1. 체벽 준비
참고: 세 번째 instar 유충 체벽의 준비(체벽 근육에 신경을 분포시키는 NMJ 연구를 위해)는 앞서 설명한 대로 수행되었지만 일부 수정이 가해졌습니다.
- 해부
- 표준 절차를 사용하여 25 ° C에서 5-6 일 동안 플라이 스톡과 십자가를 들어 올립니다.
- 가는 집게를 사용하여 바이알이나 병에서 기어다니는 세 번째 instar 유충을 선택합니다.
- 인산염 완충 식염수(PBS)가 들어 있는 작은 페트리 접시에 유충을 씻어 음식물 입자를 제거합니다.
- 유충 한 마리를 실가드 디스크에 놓고 얼음처럼 차가운 PBS 몇 방울에 담그십시오. 얼음처럼 차가운 PBS를 사용하면 유충을 기절시켜 더 쉽게 조작할 수 있습니다. 해부 전반에 걸쳐 제제가 건조되지 않도록 항상 PBS에 잠겨 있는지 확인하십시오.
- 해부 현미경으로 두 개의 기관관이 보이도록 등쪽이 위를 향하도록 유충을 배치합니다(그림 1A). 집게를 사용하여 미세한 핀을 잡고 유충을 첨탑 근처의 뒤쪽 끝에 고정합니다(그림 1B). 다른 핀으로 입 고리 근처의 앞쪽 끝에 있는 큐티클을 뚫습니다. 유충을 세로로 부드럽게 늘린 다음 고정합니다(그림 1B).
- 현미해부 가위를 사용하여 핀 근처의 뒤쪽 끝을 꼬집어 작은 구멍을 만듭니다. 절개 부위는 큐티클을 통과할 수 있을 만큼 충분히 피상적이어야 합니다.
- 가위의 아래쪽 날 끝을 절개 부위에 놓고 두 기관 기관 사이의 등쪽 정중선의 전체 길이를 따라 자릅니다(그림 1C). 절단할 때 복부 체벽 근육이 손상되지 않도록 가위날을 약간 위쪽으로 향하게 하십시오.
- 후방에 배치된 핀보다 약간 앞쪽에 작은 수평 절개를 만듭니다(그림 1C). 앞쪽에 배치된 핀의 약간 뒤쪽에 또 다른 유사한 절개를 만듭니다(그림 1C). 절개 부위는 큐티클을 통과해야 합니다.
참고: 1.1.7단계와 1.1.8단계의 절개 3개를 합쳐 "
"와 같아야 하며, , 즉 유충 몸체의 등쪽에 왼쪽과 오른쪽 절개가 생성되어야 합니다.
- 집게로 내부 장기를 조심스럽게 청소하십시오. PBS를 몇 방울 강하게 떨어뜨리면 유충 몸에서 장기를 옮기는 데 도움이 되므로 더 쉽게 제거할 수 있습니다. 유충의 몸을 찌르면 체벽 근육에 손상을 줄 수 있으므로 피하십시오.
- 유충 몸체를 펼치고 모서리를 고정합니다(그림 1D). 고정할 때 체벽을 수평 및 수직으로 늘려 균일한 장력의 직사각형을 형성하고(모양은 그림 1G 참조) 이 과정에서 체벽 근육이 찢어지지 않도록 주의하십시오.
- 남아 있는 내부 장기를 모두 제거합니다(그림 1E).
- 정착 및 투과
- 고정된 체벽을 Bouin's Solution 몇 방울에 담그십시오. 얼음 위에서 15분 동안 배양합니다. 또는 4% 파라포름알데히드(PFA)를 대체 고정제로 사용합니다. 30분 동안 배양합니다.
- 인산염 완충액 식염수 트리톤(PBT)으로 3번 헹굽니다.
- 가는 집게를 사용하여 핀을 조심스럽게 제거하고 모서리를 통해 본체 벽을 실리콘화된 0.65ml 마이크로 원심분리기 튜브로 옮깁니다. 위치
- PLA가 준비될 때까지 4°C의 PBT에 체벽을 보관하십시오. 최적의 결과를 얻으려면 박리 후 하루나 이틀 이내에 체벽의 면역 염색을 시작하십시오.
참고: 시약을 절약하고 분석 중에 모든 체벽이 동일하게 처리되도록 하기 위해 다른 유전자형을 단일 튜브에 배치할 수 있습니다. 유전자형은 체벽의 모서리를 다르게 절단하여 구별할 수 있습니다(예: 그림 1F 참조).
2. 면역조직화학
참고: 세 번째 instar 유충 체벽의 면역 염색은 앞서 설명한 대로 수행되었지만 일부 수정이 있었습니다.
참고: 달리 명시되지 않는 한 실온에서 부드럽게 교반하여 모든 단계를 수행하십시오.
- 블로킹
- PBT로 체벽을 각각 10분씩 3회 세척합니다.
- 1% 소 혈청 알부민(BSA)으로 1시간 동안 차단
- 면역염색
- 관심 단백질(1% BSA로 희석)을 두 개의 관심 단백질(1% BSA로 희석)에 대항하여 마우스 및 토끼 1차 항체로 체벽을 실온에서 2시간 동안 또는 4°C에서 하룻밤 동안 배양합니다. 이 경우 1:10 마우스 anti-Dlg(Dlg = 디스크 대형) 및 1:250 토끼 anti-HtsM(HtsM: Hu-li tai shao mutant)을 사용합니다. 생쥐나 토끼에서 만들어지지 않은 마커에 대한 항체도 포함될 수 있습니다 — 예: , 1:200 염소 항-Hrp (Hrp = 양고추냉이 과산화효소)를 사용하여 신경세포막을 묘사합니다.
- PBT로 각각 10분씩 3회 세탁합니다.
- 형광단 접합 2차 항체를 사용하여 실온에서 2시간 동안 또는 4°C에서 하룻밤 동안 마커(1% BSA로 희석)를 검출합니다. PLA 신호가 나중에 적색 형광단으로 시각화될 때, 마커를 검출하기 위해 다른 형광단을 사용해야 합니다 — 예: , 1:200 Fluorescein isothiocyanate (FITC)-conjugated anti-goat를 사용하여 염소 anti-Hrp 항체를 검출합니다. 빛에 민감한 시약을 사용하기 때문에 이 시점부터 튜브를 어두운 곳에 보관하십시오.
참고: 사용되는 키트는 마우스와 토끼에서 생성된 1차 항체 간에 PLA를 수행할 수 있도록 하며, 신호는 컨포칼 현미경 검사에서 빨간색 채널에 시각화됩니다. 원하는 경우, 다른 종에서 발생한 1차 항체와 다른 채널에서 시각화된 신호로 분석을 수행할 수 있는 다른 키트를 사용할 수 있습니다.
3. 근접 결찰 분석
참고: 달리 명시되지 않는 한 모든 단계를 실온에서 부드럽게 저어 수행하십시오.
- PLA 프로브
- PBT로 체벽을 각각 10분씩 3회 세척합니다.
- PLA 프로브(1% BSA에 각각 1:5 희석)로 37°C에서 2시간 동안 배양합니다. 이 경우 40μl의 PLA 프로브 anti-mouse MINUS, 40μl의 PLA 프로브 anti-rabbit PLUS 및 120μl의 1% BSA를 사용하여 5-10개의 체벽의 적절한 침수 및 혼합을 보장합니다. PLA 프로브를 최대 1:25 희석해도 여전히 적절한 신호 대 잡음비(이 실험의 경우 , 즉 )를 얻을 수 있습니다.
- 결찰
- Wash Buffer A로 체벽을 각각 5분씩 두 번씩 세척합니다.
- Ligation 용액(Ligation buffer에서 Ligase 1:40 희석)으로 37°C에서 1시간 동안 배양합니다. 이 경우 5 μl의 리가아제, 40 μl의 5 결찰 완충액 및 155 μl의 고순도 물을 사용하여 5-10 체벽의 적절한 침지 및 혼합을 보장합니다.
- 증폭
- Wash Buffer A로 체벽을 각각 2분씩 두 번씩 세척합니다.
- 증폭 용액(증폭 완충액에서 중합효소 1:80 희석)으로 37°C에서 2시간 동안 배양합니다. 이 경우 2.5 μl의 중합효소, 40 μl의 5 증폭 완충액 및 157.5 μl의 고순도 물을 사용하여 5-10 체벽의 적절한 침지 및 혼합을 보장합니다.
- 이미징 준비
- Wash Buffer B로 체벽을 각각 10분씩 두 번 세척합니다.
- 0.01x 워시 버퍼 B로 1분 동안 한 번 세척합니다.
- 장착하기 전에 최소 30분 동안 장착 용액 몇 방울로 평형을 이루거나 4°C에서 밤새 보관하십시오.
- 가는 집게를 사용하여 큐티클이 아래를 향하도록 하여 체벽을 플랫폼 슬라이드로 조심스럽게 옮깁니다. 몸체 벽을 행으로 배치하고 마운트턴트 한두 방울 이내에 동일한 방향으로 배치합니다. 기포가 발생하지 않도록 주의하면서 준비물 위에 22mm x 40mm 커버슬립을 놓고 투명한 매니큐어로 슬라이드를 밀봉합니다.
- 컨포칼 이미징이 준비될 때까지 -20°C의 어두운 곳에 슬라이드를 보관하십시오.