Method Article

불연속 Percoll - 자당 밀도 구배를 사용하여 마우스를 접속에서 Synaptoneurosomes의 준비

DOI:

10.3791/3196

⸱

September 17th, 2011

 ,  ,  , 
1Department of Pathology and Laboratory Medicine, Waisman Center for Developmental Disabilities, University of Wisconsin, 2Department of Biochemistry, Waisman Center for Developmental Disabilities, University of Wisconsin

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

마우스 뇌 피질에서 translationally 활성화, 손상 synaptoneurosomes (SNS)를 준비하는 방법을 설명합니다. 이 메서드는 활성화된 SNS의 빠른 준비를 위해 허용하는 불연속 Percoll - 자당 밀도 기울기를 사용합니다.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Synaptoneurosomes (SNS)는 마우스 뇌 피질의 균질화 및 분별화 후 얻을 수 있습니다. 그들은 vesicles 또는 대뇌 피질의 조직이 균질 때 축삭 터미널에서 멀리 휴식 격리 터미널을 resealed 있습니다. SNS는 시냅스 전달의 연구에 유용하게하는, 사전과 postsynaptic 특성을 보유합니다. 그들의 연결 신호에 사용되는 분자 기계를 유지하고 이해, 스토리지 및 신경 전달 물질의 릴리스 할 수 있습니다.

적극적인 SNS의 생산과 격리 세포 독성하고 의한 SNS의 기계적 손상이 낮은 활동에 발생할 수 고밀도, 그리고 여과 및 원심 분리 방식에 의한 확장 원심 분리를 요구할 수 Ficoll 같은 문제를 사용하여 medias 수 있습니다. 그러나, SNS를 분리 불연속 Percoll - 자당 밀도 그라디언트의 사용 translationally 적극적인 SNS의 좋은 수율을 생산하는 빠른 방법을 제공합니다. 이 펠렛 SNS 그리고이 기계 고장의 원인이되는, isotonic 조건을 고용하고 적은 짧은 원심 분리를 돌면서을 보유하고 원심 분리 단계를 피할 수로 Percoll - 자당 기울기 방법은 신속하고 부드러운 있습니다.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. 준비 1-4

  1. 2.5 M의 자당 슬러리의 50 ML을 혼합하여 500 그라디언트 매체의 ML (GM) 버퍼를 준비, 1M 트리스 - HCL, pH7.5 주식 및 0.5 m EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) 0.1 ML 2.5 ML, 산도와 8.0 주식 밀리 볼륨 Q 물. 솔루션 나누어지는 및 저장 냉동을 소독 필터.
  2. 밀리 Q H 2 O.에서 1 ㎜ 솔루션을 만들어 테트로도톡신 (TTX)의 1000x 재고를 준비 TTX의 Aliquots는 -20 ° C.에 저장할 수 있습니다
  3. 밀리 Q 물 100 MM 트리스 (산도 7.5), 5 솔루션 MM 나 2 HPO 4, 4 MM KH 2 PO 4, 40 MM NaHCO 3, 800 MM NaCl을 만들어 10X 자극 버퍼를 준비합니다. 주식은 4 저장할 수 있습니다 ° C.
  4. 사전 냉각 원심 분리기에 4 ° C.
  5. 밀리 Q 물 2.5 M의 자당 (2 ML) 1 볼륨에 Percoll (18 ML) 9 볼륨을 추가하여 Isosmotic Percoll (SIP)의 주식 솔루션을 준비하고 잘 섞는다.
  6. GM 버퍼 SIP의 각 금액을 추가하고 각각을 혼합하여 3, 10, 15, 23 %의 그라데이션 레이어를 준비 :

그라데이션 시리즈 테이블; 완충액 데이터; 농도 대 기울기 백분율; 연구.

  1. P1000 Gilson Pipetman을 사용하여 대문자로 베크 만의 원심 튜브에 2 ML 23, 15, 10 각각 3 % isosmotic Percoll 솔루션을 pipetting하여 그라데이션 레이어를 붓고. 레이어 사이의 인터페이스는 레이어없이 혼합과 함께 명확하게 뚜렷한해야합니다. 사용하기 전에 적어도 20 분 4 ° C에서 그라디언트를 저장합니다. 당일 사용이 권장되지만 그라디언트 24까지 시간 동안 저장할 수 있습니다. [경험 실험실 인원은 레이어 인터페이스의 시각화를위한 isomotic Percoll 솔루션 파란색 염료를 추가하여 준비 그라디언트를 연습할 수 있습니다.]

2. 마우스 해부 1

  1. 모든 마우스 축산과 안락사 절차 NIH 대학 지침에 따라 수행되었는지 확인합니다. 이산화탄소 질식이나 동물 프로토콜의 승인하는 방법으로 새​​끼 (연령 P13로 P21)를 안락사.
  2. 해부 보드에 마우스를 핀과 에탄올과 목 및 머리의 뒤쪽을 스프레이. 두개골의 기지에서 척수를 통해자를 날카로운 가위를 사용하여, 두개골의 맨에서 피부를 제거 정수리 뼈 및 interparietal 뼈 사이에 또​​는의 꿈과 피질 영역 사이에 옆으로 두개골을 잘라. 그런 다음 기지에서 코 (sagital 봉합 따라)에 두개골을 잘라, 조심스럽게 옆으로 각 반구를 당겨 부드러운 정수리 뼈를 제거하고 주걱으로 피질을 제거합니다. 소뇌 위 두뇌에 주걱을 넣고 다음 피질을 꺼내서 얼음처럼 차가운 GM 버퍼에 넣습니다. 균질화 단계로 바로 진행합니다. cortices 이것이 부정적인 SNS의 형성에 영향을 미칩니다 매우 오랫동안 얼음처럼 차가운 버퍼에 앉히지 마십시오.

3. homogenate 및 SNS 1-4 준비

  1. 얼음처럼 차가운 GM 버퍼에 cortices을 씻어 차가운 GM 버퍼의 5 ML을 포함하는 유리 다운스 호모 지 나이저 두 cortices을 전송하기만하면됩니다.
  2. 부드럽게 풀어 유봉의 50-10 스트로크와 cortices를 균질 (유봉 "A"), 꽉 유봉 (유봉 "B")의 50-10 스트로크로 따라갔다. 뇌졸중은 신속한하지만 기포를 발생하지 않는 정도로 천천히해야합니다. 균질 후 homogenate의 사진이 계획 1입니다. 뇌졸중의 수는 각 균 질기와 함께 pestles에 따라 달라질 수 있습니다. 언제 그라디언트가 뇌졸중의 번호를하지 않을 경우 강력한 SN 밴드를 제공한다 조정 완료.
  3. 펠렛 셀룰러 파편과 핵 4시 15 ML 원뿔 10 분 1000xg에서 원심 ° 스윙 버킷 로터에서 C (Allegra 6KR 원심 분리기)에 homogenate을 전송합니다. 스펀 homogenate의 사진이 계획 1입니다.
  4. 4 5 분 32,500 XG에서 Percoll - 자당 기울기, 캡 튜브, 그리고 원심 당 뜨는의 레이어 2 ML ㆍ 고정 앵글 로터에서 C (베크 만 J2 - 21 원심 분리기, JA - 17 로터 ()는 적절한 어댑터를 사용 ) 시약 및 장비 표를 참조하십시오.
  5. 오프 피펫과 유리 파스퇴르 피펫을 사용하여 SN 밴드 위의 솔루션을 폐기. 23분의 15 %의 인터페이스에서 SN 밴드에서 피펫, 얼음에 원뿔과 가게에 전송할 수 있습니다. 각각의 기울기 또는 한 피질 SN의 0.9-1.1 ML을 생산합니다.
  6. 12 NM의 최종 농도 1000x CaCl 2를 추가하고 특이 현상이 여기을 억제 1 μm의의 최종 농도 1 MM TTX 주식을 추가 10X 자극 버퍼의 10 분의 1 볼륨을 추가하여 SNS의 ​​소금 농도를 조정합니다. (이것은 다운 스트림 SN 응용 프로그램에 영향을 줍니까 경우 CaCl 2의 추가는 선택 사항입니다.)
  7. 마이크로 BCA 단백질 분석 키트를 사용하여 SNS의 단백질 농도를 결정합니다. (브래드 포드 단백질 분석이 때문에 Percoll에서 추론을 권장하지 않습니다.)
  8. SNS는 단백질 transla 직접 신속하게 사용할 수 있습니다기 연구. 다른 응용 프로그램에 대한 SN lysate는 청소 또는 피어스 SDS - PAGE 샘플 준비 키트를 사용하여 집중 수 있습니다.

4. 대표 결과 :

마우스 대뇌 피질이 불연속 Percoll - 자당의 그라디언트 (제도 1), 6 밴드 또는 분수에 균질하고 분리되었을 때 (그림 1) 볼 수 있었다. 그것은 이전에 높은 분자량 밴드의 성분이 멤브레인 및 myelin 상처와 pelleted 자료 (표 1) mitochondria 또는 organelles 포함된 것을 대뇌 피질 3,5 쥐에 대한 표시되었다. 23 % / 15 % 인터페이스 (밴드 5) 농축 SNS가 포함되어 있습니다.

그대로 SNS를 포함 23 % / 15 % 인터페이스에서 밴드는 등 이전에 설명한 전자 현미경 (EM)에 의해 제거되고 검사되었습니다. 2,6 그들이 그대로 시냅스 vesicles의 존재와 presynaptic 및 postsynaptic 요소의 보전 (그림을 보여주 2). 사전 및 postsynaptic 구획의 분리는 신호와 두 구획에서 발생 단백질 합성을 조사하는 것이 중요합니다. 7-13 Percoll - 자당 기울기 우리가 SN 분율의 작은 세포, 핵 및 organelle 오염을 보았다 그래서 원유 정제하지만 전체 분리 좋았어요.

서양 얼룩 검사를하면, Percoll의 분수는 SN 밴드 (그림 3, 표 2)에서 시냅스 순도 증가 예상 단백질 마커가 포함되어 있습니다. 시냅스의 연결과 마커는 풍부한 SN 밴드 (밴드 5) 유지했지만 다른 마커의 풍부한이 크게 감소되었다. 구조와 시냅스 마커가 유지 또는 개선하는 동안 특히, GFAP, glial 원산지 astrocyte와 종양 세포에 대한 표지 및 Lamin - B1, 핵 마커의 존재는 무시할 수 있었다. 또한, 단백질 합성에 역할을 같은 mitochondria와 잠돌군 Zz 등 organelles,에 대한 마커의 유지가 발생했습니다.

BCA 단백질 분석에 의해 결정으로 SN 밴드에 대한 일반적인 수율은 μL 당 단백질의 250-500 NG했다. SNS가 50 μm의 glutamate/10 μm의 글리신과 자극을 때 SNS의 ​​활동이 드 노보 단백질 합성의 양에 의해 결정되었다 [35S] - 메트로의 설립 (그림 4)에 의해 같은 모니터링을 제시 2. 자연적으로 흐르는 것과, 반사적으로 흐르는 translational 활동은 1.56 배 증가했다 (GLU) 또는 Pin1 억제제의 juglone와 활성화 배 5.12. Pin1 억제는 [35S] - 메트로의 설립에있는 증가 드 노보 단백질 합성에 의한되었는지 확인하려면 증가의 단백질 합성 2. 초래하는 것으로 알려져 있습니다, 우리는 40 μm의의 anisomycin, 단백질 합성 억제제를 추가하고, 정관에 표시된 감소를 봤어요 기초 수준에 비해 GLU의 존재와 부재 인치 또한, 2 %는 SNS의 ​​무결성을 방해 트리톤 - X 100의 추가에 따라, 기초 번역 75 % 감소했다. 2 또한, 대부분의 시냅스 마커 농축을 보여주 밴드 (B4 - B6) 검사 때, SNS 또는 밴드 5 드 노보 단백질 합성 (그림 5)에 대한 가장 큰 활동을했다. 따라서 불연속 Percoll - 자당의 그라디언트 신속하게 단백질 번역을 공부하는 데 사용할 수있는 매우 적극적이고 풍부한 SN 밴드를 생산하고 있습니다.

기계적 손상이 엄격한 조건에 의해 발생되기 때문에 불연속 Percoll - 자당 기울기 절차는 다른 방법보다 더 유리합니다. 대뇌 피질의 homogenate를 통과하는 여과 방식에 비해 크기 감소가 3,14-15 Percoll 방법이 큰 활동을 더 SNS를 형성되는 일련의 필터를 통해 전달됩니다. 로 여과 방법으로 준비 SNS의 ​​나누어지는이 23분의 15 %의 인터페이스에서 훨씬 적은 SNS와 깨진 세포막의 큰 금액이있다 Percoll - 자당 기울기를 통해 전달되었다 그림 6에서 볼. 드 노보 단백질 합성이 S35 - 충족의 설립을 통해 측정되었을 때, 여과 방법으로 준비 SNS (그림 7) 훨씬 덜 활성화되었다. translational 활동을 극대화하기 위해 우리는 나이가 P14와 P18 사이 마우스를 사용합니다. SN은 성인 마우스에서 준비하지만, 우리는 청소년 생쥐 (그림 8)에서 준비 SN와 함께 크게 증가 translational 활동을 볼 수 있습니다.

막, 미엘린, SN 및 소기관 분포를 자세히 설명하는 세포 구성 요소 표 다이어그램.
표 1. 균질 마우스 피질의 불연속 Percoll - 기울기 fractionations에서 밴드의 성분. 3,5

단백질 마커 발현표; 세포 구조에 대한 마커와 밴드의 비교 분석.
표 2. 불연속 Percoll - 자당 기울기 밴드 성분 서양 볼트 분석 요약. 밴드 분수의 각각에 대해 상대 단백질 농도는 불연속 Percol를 사용하여 격리나 - 자당 기울기는 서양 얼룩에 의해 결정됩니다. 없음 단백질 선물 (-), 0 ≥ 0.2 (+), 0.2 ≥ 0.8 (++), 또는> 0.8 (+++) 접어 N의 뜨는 (S, 피질 homogenate를 centrifuged) 대표의 단백질 선물보다 큰 = 3.

피질 해부, 완충액 균질화, 구배 원심분리, SN 밴드 분리 공정.
계획 1 : 불연속 Percoll - 자당 밀도 구배를 사용하여 SN 준비의 도식 마우스 뇌 cortices가, 해부 균질, 비 균질 조직, 세포 등 핵 및 세포막과 같은 전체 organelles를 제거하는 낮은 속도로 centrifuged했다.. 불연속 기울기 명확하게 레이어를 정의해야합니다. 삽입 그림은 레이어를 시각화하기 위해 설명을 목적으로 파란 염색되어있는 레이어의 예제를 보여줍니다. 뜨는은 불연속 Percoll - 자당 기울기 위에 계층과 중간 속도 centrifuged입니다. SN 대역은 다음 그라디언트에서 검색하고 사용할 준비가됩니다.

평형 밀도 구배 원심분리, 단백질 분리 분석을 위한 구배 밴드가 있는 다이어그램
그림 1. 불연속 Percoll - 자당 기울기에 Homogenate 분별화. 마우스 대뇌 피질은 균질 6 밴드 또는 분수로 상승을주는 불연속 Percoll - 자당 기울기에서 분리되었다. 정화, 활성 SNS는 (*) 밴드 5 발견되었습니다.

투과 전자 현미경 이미지, 빨간색 화살표가 있는 세포 소기관, 세포 구조 분석.
그림 2. SN의 준비는 presynaptic 및 postsynaptic 요소를 유지 SNS의 ​​이종 혼합주세요. C57BL / 6 마우스 (연령 P13로 P21)에서 준비 SN 준비의 전자 현미경을 보존 presynaptic과 postsynaptic 요소와 이전에 설명하고 보여주는 SNS로 수행되었다 2. 6 빨간색 화살표 지점 포스트 시냅스 밀도 수 있습니다. 스케일 바는 1 μm의 수 있습니다.

β-Actin, GFAP, SNAP25의 단백질 발현을 보여주는 웨스턴 블롯 결과; 밴드 1-6, S.
그림 3. SN의 준비 서양 얼룩 분석 시냅스와의 연결 마커가 정화 SNS 유지다고했다 (밴드 5) 그러나 다른 마커의 풍부한이 크게 감소했습니다. 뜨는의 Immunoblots (S, 대뇌 피질의 homogenate를 centrifuged)과 불연속의 밴드 1-6은 Percoll - 자당 기울기는 (postsynaptic 밀도 β - 굴지 (구조,로드 컨트롤), GFAP (astrocytic), GP73 (잠돌군 Zz), HSC70 (세포질과 핵), Lamin - B1 (핵), Prohibitin (mitochondrial) PSD95에 대한 읽혔어요 ), SNAP25 (시냅스), Synaptophysin (시냅스)와 β3 - Tubulin (신경 세포 특정). 밴드는 N = 3 대표, 폭풍 860 Phosphorimager를 사용하여 시각되었습니다.

단백질 전기영동 및 S35-Met 혼입 차트; Glu, Aniso 효과 분석.
그림 4. SNS가 활성화되고 [35S] - 메트로 정관을 통해 드 노보 단백질 합성을 나타냅니다. SNS는 ° C 10 분 37 미리 equilibrated되었습니다. 그렇다면 SNS 37 40 μm의의 anisomycin 또는 1 μm의의 juglone로 15 분에 대한 치료 또는 pretreated되었습니다 ° C 번 만났고, 20 μl 익스프레스 프로 라벨 플러스 또는 마이너스 GLU 37, S35 쉬운 태그 믹스 [35S]의 또한 다음 ° C 30 분. 샘플은, 피어스 SDS - PAGE 샘플 준비 키트를 사용하여 준비 15 % polyacrylamide 젤에서 실행, 건조 및 분자 역학 스톰 860 phosphorimager, N = 3 대표, ± SEM을 사용하여 quantitated되었습니다.

단백질 혼입 수준을 비교하는 겔 전기영동 및 막대 그래프; S35-Met 데이터를 보여줍니다.
그림 5. 불연속 Percoll - 자당 기울기에서 밴드 5 드 노보 단백질 합성의 최고 수준이 포함되어 있습니다. 밴드 4, 5 및 6 뜨는 (S, 대뇌 피질의 homogenate를 centrifuged가) 37 미리 equilibrated되었습니다 ° C 10 분. 그런 다음, [35S] - 만났고, 익스프레스 프로 라벨 믹스 S35 쉬운 태그가 추가, 플러스, 마이너스 37 GLU ° C 30 분했습니다. 샘플은, 피어스 SDS - PAGE 샘플 준비 키트를 사용하여 준비 15 % polyacrylamide 젤에서 실행, 건조 및 분자 역학 스톰 860 phosphorimager, N = 3 대표, ± SEM을 사용하여 quantitated되었습니다.

단백질 정제, 침전물 형성 튜브, 실험 결과 비교.
그림 6. 여과 방법에서 준비 SNS는 불연속 Percoll - 자당 기울기 방법에서 준비 SNS 이상 깨진 세포막 이하 모든 SNS가 포함되어 있습니다. SNS는 이전에 설명한대로 기공 크기를 감소로 필터 일련의를 통해 균질 피질을 전달하여 준비되었습니다. 여과 방법으로 준비 SNS의 ​​3,14-15 나누어지는가 불연속 Percoll - 자당 기울기를 통해 centrifuged과 이에 상응하는 금액에 비해되었습니다 불연속 Percoll - 자당 기울기 방법을 사용하여 소재.

SDS-PAGE 젤 및 S35-Met 통합의 막대 차트; 단백질 분석, 실험 결과.
그림 7. 여과 방법에서 준비 SNS는 SNS가 서있 준비 미만 드 노보 단백질 합성 활동을 포함m 불연속 Percoll - 자당 기울기 방법. SNS는 이전에 설명한대로 감소 기공 크기로 필터 3,14-15 일련의를 통해 균질 피질을 통과하여하고 불연속 Percoll - 자당 기울기 방법에 의해 준비되었다. 모두 준비에서 SNS 37 미리 equilibrated되었습니다 ° C 10 분. 그런 다음, [35S] - 만났고, 익스프레스 프로 라벨 믹스 S35 쉬운 태그가 추가, 플러스, 마이너스 37 GLU ° C 30 분했습니다. 샘플은, 피어스 SDS - PAGE 샘플 준비 키트를 사용하여 준비 15 % polyacrylamide 젤에서 실행, 건조 및 분자 역학 스톰 860 phosphorimager, N = 3 대표, ± SEM을 사용하여 quantitated되었습니다.

대조군 및 포도당 조건에서 단백질 샘플에 S35-Met 혼입을 보여주는 SDS-PAGE 젤 및 막대 그래프.
그림 8. 젊은 마우스 (P14)에서 SNS는 나이가 생쥐 (P85)보다 큰 translational 활동을했습니다. SNS가에 GLU와 함께 10 분 37 preequilibrated 불연속 Percoll - 자당 기울기 방법, ° C를 사용하여 서로 다른 세 생쥐의 준비를 취급 또는 치료했다 [35S]의 존재 - 메트로, 스냅 냉동, 30 분 (특급 프로 라벨 S35 쉬운 태그 믹스)와 나중에 피어스 SDS - PAGE 샘플 준비 키트와 청소. SNS는 다음 12% SDS - polyacrylamide 겔에서 실행 말린 N = 3, ± SEM의 분자 역학 스톰 860 phosphorimager, 대표에 몇 군데 있었다. P14 생쥐에서 SNS는 P85 생쥐보다 적어도 3 배 이상 활성화되었습니다.

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Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

여기에 설명된 불연속 Percoll - 자당 기울기 준비는 시냅스 전송 실험의 다양한 사용할 수 있습니다 적극적인 SNS를 분리하기 위해 빠르고 안정적​​인 방법입니다. Dunkley 외., 3,4가 개발한 방법을 기반으로 그라데이션이 방법은 서로 관련된 두 - 사전 및 postsynaptic 멤브레인 - 파생 vesicles를 분리 subcellular 두뇌 분획화 절차입니다. 더 정화 않고 이러한 SNS가 immunoprecipitation, 서부 blotting, 유동세포계측법 [35S]를 통해 - 메트로 정관, 전자 현미경, 그리고 효소 활동 assays 다양한 아이 소 머라 아제 포함하여 모니터링 드 노보 단백질 합성과를 포함한 분자 생물학 기법, 다양한와 호환됩니다 키나제 활동 assays.

불연속 Percoll - 자당 기울기 절차는 비교적 정직하고 있으나, 그것은 4 솔루션과 두뇌 자료를 유지하는 열쇠입니다 ° C 준비를 통해...

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Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

우리는 전자 현미경에 대한 위스콘신 매디슨 전자 현미경 시설의 대학에서 BK 8 월 감사드립니다. 이 작품은 NIH 보조금 R01 - DA026067 및 P30 - HD03352 (JSM)을 지원했다.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
시약의 이름 회사 카탈로그 번호 댓글 (옵션)
마이크로 BCA 단백질 분석 키트 찌르다 23,235
CaCl 2 어부 C79 - 500
CO 2 가스 Airgas (UW - MDS) CD 50
EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) RPI E57020
EtOH 어부 A407SK - 4
HCL 어부 A142 - 212
Percoll GE 헬스케어 17-0891-01
KH 2 PO 4 어부 P285 - 500
PierceSDS 페이지 샘플 준비 키트 찌르다 89,888
NaCl RPI S23020
NaHCO 3 어부 BP328 - 500
나이 검사하고 사진을 사 어부 S381 - 500
자당 RPI S24060
트리스베이스 RPI T60040
테트로도톡신 시그마 T5651
익스프레스 프로 라벨 S35 쉬운 태그 믹스 Perkin 엘머 NEG772
장비 회사 카탈로그 번호 댓글 (옵션)
해부 도구
다운스 호모 지 나이저, 7 ML (두 유리와 함께 제공 "A"와 "B"표시 pestles) Wheaton의
P1000 Gilson Pipetman Gilson F123602
Allegra 6KR의 원심 분리기 베크 만 보습 바로 앞에 달린 풀베는 날 366830
GH 3.8 로터, 섹시한 버킷 로터 베크 만 보습 바로 앞에 달린 풀베는 날 360581
베크 만 J2 - 21 원심 분리기 베크 만
모자와 베크 만 튜브 베크 만 355672
흰색 벽으로 둘러싸인 어댑터 베크 만 342327
블루 벽으로 둘러싸인 어댑터 베크 만
JA - 17 로터, 고정 앵글 로터 베크 만 369691

서부 blots에 사용되는 항체의 테이블 :

항체의 이름 회사 카탈로그 번호 호스트 종 희석 팩터
β - 굴지 시그마 A5441 마우스 1:2000
GFAP 산타 크루즈 SC - 65343 마우스 1:200
GP73 산타 크루즈 SC - 134509 토끼 1:200
HSC70 산타 크루즈 SC - 7298 마우스 1:200
Laminβ 산타 크루즈 SC - 6261 염소 1:200
Prohibitin 산타 크루즈 SC - 28259 토끼 1:200
PSD95 Millipore MAB1596 마우스 5 μg / μL
SNAP25 AbCam ab5666 - 100 토끼 1:2000
Synaptophysin Millipore MAB368 마우스 1:500
β - 3 - Tubulin 산타 크루즈 SC - 80016 마우스 1:200

References

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