방법 논문

마우스 뇌 절편에서 증식된 신경 줄기세포를 시각화하기 위한 면역형광 염색

2025년 7월 8일

이 논문에서

초록

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출처: Quintanilla, L. J., et al. 성체 해마 신경 전구 세포의 회로 특이적 조절을 분석합니다. J. Vis. 특급 (2019년)

이 동영상은 EdU incorpion을 사용하여 뇌 조직 절편에서 새로 증식한 신경 줄기 세포를 염색한 다음 면역 형광을 통해 특정 단백질을 시각화하여 세포 역학 및 증식에 대한 이해를 높이는 절차를 보여줍니다.

프로토콜

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동물 샘플과 관련된 모든 절차는 해당 동물 윤리 검토 위원회에 의해 검토되고 승인되었습니다.

1. 면역조직화학

  1. 티미딘 아날로그 염색
    1. 조직 절편을 PBS(인산염 완충 식염수)에 놓고 양전하를 띤 슬라이드에 5-8 절편을 장착하여 전방에서 후방으로 동일한 방향으로 연속 순서를 유지합니다. 조직 절편이 슬라이드에 완전히 부착되도록 건조시킨 다음 소수성 펜이나 PAP 펜을 사용하여 테두리를 그립니다.
    2. 투과화 완충액(0.5% TBS(트리스 완충 식염수) -트리톤)으로 절편을 20−30분 동안 투과합니다. 그런 다음 TBS-triton을 사용하여 섹션을 각각 5분 동안 2번 세척합니다.
      참고: 투과화는 세포 내 항체 침투를 돕습니다. 투과시간은 조직 두께와 항체 효율에 따라 조절할 수 있습니다. 대안적으로, 하나는 투과화 효능을 증가시키기 위해 세제 농도를 증가시킬 수 있다. 그러나 투과화 시간이 길어질수록 조직의 취약성이 증가하므로 너무 오래 투과되지 않도록 주의해야 합니다.
    3. 표 1에 따라 Edu(5-ethynyl-2'-deoxyuridine) 반응액을 준비한다. Alexa488-azide의 최종 농도는 Edu 반응 용액 1mL에서 15μM입니다.
    4. Edu 반응 용액에서 절편을 30분에서 1시간 동안 배양한 다음 TBS-triton에서 각각 5분 동안 3x 세척합니다. 이 단계가 끝나면 슬라이드를 알루미늄 호일로 덮어 빛으로부터 보호하십시오. 이 단계에서 형광 현미경을 사용하여 Edu 반응이 작동하는지 확인합니다. Edu 표지된 세포는 상피 형광 현미경 아래에서 형광을 발합니다.
  2. 장착된 조직 절편 프로토콜
    1. 2차 항체, 예를 들어 당나귀 혈청과 동일한 동물에서 배양된 차단 완충액을 사용하여 1.1.4단계의 슬라이드에 장착된 조직 절편을 30분에서 1시간 동안 차단한 다음 TBS-트리톤에서 각각 5분 동안 2x로 세척합니다.
    2. 차단 단계에서 1:200에서 차단 완충 용액에 1차 항체를 혼합하여 1차 항체(즉, 닭 항네스틴) 용액을 준비합니다. 슬라이드당 250μL는 조직이 용액에 완전히 잠기도록 하기에 충분합니다.
    3. 세척을 차단한 후 RT에서 하룻밤 동안 1차 항체 용액의 조직 절편을 배양합니다. 사용된 기본 항체에 따라 이 단계를 수정합니다.
      메모: 항체의 백그라운드 결합이 높거나 비특이적 결합인 경우 RT(실온) 대신 4°C에서 배양하면 결과가 개선될 수 있습니다. 조직 침투가 좋지 않은 항체는 필요한 경우 2일 동안 배양할 수 있습니다.
    4. TBS-triton에서 조직 절편을 3회 배양하여 5분 동안 배양하여 과도한 1차 항체를 제거합니다. 그런 다음, 블로킹 버퍼 용액에서 준비된 형광단 접합 2차 항체(예: Alexa 647 anti-chicken at 1:200)에서 RT에서 2시간 동안 조직 절편을 배양합니다.
    5. TBS-triton에서 조직 절편을 5분 동안 3배 배양하여 과도한 2차 항체를 제거하고 PBS에서 1:100에 RT에서 15분 동안 300μM DAPI(4',6-디아미디노-2-페닐린돌) 용액을 적용합니다.
    6. PBS에서 5분 동안 조직 절편을 3회 배양하여 과도한 DAPI를 제거하고 면봉이나 섬세한 작업용 물티슈를 사용하여 조직 주변의 팹 펜 서클을 제거합니다. 섹션을 건조시킨 다음 장착 미디어와 커버슬립을 적용합니다. 슬라이드를 이미징하기 전에 장착 미디어를 건조시키십시오.

표 1: 면역조직화학에 활용되는 용액

부동액 용액에틸렌-글리콜 150mL + 자당 150g + 500mL 용액의 경우 0.1M PB로 충전
구연산염 완충액구연산 스톡 9mL + 시트르산 삼나트륨 완충액 41mL + ddH2O450mL
구연산 육수[0.1 m] 구연산 21 g/1 L ddH2O
트리소듐시트레이트 스톡[0.1 M] 구연산 삼 나트륨 29.4 g / 1 L ddH2O
트리스 완충 식염수 -트리톤 (TBS -Triton)0.05% 100x 트리톤(TBS)
투과화 완충액0.5% TBS의 100-x 트리톤
블로킹 버퍼0.33mL 당나귀 혈청, 10mL TBS-Triton
Edu 반응 솔루션[0.1M] Tris pH 8.5의 4mL 용액에 1mg의 CuSO4·5H2O를 첨가하여 CuSO4·5H2O 용액을 만듭니다. 그런 다음 조직에 적용하기 전에 CuSO4·5H2O 용액에 600μM Alexa488-아지드 용액 1:40과 L-Na+ 아스코르브산염 10mg/mL를 추가합니다.

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공개 사항

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선언된 이해 상충이 없습니다.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
5-에티닐-2'-데옥시우리딘(Edu)카르보신스NE08701
알렉사-488 아지드써모 피셔 사이언티픽(Thermo Fisher ScientificA10266
안티 치킨 네스틴아베스증권 시세 표시기; RRID: AB_2314882
안티 염소 DCX산타 크루즈고양이# SC_8066; RRID: AB_2088494
안티 마우스 Tbr2써모 피셔 사이언티픽(Thermo Fisher Scientific14-4875-82; RRID: AB_11042577
컨포칼 소프트웨어(Zen Black)Zeiss 현미경 검사젠 2.3 SP1 FP1 (블랙)
구리 (II) 황산염 5수화물써모 피셔 사이언티픽(Thermo Fisher ScientificAC197722500
커버슬립덴빌 사이언티픽M1100-02
플러스 차지 슬라이드덴빌 사이언티픽M1021
인산염 완충 용액(PBS)써모 피셔 사이언티픽(Thermo Fisher Scientific10010031
슈퍼 PAP 펜 4mm 팁폴리사이언스24230
트리스 버퍼 솔루션(TBS)시그마-알드리치T5912
트리톤 X-100시그마-알드리치93443
) ) ) ) 년

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