞니를 제거합니다.
- 눈 뒤의 머리를 관상 절개하고 머리의 앞부분만 유지합니다. 내시경 아래를 해부하기 위해 얼음처럼 차가운 Ringer 용액에 담그십시오.
- 내시경 아래 해부: 복부 쪽에서 위턱/치아를 따라 세로로 자릅니다. 비강의 배외측을 따라 등뼈를 세로로 자릅니다. 대부분의 뼈와 입천장을 제거하십시오. 중격과 그것에 부착된 상피를 RT에서 산소화된 Ringer로 전달합니다.
- 최종 해부: 녹음 세션을 시작하기 직전에 집게로 밑에 있는 중격에서 상피를 벗겨냅니다. 겸자와 접착력이 더 강한 중격의 앞쪽 부분에서 두 개의 4-5mm 가위 절단 (마이크로 반나스 가위 사용)으로 상피를 분리합니다.
- 중격 상피에 대한 등쪽 연결을 따라 잘라내어 성비강 기관을 조심스럽게 제거합니다. 점액층이 위를 향하도록 상피를 기록 챔버로 옮기는 단계; 하프와 함께 챔버에 평평하게 보관하십시오.
- 형광 광학 장치와 민감한 카메라가 장착된 정립 현미경 아래에 챔버를 설치합니다. 40X 침수 대물렌즈(개구수 0.8)와 확대 렌즈로 얻은 추가 2X 또는 4X 배율을 통해 고배율로 컴퓨터 화면에서 준비물을 시각화합니다. 산소가 공급된 Ringer를 RT(1-2 ml/min)에서 지속적으로 관류합니다.
4. 녹음 세션
- 형광성 세포를 찾으십시오: 530-550 nm 범위에 있는 빛을 방출하는 EGFP를 위한 480 nm에 준비를 흥분하십시오; 형광에서 그리고 명시야의 밑에 믿을 수 있 보이는 1개의 수지상 손잡이를 표적으로 하십시오.
- 세포내 용액으로 전극에 니스타틴을 채우고, 전극을 부드럽게 두드려 기포를 제거합니다.
- 전극 홀더에 전극을 삽입하고 피펫에 양압을 가하십시오. 저항은 15-20MΩ이어야 합니다.
- 전극을 셀 가까이로 가져오십시오. 저항이 ~40MΩ에 도달하면 양압을 해제하고 약간의 음압을 가하여 기가씰에 도달합니다.
- 씰에 도달하면 멤브레인 전위를 약 -75mV로 설정합니다.
- 세포가 열리면 자극 프로토콜, 약물 치료를 진행하십시오. 단일 냄새 자극에 대한 반응을 측정하려면 200-500msec의 자발적 활동을 기록하고 500msec 동안 자극하며 최대 10초 동안 세포의 반응을 측정합니다. 약리학적 치료를 위해 약리제를 원하는 농도로 관류하십시오.