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방법 논문

쥐 모델에서 뇌 미세출혈 감지

811 조회수

2025년 7월 8일

이 논문에서

초록

출처: Li, D., Zhào, H., et al. 쥐에서 지방 다당류 주입에 의해 유발된 아급성 뇌 미세출혈. J. Vis. 특급. (2018).

이 비디오는 쥐 모델에서 뇌 미세출혈(CMH)을 감지하는 분석을 보여줍니다. CMH는 누출된 적혈구(RBC)로 식별되는 혈액-뇌 장벽 파괴로 인한 뇌출혈입니다. 쥐 모델에서 고정된 뇌 조직은 적혈구에 대한 헤마톡실린-에오신(hematoxylin-eosin)으로 동결 보호되고 절편화되고 염색되어 CMH의 현미경 시각화가 가능합니다. 누출된 적혈구는 현미경에서 빨간색-주황색으로 나타납니다.

프로토콜

동물 샘플과 관련된 모든 절차는 해당 동물 윤리 검토 위원회에 의해 검토되고 승인되었습니다.

1. 재료

  1. 지질다당류(LPS) 주사의 준비
    1. Salmonella typhimurium에서 추출한 LPS 분말 25mg에 증류수 25mL를 최종 농도 1mg/mL까지 추가합니다. 주사를 4°C의 멸균 튜브에 보관하십시오.
      주의: LPS는 독성이 있습니다.
    2. EB 주입을 작업 농도로 유지하기 위해 일반 0.9% 식염수에 2% Evans blue(EB) 용액을 준비합니다.

2. 동물

복강내 주사로 10주령(평균 체중: 280 ± 20g)의 수컷 Sprague-Dawley(SD) 쥐에게 LPS를 투여합니다.
주의: 다른 조직에서 쥐를 구입하는 경우 적응 단계는 7일 이상이어야 합니다.

3. LPS 주입

  1. 각 쥐에게 1mg/kg의 용량으로 복강내 LPS를 주입하고 쥐를 집 우리로 되돌립니다.
    메모: 마취는 필요하지 않습니다.
  2. 6 시간 후, 쥐에게 동일한 용량의 LPS 주사를 주입합니다.
  3. 16시간 후 동일한 용량의 LPS를 쥐에게 주입합니다.
    주의: SD 랫트에 1mg/kg의 용량으로 LPS를 주입하면 5%의 폐사율이 발생할 수 있습니다. 사망률은 젊거나 나이가 많은 쥐 또는 임신한 암컷 쥐에서 더 증가할 수 있습니다.
  4. LPS 주입 후 쥐를 우리로 되돌리고 음식과 음료에 대한 임시방편을 제공합니다.
    메모: 쥐는 뚜렷한 전신 염증 반응을 보이므로 실험 내내 케이지를 깨끗하게 유지하는 것이 중요합니다. 쥐는 첫 번째 LPS 주입 후 체중, 일반적인 외모 및 태도를 자주(2회) 모니터링해야 합니다. 쥐가 구부정한 자세를 보이기 시작하고, 움직이기를 꺼리고, 상당한 체중 감소(>20%)를 보이며, 포르피린이 염색되어 7일간의 EB 연구 종료 시점 전에 인도적으로 안락사됩니다.

4. 샘플 수집

  1. EB 주입
    1. 첫 번째 주사 후 7일 후에 승인된 IACUC 프로토콜에 따라 랫드를 복강내로 마취합니다.
    2. 쥐가 각막 반사 반응을 보이지 않을 때까지 1-2분 동안 기다립니다. 각 쥐에 대해 5-8mm 깊이의 심장 천자를 수행합니다. 천자 지점은 3번째 및 4번째 늑간 공간에서 흉골의 왼쪽 가장자리에서 5mm 떨어져 있어야 합니다.
    3. 혈액 회복이 관찰될 때까지 기다렸다가 체중 0.2mL/체중 100g의 용량으로 EB를 좌심심실에 주사합니다.
      주의: 심장 천자와 EB 주사는 신중하게 수행해야 합니다. EB는 좌심실 대신 흉강이나 심낭에 주입할 수 있습니다.
      1. 빈 튜브로 다시 빨아들이고 주입 전에 이 부피를 EB 튜브로 교체하여 실패율을 줄이는 데 도움이 됩니다(: 실수로 흉곽에 주입).
    4. 쥐를 10분 동안 누운 자세로 유지합니다.
      참고: 면역형광 영상에서 EB 누출을 감지하는 데 샘플을 사용하지 않는 경우 이 단계를 생략할 수 있습니다.
  2. 총체적인 관찰
    1. 얼음처럼 차가운 1M 인산염 완충 식염수(PBS)를 사용하여 심장 관류를 수행하여 뇌 혈관 구조와 뇌를 청소합니다.
      1. 메스를 사용하여 횡격막 전체에 걸쳐 복부를 절개합니다.
      2. 흉곽 정중선 바로 왼쪽의 갈비뼈를 자릅니다.
      3. 흉강을 엽니다. 클램프를 사용하여 심장을 노출시키고 혈액 및 기타 체액의 배출을 용이하게 합니다.
      4. 겸자로 심장을 꾸준히 잡으면서(심장은 여전히 박동하고 있어야 함) 좌심실의 돌출부에 바늘을 직접 삽입하여 약 5mm까지 연장합니다.진입점 근처에서 클램핑하여 해당 위치에 바늘을 고정합니다.
        주의: 바늘은 내부 벽을 뚫고 용액의 순환을 손상시킬 수 있으므로 바늘을 과도하게 늘리지 마십시오.
      5. 밸브를 해제하여 관류 펌프를 사용하여 약 20mL/분의 속도로 느리고 일정한 속도로 얼음처럼 차가운 PBS 용액(200–300mL)이 흐르도록 합니다. 동물이 총체적인 관찰 대신 고정이 필요한 경우 동일한 용량의 얼음처럼 차가운 0.9% 식염수를 사용하십시오.
      6. 날카로운 가위를 사용하여 심방을 절개하여 용액이 계속 흐르도록 합니다. 액체가 자유롭게 흐르지 않거나 동물의 콧구멍이나 입에서 나오는 경우 바늘의 위치를 조정하십시오.
    2. 총 관찰에 의한 CMH 스크린.
      메모: 총 관측치에 의한 CMH 수를 계산하는 데 표본이 사용되지 않는 경우 이 단계를 생략할 수 있습니다.
  3. 고정
    1. 얼음처럼 차가운 0.9% 식염수(200–300mL)를 사용하여 심장 관류를 수행하여 뇌 혈관 구조와 뇌를 청소합니다.
    2. 고정을 위해 얼음처럼 차가운 4% 파라포름알데히드를 사용하여 심장 관류를 수행합니다.
    3. 쥐의 목을 베고, 뇌를 분리하고, 뇌를 20% 자당 용액에 최소 6시간 동안 담그십시오.
    4. 용액을 30 % 자당으로 변경하고 6 시간 더 고정하십시오.
  4. 저온 유지 장치를 사용하여 10mm 두께의 뇌 조직 절편을 준비합니다.

5. 헤마톡실린 및 에오신 (HE) 염색

참고: 이 절차는 HE 염색 키트를 사용하여 수행됩니다.

  1. 슬라이드를 증류수로 씻으십시오.
  2. 헤마톡실린 용액에 8분 동안 염색합니다. 흐르는 수돗물에 5분 동안 씻습니다.
  3. 1% 산성 알코올을 30초 동안 구별합니다. 흐르는 수돗물에 1분 동안 씻습니다.
  4. 0.2% 암모니아수(블루잉) 또는 포화 탄산리튬 용액에 30초에서 1분 동안 염색하고 흐르는 수돗물에 5분 동안 세척합니다.
  5. 95% 알코올(10딥)로 헹굽니다.
  6. 에오신 용액으로 30초에서 1분 동안 카운터 스테인합니다.
  7. 95% 알코올을 통해 탈수하고 절대 알코올을 두 번 변경하여 각각 5분 동안 합니다.
  8. 크실렌에서 30초 동안 클리어합니다.
  9. Liu의 방법을 사용하여 마운트합니다.
  10. 명시야 형광 현미경을 사용하여 분석합니다.
    메모: CMH의 구성 요소인 혈관에서 방출된 적혈구는 HE 염색 아래에서 적색-주황색으로 나타납니다.

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공개 사항

선언된 이해 상충이 없습니다.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
증권 시세시그마-알드리치L-2630염증 유도에
EB (EB시그마 알드리치E2129EB 누출 감지용
HE 염색솔라바이오G1120HE 염색용 키트
클로랄 하이드레이트시그마-알드리치47335U마취용
인산염 완충액 식염수(PBS)솔라바이오P1022실험에 일반적으로 사용되는 일종의 완충 용액
0.9% 식염수Hainan DonglianChangfu Pharmaceutical Co., Ltd., 중국관류를 위한 솔루션
파라포름알데히드시그마-알드리치158127고정에 일반적으로 사용되는 일종의 솔루션
20% 자당 용액솔라바이오G2461고정에 일반적으로 사용되는 일종의 솔루션
30% 자당 용액솔라바이오G2460 (영문고정에 일반적으로 사용되는 일종의 솔루션
수의사 연고솔코세릴 아이 젤, 바셀, 스위스쥐의 눈 보호를 위해
표시기 ) (영문) )

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