1. 트립틱 소화
1. 얼음에서 샘플을 해동합니다.
2. 진공 농축기에서 샘플을 완전히 건조시킵니다.
3. 50 μL의 적절한 분해 완충액(예: 50 mM 중탄산암모늄)으로 시료를 채웁니다.
4. 200mM 1,4-디티오트레이톨 1.25μL를 첨가한 후 써모믹서를 사용하여 60°C 및 300rpm에서 30분 동안 샘플을 배양하고 나중에 실온(RT)으로 냉각합니다.
5. 그런 다음 1.36μL 0.55M 요오드아세트아미드를 첨가한 후 어둠 속에서 30분 동안 RT에서 샘플을 배양합니다.
6. 샘플에 적절한 양의 트립신을 첨가하고 37°C에서 하룻밤(~16시간) 샘플을 배양합니다.
참고: 1,000,000 μm2의 경우 0.1 μg의 트립신이 충분한 것으로 나타났습니다.
7. 2.6μL의 10% 트리플루오로아세트산(TFA)을 샘플에 추가하여 분해를 중지합니다(0.5% TFA의 말단 농도).
8. 진공 농축기를 사용하여 샘플을 완전히 건조시킵니다. 그런 다음 정의된 최종 부피까지 샘플을 0.1% TFA로 채웁니다. NMG 샘플은 최대 20μL까지 충전되었으며 그 중 5μL는 하나의 질량 분석(MS) 실험에 사용되었습니다.
9. 추가 사용이 있을 때까지 샘플을 -80°C에서 보관하십시오. 아미노산 분석 또는 다른 적절한 정량 분석법(예: Direct Detect)을 통해 펩타이드 농도를 측정합니다.
참고: 낮은 샘플 양은 언급된 기술을 사용하여 정량화하지 못할 수 있습니다. 동일한 시료 주입을 보장하기 위해 각 시료에는 동일한 양의 분리된 조직이 포함되어야 하며 모든 시료는 동일하게 처리되어야 합니다.
2. 고성능 액체 크로마토그래피 및 질량 분석
법
참고: 다음 고성능 액체 크로마토그래피(HPLC) 질량 분석(MS) 분석은 여기에 사용된 트래핑 컬럼 장치 및 질량 분석기를 사용하여 특정 LC 시스템에 최적화되어 있습니다(재료 표 참조).). 다른 LC 및 MS 시스템의 경우 파라미터를 조정하는 것이 좋습니다.
- Xcaliber 소프트웨어를 사용하여 HPLC 설정을 다음과 같이 조정합니다.
- 트랩 열: 온도를 60°C로, 유속을 30μL/min으로, 버퍼를 0.1% 트리플루오로아세트산으로 설정합니다.
- Analytical C18 역상 컬럼: 온도를 60°C로, 유속을 30μL/min으로, 버퍼 A를 0.1% 트리플루오로아세트산으로, 버퍼 B를 84% 아세토니트릴로, 98분 동안 버퍼 B를 5%-30%로 구배로 설정합니다.
참고: 그라디언트의 적응은 불가피할 수 있으며 다른 조직이나 세포를 사용할 때 강력히 권장됩니다. 총 그래디언트 시간은 그래디언트 시작 시 샘플 로딩과 그래디언트 종료 시 샘플 세척으로 인해 달라질 수 있습니다. 이 프로토콜의 총 그래디언트는 7분 샘플 로딩과 15분 동안의 추가 컬럼 세척으로 구성되며, 총 그래디언트 시간은 120분입니다.
- HPLC 소프트웨어 로드맵 메뉴에서 찾을 수 있는 XCalibur 기기 설정을 사용하여 데이터 종속 수집(DDA) 방법을 만듭니다.
- Global Parameters 탭에서 주입 모드 액체 크로마토그래피, 예상 LC 피크 너비(30초) 및 기본 전하 상태(2)를 정의합니다.
- 스캔 매개변수 탭으로 이동하여 MS OT, MIPS, INTENSITY, CHARGE STATE, DYNAMIC EXCLUSION 및 ddMS2 OT HCD와 같은 스캔 및 필터를 언급된 순서대로 추가합니다.
최적의 MS 및 DDA 설정은 사용되는 특정 질량 분석기와 샘플 유형에 따라 다를 수 있으므로 조정해야 합니다. - 불활성 질량 분광 유리 바이알 주입구에서 0.1% TFA의 정의된 부피로 200-400ng의 샘플 펩타이드를 용해하여 샘플을 준비합니다. 시료 양이 적어 농도 측정을 적용할 수 없는 경우 총 이온 전류(TIC)를 비교하여 동일한 시료 주입을 확인합니다.
참고: 이렇게 하려면 적절한 소프트웨어(예: FreeStyle)에서 질량 분석 결과 파일을 열고 크로마토그램을 확인합니다. 강도는 모든 샘플에 대해 비슷해야 합니다. 대표적인 TIC가 그림 1에 나와 있습니다. - MaxQuant, Progenesis QI for Proteomics, Proteome Discoverer와 같은 프로테오믹스에 적합한 소프트웨어를 사용하여 얻은 원시 데이터를 분석하고 연구 질문을 기반으로 통계 데이터 분석을 수행합니다.
3. MaxQuant
- 로드를 클릭하여 원시 데이터 헤더의 MaxQuant 소프트웨어에 원시 파일을 로드합니다.
- 실험 설정을 클릭하여 샘플 이름을 할당합니다.
- 그룹별 매개변수를 정의합니다. 먼저 수정 사항을 추가합니다. 시료 처리로 인해 가변 변형으로 Deamidation (NQ), Oxidation (M) 및 Carbamidomethylation (N-term)을 선택하고 Carbamidomethylation (C)를 고정 변형으로 추가합니다.
- Digestion(소화) 탭에서 Trypsin을 digestion enzyme(소화 효소)로 선택합니다.
- Label Free Quantification 탭에 Label Free Quantification 옵션 LFQ를 추가합니다. 10개 이상의 파일을 처리해야 하는 경우 빠른 LFQ 옵션을 선택하여 처리 시간을 단축합니다. 단백질 정량화를 위한 척도로 iBAQ 옵션을 추가합니다.
- 다른 모든 그룹별 매개 변수가 공장 설정에 남아 있는지 확인합니다.
- 전역 매개 변수 탭으로 이동하여 시퀀스 탭의 uniprot.org 에서 파생된 FASTA 파일을 추가합니다. 그에 따라 식별자 규칙을 수정하고 분류 ID(이 경우 호모 사피엔스의 경우 9606)를 추가합니다.
- 단백질 정량화를 위해 Unique 및 Razor 펩타이드를 선택하십시오.
- 다른 모든 전역 매개 변수가 공장 설정으로 유지되는지 확인합니다.
- 시작을 클릭하고 Perseus에서 추가 분석을 위해 MaxQuant 분석 후 proteingroups.txt 출력을 검색합니다.