방법 논문

수성 환경에서 탄화수소 전환을 사용하는 툴킷

DOI:

10.3791/4182

⸱

2012년 10월 2일

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Biotechnology, Delft University of Technology, 2Delft Center for Systems and Control, Delft University of Technology

이 논문에서

요약

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

오일 오염의 개선을 위해 박테리아 시스템을 규제 지속 가능한 자동차는 표준 호환 DNA 부품 (BioBricks)를 사용하여 설계되었습니다. 엔지니어링 E. 대장균 변형은 독성 수성 환경에서 β-산화를 통해 alkanes을 저하하는 데 사용되었다. 종에서 각각의 효소는 alkane 저하 활동을 보여 주었다. 에 또한 증가 허용 N - 헥산은 alkane에 강한 박테리아 유전자를 도입하여 달성되었다.

초록

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이 작품은 앞으로 대장균에 의해 alkanes의 전환을 가능하게하고 적용의 원리의 증명을 제시하는 툴킷를 게재 할 수 있습니다. 툴킷은 여러 표준 교환 부품 (BioBricks) 9 alkanes의 전환, 독성 탄화수소 풍부한 환경에서의 유전자 발현과 생존의 규정을 해결로 구성되어 있습니다.

alkane 저하에 대해 3 단계 경로는 E.에 구현 된 각 alkanols, alkanals 궁극적으로 alkanoic - 산에 중간과 긴 체인 alkanes의 전환을 활성화 대장균. 후자는 기본 β-산화 경로를 통해 대사되었다. 중간 체인 alkanes (C5-C13)와 cycloalkanes (C5-C8), Gordonia SP에서 alkane hydroxylase 시스템 네 가지 유전자 (alkB2, rubA3, rubA4 및 rubB)의 산화를 촉진합니다. TF6 8,21는 E.로 변환 된 대장균. 의 전환에 대한장쇄 alkanes (C15-C36)는 Geobacillus thermodenitrificans에서 라다 유전자가 구현되었습니다. 열화 과정에 필요한 자세한 단계를 들어, ADH 및 ALDH은 (G. thermodenitrificans에서 발생) 10,11을 도입했다. 활동은 휴식 세포 assays에 의해 측정되었다. 각 산화 단계에 효소 활동이 관찰되었다.

프로세스 효율을 최적화하려면, 그 표현은 낮은 포도당 조건에서 유도되었습니다 기판 - 규제 발기인, pCaiF가 사용되었습니다. pCaiF는 E.에 존재 대장균 K12 및 비 포도당 탄소 소스의 저하에 관련된 유전자의 표현을 규제하고있다.

툴킷의 마지막 부분 - 생존을 대상으로는 - PhPFDα와 β 용매 내성 유전자, Pyrococcus horikoshii OT3에서 모두를 사용하여 구현되었습니다. 유기 용제에 부정적인 affectin에 의해 세포 스트레스를 유발하고 survivability을 감소 할 수 있습니다g 단백질 폴딩. 보호자로서 PhPFDα와 β는 alkanes의 존재에 따라 단백질 접힘 과정 등을 향상시킵니다. 문화 매체에서 10 % N-헥산의 presences의 증가 성장 속도 (최대 50 %)로 표시 개선 탄화수소 허용으로 이어이 유전자의 표현이 관찰되었다.

요약, 결과는 툴킷은 E. 수있게 된 것을 나타냅니다 수성 환경에서 탄화수소를 변환하고 관대 할 수 대장균. 따라서, 그것은 합성 생물학 접근 방식을 사용하여 오일 개선을위한 지속 가능한 솔루션에 대한 초기 단계를 나타냅니다.

서론

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기름 오염은 환경 오염의 가장 심각한 원인 중 하나이며 생태계, 기업 및 지역 사회에 큰 영향을 미칩니다 3. 예를 들어, 캐나다 앨버타의 오일 샌드 테일링 워터에서 발생하는 지속적인 오일 오염과 싸우기 위해서는 솔루션이 필요합니다. 오일 샌드에서 오일을 추출하는 과정에서 반고체 산화 형태의 오일인 역청은 오일 1 배럴당 약 3.1배럴의 물을 소비하는 열 회수 기술을 사용하여 제거됩니다. 주로 지역 강에서 발원한 기름으로 오염된 공정수는 역청 추출 후 광미 연못에 저장됩니다. 담수 흡수의 필요성을 줄이기 위해 공정 용수를 보다 효과적으로 재활용해야 합니다. 역청 추출을 용이하게 하고 하류 지역이 수생 생태계 보호를 위한 수질 지침을 충족하도록 하기 위해 공정 수처리는 빠르게 발전하고 있습니다 3.

유기화합물의 오염을 치료하기 위해 현재 미생물을 이용한 생물정화 기술이 권장되고 있다 1. 알칸은 원유에 함유된 탄화수소 중 가장 풍부한 계열로 분자당 5-40개의 탄소 원자를 함유하고 있습니다 7, 21. 많은 박테리아는 말단 메틸기의 순차적 산화를 통해 다양한 길이의 알칸을 분해하여 첫 번째 알코올, 그 다음 알데히드, 마지막으로 지방산을 형성하는 것으로 알려져 있습니다 8. 이 iGEM 프로젝트 내에서 서로 다른 유기체의 여러 효소를 발현하고 특성화하여 BioBrick 표준 및 Registry of Standard Biological Parts를 통해 사용할 수 있게 되었습니다.

Gordonia sp. TF6의 잘 연구된 알칸 하이드록실라제 시스템은 alkB2 (알칸 1-모노옥시게나제), rubA3, rubA4 (2개의 루브레독신) 및 RubB (루브레독신 환원효소) 8, 21의 최소 4가지 구성 요소를 사용하여 C5-C 8 사이클로알칸과 함께 C5-C 13 알칸의 초기 산화 단계를 촉진합니다. 장쇄 알칸(C15에서 C36에 이르기까지)의 산화는 Geobacillus thermodinitrificans NG-80-2 7, 15, 18, 22에서 추출한 플라보단백질 알칸 모노옥시게나제인 ladA에 의해 수행되는 것으로 보고되었습니다. LadA는 산화를 위해 원자 산소를 사용하는 플라빈 모노뉴클레오티드(FMN)와 촉매 복합체를 형성합니다. 그 결과 알칸이 해당 1차 알칸올로 전환됩니다. 알코올은 알코올 및 알데히드 탈수소효소에 의해 지방산으로 추가로 산화되며, 이는 β 산화 경로로 쉽게 유입됩니다 7, 21. 호열성 박테리아 Geobacillus thermoleovorans B23의 아연 독립적 알코올 탈수소효소는 NAD+를 보조인자 10로 사용하여 중쇄 알칸올을 각각의 알칸으로 산화시킵니다. 동일한 박테리아의 알데히드 탈수소 효소는 중쇄 산화 11에서 NAD+ 의존성 최종 단계를 촉매 할 수 있습니다.

유도 비용을 줄이고 박테리아 시스템의 최적 증식을 유지하기 위해 E.coli에서 유래한 프로모터 pCaiF를 특성화했습니다. 이 프로모터는 탄화수소 분해 경로 성분의 발현을 조절할 수 있으며, cAMP-Crp 수치에 의해 조절되며, 이는 차례로 포도당 수치에 따라 달라집니다 6. 환경에서 높은 세포 외 포도당 농도에서 세포 cAMP(고리형 아데노신 모노뉴클레오티드 인산염) 수치는 PTS 매개 포도당 수송의 부작용으로 아데닐릴 시클라아제의 억제로 인해 낮았습니다. 반대로, 제한(낮은 포도당 농도) 동안 cAMP 수준이 증가하고 Crp가 cAMP에 결합되어 복합체 cAMP-Crp를 형성했으며, 이는 pCaiF와 결합하고 다운스트림 성분 6, 14의 전사를 활성화했습니다.

야생형 대장균은 적당한 농도의 탄화수소만 견딜 수 있습니다. 툴킷을 완성하기 위해서는 탄화수소에 대한 내성을 해결해야 했습니다. 여러 유기 용제에 내성이 있는 박테리아는 수-용매 2상 시스템에서 생존하는 것으로 알려져 있습니다 12. 내성을 증가시키는 것으로 알려진 분자 성분은 단백질의 올바른 접힘을 촉진하는 샤페론(chaperone)입니다. 단백질 phPFDα와 phPFDβ로 구성된 Pyrococcus horikoshii OT3의 프리폴딘 시스템은 탄화수소 내성을 증가시키는 것으로 나타났습니다 17.

알칸 변환 툴킷은 Registry of Standard Biological Parts 9에 문서화된 BioBrick 원칙에 따라 구성되었습니다. BioBricks는 4개의 사전 정의된 제한 부위 옆에 있는 특정 기능 인서트를 포함하는 플라스미드입니다. BioBrick 인서트는 유연하게 확장할 수 있어 새로운 기능을 가진 생물학적 시스템을 구축할 수 있습니다.

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프로토콜

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1. BioBrick 조립

  1. 표준 생물 부품의 레지스트리에서 BioBricks는 iGEM 본부에 의해 제공됩니다. 기존 BioBricks에서 새로운 BioBrick을 구성하려면 수용체 부분의 기증자 부분의 하류를 위치에 대한 효소 EcoRI과 SpeI으로 기증자 BioBrick (최대 1.0 μg) 소화. 수용체 부분의 상류 기증자 부분을 위치시키기위한 XbaI 및 PstI있는 다이제스트. 기증자의 중추에 끊어 삼분의 일 적절한 제한 효소를 추가합니다. 공급 업체 (최종 농도 1X)에 따라, 해당 버퍼와 20-25 ML의 총 볼륨에 dig​​estions을 수행합니다. 제한 효소에 대해 5 단위 / μg의 DNA를 사용하십시오.
  2. EcoRI 및 XbaI 또는 SpeI 및 PstI 중과 수용체 BioBrick을 소화.
  3. 37에 하나의 시간 (최소)의 digestions을 품어 ° C. 제한이 열에 의해 endonucleases 비활성화, 80에서 부화 곧 10 분 및 원심 분리기에 대한 ° C.
  4. 소화 BioBrick을 Ligate함께 부품 (기증자와 수용체). XbaI 및 SpeI 호환 DNA 종료를 생성하기 때문에, 혼합 사이트는 4 표준 제한 사이트으로 둘러싸인 한 새로운 '통합'BioBrick에서 발생하는 제한 효소로 절단 할 수없는 그 생성됩니다. 결합 혼합물에서 최종 DNA 농도가 바람직 ~ 100 NG / μl. T4 결합 버퍼 (최종 농도 1X) 및 T4 ligase (1 단위 / μg의 DNA)와 10-15 ML의 총 볼륨의 결합 반응을 수행합니다.
  5. 적어도 3 시간 16 ° C에 결합 혼합물을 품다.
  6. 결합 믹스의 년경 반으로 변환 반응을 수행합니다.
  7. 시퀀싱과 올바른 BioBrick을 확인합니다.
  8. 합성 DNA에서 새 BioBrick을 구성하려면, E.에 최적의 표현을위한 합성에 대한 유전자를 수정 JCat 웹 사이트 도구 (수단을 이용하여 대장균 http://www.jcat.de/ ). B의 요구 사항에 따라 추가 수정 ioBrick 표준입니다. 이 표준화는 모든 BioBrick이 접두사 앞에와 접미사 다음 관심있는 DNA 순서로 구성되어 있습니다 의미합니다. 접두사와 접미사는 나머지 플라스미드 순서대로 없어졌어 미리 정의 된 제한 사이트를 포함 시퀀스입니다. 이러한 표준 제한 사이트는 교류, 9 유연하게 BioBrick 삽입을 확장하는 것이 가능합니다. 접두사와 접미사는 다음과 같은 순서를 가지고 :
이름 순서 논평
접두사 5 'GAATTCGCGGCCGCTTCTAG3'
5 'GAATTCGCGGCCGCTTCTAGAG 3' 다음 부분은 코딩 순서 또는 "ATG"로 시작하는 일부 경우
접미사 5 'TACTAGTAGCGGCCGCTGCAG 3'
생체 내 ove_title "> 2. Alkane 변환 휴식 세포 분석,

이 분석은 후지 외. (2004)에 의해 기술 된 방법에 따라 수행되었다.

  1. 문화 E. Alkane Hydroxylase 시스템 (표현 대장균 세포 BBa_K398014 빈 벡터 (수행)와 세포 BBa_J13002을 하루 아침에 적절한 항생제로 5 ML의 LB 매체에를).
  2. 신선한 LB의 50 ML (항생제 포함)에 밤 문화를 500 μl를 전송하고 세포 탁도가 600 나노 미터에서 0.3의 OD를 (광학 밀도)에 도달 할 때까지 알을 품다.
  3. 4000 rpm으로 10 분 동안 원심 분리기, 5 ML 0.1 M 인산 버퍼 (산도 7.4)에서 펠렛을 resuspend.
  4. 4000 rpm에서 10 분 동안 다시 원심 분리기 지금 E2 소금과 0.66 % V / V 글리세롤 (질소 deficien를 포함하는 5 ML 0.1 M 인산 버퍼에있는 펠릿을 resuspendt 중간).
  5. 셀 탁도 (OD 600) 측정합니다.
  6. 25 ML 폐쇄 캡 유리 플라스크없이 셀 컨트롤 (E2 소금 + 0.66 % V / V 글리세롤)에서 6 ML의 세포 혼합 aliquots를 준비합니다.
  7. 각 플라스크에 alkane 100 nmol을 추가합니다.
  8. 24 시간 (높은 속도를 얻을 때 단축)에 대한 37 ° C에서 혼합물을 품다.
  9. 부화 후 OD 600 측정합니다.
  10. 에틸 아세테이트하여 문화 미디어의 탄화수소를 추출하여 가스 크로마토 그래피 (프로토콜 3 참조)에 의해 세포 배양의 탄화수소 농도를 결정한다.
  11. 각 플라스크에 총 바이오 매스 현재 (건조 중량에 OD 600 변환)에 의해 변환 alkane의 총 금액을 나누어 바이오 매스의 단위 당 저하를 계산합니다. 실험 기간으로 결과를 나누면 시간 단위 당 단위 바이오 매스 당 저하 활동을 산출. 평균은 세 개인 점에서 가져옵니다.

3. Alkane 전환 효소 분석에서는체외

이 분석은 리 외. (2008)에 의해 기술 된 방법에 따라 기본적으로 수행되었다.

  1. 문화 E. 라다 유전자 (표현 대장균 세포 BBa_K398017 ) 및 빈 벡터 (들고 세포 BBa_J13002을 하루 아침에 적절한 항생제로 50 ML의 LB 매체에를).
  2. 신선한 LB의 50 ML (항생제 포함)에 밤 문화를 500 μl를 전송하고 세포 탁도가 600 나노 미터에서 0.6의 광학 밀도에 도달 할 때까지 품다.
  3. 4000 RPM (4 ° C)에서 10 분 원심 분리기 50 MM 트리스 버퍼의 5 ML에 펠렛을 resuspend.
  4. 4 출력 제어 40 % 듀티 사이클에서 Sonicate (셀 장애, LA Biosystems) 세포는 전체 기간 동안 얼음에 솔루션을 보관.
  5. 4 & D에 4,000 rpm으로 5 분 동안 발생하는 혼합물을 원심 분리기예를 들어, C 세포 오염 물질을 제거 할 수 있습니다. 새로운 유리 병에 표면에 뜨는을 전송합니다.
  6. 브래드 포드 분석하여 세포 추출물의 총 단백질 농도를 결정합니다. 참고 : 배경의 증가 및 / 또는 단백질의 손실을 방지하기 위해 유리 병을 사용합니다.
  7. 0.1 % V / V alkane 50 MM 트리스 - HCL 버퍼를 포함하는 100 ML 혼합물을 준비합니다.
  8. 5 분에 ° C 100 혼합물을 가열. 참고 : 높은 끓는 점과 중간 길이의 체인 alkanes에 대해이 단계를 수행합니다. (예 : C 16 : 287 ° C).
  9. alkane의 최적의 용해도를 달성하기 위해, 1 분 아직 따뜻한하는 동안 동질, 점성 혼합물을 취득 할 때까지에 sonicate.
  10. NADH의 1mM, 1 MM FMN, 1 MM MgSO 4, 0.01 브이 / v 튼 X-100을 추가합니다.
  11. 25 ML 폐쇄 캡 플라스크에서 6 ML aliquots를 준비합니다.
  12. 세포 추출물의 충분한 양을 (브래드 포드 assays, 5 MG 단백질 / L​​의 최종 농도에 따라 달라집니다)를 추가합니다. 노 단백질 제어를 준비합니다.
  13. 최적의 전자에 60 ° C (에 품다24 시간 용) 활동 nzymatic.
  14. 에틸 아세테이트하여 문화 미디어의 탄화수소를 추출하여 가스 크로마토 그래피 (프로토콜 3 참조)에 의해 세포 배양의 탄화수소 농도를 결정한다.
  15. 총 단백질에 의해 변환 alkane의 총 금액을 나누어 바이오 매스의 단위 당 저하를 계산은 각 플라스크 (브래드 포드 보정 곡선에 의해)에 추가되었습니다. 또한 실험 기간으로 나누어은 시간 단위 당 세포 단백질의 단위 당 저하 활동을 산출. 평균은 세 개인 점에서 가져옵니다.

4. 에틸 아세테이트 탄화수소 추출 및 농도 측정

  1. Alkanes은 6 ML 실험 용액에 2.5 ML 에틸 아세테이트 (apolar solvant)를 추가하여 수용액에서 추출됩니다. 내부 표준은 0.1 %의 농도 (V / V)에서 용매에 추가됩니다. 표준 (예 : cyclo-decan) 관심 봉우리의 예상 범위에 따라 다양.
  2. 옵션 : 추가 튼수성 혼합물에 X-100과 적절한 이중 phasic 시스템을 위해 4,000 rpm에서 10 분 동안 샘플을 원심 분리기.
  3. 소용돌이 두 단계 분리 될 때까지 5 초 (1,500 RPM)와 실온에서 배양을위한 혼합.
  4. 유기 층 (상단)의 최대 양을 제거하고 무수 마그네슘 황산염을 사용하여 용매를 건조.
  5. 여과 (0.2 μm)로 MgSO 4를 제거하고 -20 ° C.에있는 측정을위한 가스 크로마토 그래프 용 시험관에 여과, 또는 상점을 전송할
  6. CP-SIL 5CB 열 (길이 = 5m)를 사용하여 가스 크로마토 그래피에 의한 농도를 결정합니다. (1시 10분, 230 ° C) 분할 모드에서 샘플의 10 μl를 삽입. 1 ML / 분 (헬륨)에 열 가스의 흐름을 설정합니다. 다음 오븐 온도 프로그램이 사용됩니다 :
    율 온도 [° C] 시간 [분]
    0 50 7.5
    50 90 1.0
    50 110 2.0
    50 130 2.0
    50 145 2.0
    50 160 2.0
    50 170 2.0
    50 185 2.0
    50 210 2.0
    50 250 2.0
    50 320 2.0
  7. 봉우리를 통합하고 내부 표준과 관련하여 농도를 수정합니다.

5. 알코올 / 알데히드 탈수소 효소 활동 분석

이 분석은 가토 외에 기술 된 방법에 따라 기본적으로 수행되었다.(2010).

  1. 문화 E. ADH (표현 대장균 세포 BBa_K398018 ) 또는 ALDH ( BBa_K398030 ) 유전자와 빈 벡터 (들고 세포 BBa_J13002을 하루 아침에 적절한 항생제로 50 ML의 LB 매체에를).
  2. 신선한 LB의 50 ML (항생제 포함)에 밤 문화를 500 μl를 전송하고 세포 탁도가 600 나노 미터에서 0.6의 광학 밀도에 도달 할 때까지 품다.
  3. 4 ° C에서 4,000 rpm으로 10 분 원심 분리기 50 MM 트리스 버퍼의 5 ML에 펠렛을 resuspend.
  4. 4 출력 제어 (sonication 동안 얼음에 솔루션을 유지)와 40 % 듀티 사이클에서 셀 솔루션을 Sonicate.
  5. ° C는 세포 파편을 제거하기 위해 4에서 4,000 rpm으로 5 분의 결과 혼합물을 원심 분리기.
  6. 로를 결정(: 단백질 바인딩을 방지하기 위해 유리관을 사용 주) 브래드 퍼드 분석하여 세포 추출물의 할거야, 단백질 농도.
  7. 180 μl 57 MM 글리신 버퍼는 각 우물에 NAD를 (최종 농도 1 ㎜, 산도 9.5)이 포함 된과 96 잘 접시를로드합니다.
  8. 우물에 테스트 할 수있는 알코올 (알데히드)의 5 μl를 추가합니다. 참고 : 액체를 가지고 할 수있는 분석의 시작 전에 열 긴 사슬 알코올. 각 주류 (알데히드) 기판없이 제어 (대조군) 추가해야합니다. 또한, 세포 추출물없이 버퍼와 기판의 혼합물을 포함하는 빈을 준비합니다.
  9. 앞서 열을 가하다 37 번 15 분을위한 플레이트 리더 (Tecan 마젤란 v7.0)의 판 ° C 시스템의 평균을 허용 할 수 있습니다.
  10. 세포 추출물의 충분한 양을 (브래드 포드 assays, 5 MG 단백질 / L​​의 최종 농도에 따라 달라집니다)를 추가합니다. 노 단백질 제어를 준비합니다.
  11. 340 nm의 파장 37 번 1 시간마다 2-3 분 ° C. <에서 분광 광도계를 사용하여 NADH 생산을 측정/ 리>
  12. OD (340 nm 정도)의 경사면에서 NADH 생산 속도를 계산할 수 있습니다. 계정으로 빛 경로 길이 6,220 M -1 cm -1의 NADH의 흡광 계수보십시오. 단백질의 총 양에 의해 NADH 생산 속도를 나눈다는 세포 추출물에서 탈수소 효소 반응 (U / MG 전체 세포 단백질)의 활동을 표현하는 추가되었습니다. 평균 세 독립 실행에서 표준 편차를 계산합니다.

6. pCaiF 특성

  1. 문화 E. pCaiF-GFP 구조 (표현 대장균 세포 BBa_K398331 )와 단둘이 발기인 (운반 세포 BBa_K398326를 적절한 항생제 박 5 ML의 LB 매체에 하룻밤 정도).
  2. 5 ML M9는 밤 문화의 50 μl를 10g / L 포도당과 항생제를 포함하는 예방하고 하루 아침에 성장합니다.
  3. 밤새 가지의 하위 문화 50 μl 신선한 M9 with10 g / L 및 배양의 5 ML에는 세포 탁도는 600 nm의에서 0.2의 광학 밀도에 도달 할 때까지.
  4. 각 우물에 테스트 탄소 소스의 원하는 금액을 포함하는 새로운 M9 매체 100 μl와 96 잘 판을로드합니다. 통계 평가를위한 세중의 실험을 수행하고 각각의 부정적인 컨트롤을 (야생 형 대장균 K12)를 추가합니다.
  5. 매체가 포함 된 우물에 밤 문화의 5 μl를 추가합니다.
  6. 성장 곡선 (OD 600)와 플레이트 리더를 사용하여 GFP 형광 (485 나노 미터 여기와 520 방출) 37 18 시간마다 10 분 ° C 일정한 진동과를 측정합니다.
  7. 성장 속도와 각각의 측정에서 특정 GFP 내용을 계산하고 컨트롤에 비교합니다. 평균 적어도 세 독립적 인 실험의 표준 편차를 계산합니다.

7. 공차 분석

  1. 문화대장균은 PhPFDα와 β 유전자 (표현 BBa_K398406를 5 ML의 LB 매체와 적절한 항생제에 밤새). E.는 라다 유전자 (표현 대장균 BBa_K398017가 ) 대조군으로 사용됩니다.
  2. 신선한 5 LB의 ML (항생제) 및 배양에 밤새 가지의 하위 문화 10 μl의 세포 탁도는 600 nm의에서 0.4-0.3의 광학 밀도에 도달 할 때까지.
  3. 이 0.1의 OD 600에 도달 할 때까지 새로운 매체 문화를 희석.
  4. 적절한 항생제와 세중의에 독성 화합물 (예 : 0, 4, 8, N-헥산의 10 %)의 적절한 최종 농도를 포함하는 180 μl M9 매체와 96 잘 판을로드합니다. alkane - 물 혼합물은 2 단계 시스템으로 이어질 수 있기 때문에 (예 : D 번호판의 적절한 컨트롤을 가지고 필수적입니다ifferent 긴장하고 각각의 빈 실험).
  5. 우물에 문화의 20 μl (제어)를 추가합니다.
  6. 지속적인 진동과 판 독자에게 37에서 24 시간마다 10 분 ° C를 사용하여 바이오 매스 농도 (OD 600) 측정합니다.
  7. 다른 에이전트 농도에 대한 각각의 측정에서 성장 속도를 계산하고 부정적인 컨트롤에 비교할 수 있습니다. 평균 적어도 세 독립 실행의 표준 편차를 계산합니다.

8. 상 동체 상호 작용 매핑

  1. 이 응용 프로그램 HIM은 STRING 데이터베이스 (학술 사용하기 위해 무료) 20을 실행하는 PostgreSQL 서버에 단백질 쿼리를 수행하기 위해 개발되었습니다. homologue 상호 작용 매핑 응용 프로그램은 STRING 데이터베이스를 사용하여 원래의 호스트 유기체에서 상호 작용하는 단백질을 식별합니다. 각각의 상호 작용 유전자의 시퀀스는 대상 생물의 상동 유전자를 찾기 위해 BLAST 검색에 사용됩니다. Cytoscape 4 는 매핑의 결과를 시각화하는 데 사용됩니다. : HIM 소프트웨어 도구에서 다운로드 할 수 있습니다 https://github.com/jcnossen/InteractionHomologMapping.
  2. 매핑을 수행하려면 (1) BioBrick의 ID를 입력하고 응용 프로그램은 자동으로 표준 생물학 부품 9, 또는 응용 프로그램의 (2)를 입력 (붙여 넣기) 시퀀스 데이터의 레지스트리에서 일부 순서 데이터를 다운로드합니다.
  3. 입력 된 아미노산 서열에 대한 STRING 단백질 ID를 찾을 수 STRING 데이터베이스 웹 사이트를 사용합니다.
  4. 높은 호몰 로지와 단백질은 BLAST를 사용하여 결정됩니다. 이후 응용 프로그램은 호스트 유기체의 homologs (예 : 대장균)의 소스 유기체와 검색에 각 알려진 상호 작용하는 단백질을 보여줍니다.
  5. 텍스트 또는 Cytoscape에 결과 putative 상호 작용 목록을 내 보냅니다.

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결과

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

알칸 변환

알칸에서 각 지방산까지의 3가지 산화 단계의 활성은 휴지 세포 분석 및 효소 활성 측정을 사용하여 평가되었습니다. 결과는 경로 반응 (1) 알칸 하이드록실라제, (2) 알코올 탈수소효소 및 (3) 알데히드 탈수소효소에 따라 제시됩니다.
첫 번째 단계에서는 중쇄 및 장쇄 알칸에 대해 서로 다른 플라스미드를 구성했습니다. 플라스미드 BBa_K398014는 중쇄 알칸 산화를 위한 알칸 하이드록실라제(AH) 시스템의 4개 유전자인 alkB2, rubA3, rubA4 및 rubB를 단일 구성 프로모터(BBa_J23100)의 제어 하에 포함합니다. 음성 대조군으...

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토론

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BioBrick의 원리는 alkanes의 저하에 대한 섀시를 만드는 데 사용되며 툴킷의 단일 구성 요소에 대한 원칙의 증명 얻은 것입니다. 여러 assays는 생체과 alkane 굴욕 경로의 효소의 체외 활동에 측정하기 위해 제안합니다. 제시 작업은 성공적으로 호스트 유기체 E.의 효소 활동과 표현을 결정하는 데 사용할 수있는 방법의 수를 보여줍니다 적절한 BioBricks를 구현 한 후 대장균. 또한,이, BioBrick의 원칙은 alkanes의 저하에 필요한 단백질을 표현하는 유전자를 디자인하는 데 사용할 수있는 것으로 나타 이러한 효소를 생산하는 규제 시스템을 제공하는 경우에만 필요하고 augments 탄화수소의 존재의 호스트 유기체의 허용 오차 . 일단 추가로 개발,이 섀시는 물을 미행 오일 샌드에서 예를 들어, 잔류 오일의 생물 저하에 사용 할 수, 또는 치료를위한석유 산업에서 폐수의.

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공개 사항

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관심 없음 충돌이 선언 없습니다.

감사의 글

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이 비디오 문서에 수행 실험은 국제 유전 공학 기계 대회 9 개발되었다. 저자는 대한 iGEM 팀 회원 눅 Bergwerff, 에테르 TM 반 Boheemen, Jelmer Cnossen, 휴고 F. 쿠에 토 로자 스와 라몬 반 데르 Valk을 감사드립니다 연구 지원. 우리는 도움이 토론이 연구를 호스팅 한 데 Winde, 스테판 드 콕과 Esengül Yıldırım 감사드립니다. 이 작품은 생명 공학의 TU 델프트 대학과, 델프트 생물 정보학 연구실, Bionanoscience의 TU 델프트 (Delft)과, 오일 샌드 리더십 이니셔티브 (OSLI), 스터드 studentenuitzendbureau, 네덜란드 유전체학 이니셔티브, Kluyver 센터, Nederlandse Biotechnologische Vereniging (에는 Stichting 생명 공학 네덜란드)에 의해 지원되었다 , DSM, Geneart, Greiner 바이오 하나 Genencor.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
E. coli K12New England BiolabsC2523H
옥탄플루카74822
헥사데칸플루카52209
옥탄올-1플루카95446
도데칸올-1시그마-알드리치126799
헥산시그마-알드리치296090
NADHSigma-AldrichN4505
FMNSigma-AldrichF2253
MgSO4J.T. Baker Casno7487 889
Triton X-100Sigma-AldrichT8787
T4 ligaseNew England BiolabsM0202L
가스 크로마토그래프
세포 파괴자LA BiosystemsCD-019
분광 광도계Amersham pharmaciaspec 2000
플레이트 리더Tecan Group Ltd.Magellan v7.0
Incubator Innova, 44
BioBrickTM K398014: BBa_J23100-BBa_J61100-alkB2-BBa_J61100-rubA3-BBa_J61100-rubA4- BBa_J61100-rubBDelft University of Technology 생명공학 부서 또는 표준 생물학적 부품등록BBa_K398014Alkane Hydroxylase System
Resistance: Chloramphenicol
BioBrickTM K398027: BBa_R0040-BBa_B0034-ladA 생명공학 부서의 Delft University of Technology 또는 표준 생물학적 부품등록BBa_K398027ladA 단백질 생성기
저항성: Chloramphenicol
BioBrickTM K398018: BBa_J23100-BBa_J61101-ADH 생명공학 부서 또는 표준 생물학적 부품등록부의 Delft University of TechnologyBBa_K398018ADH 생성기
저항: Chloramphenicol
BioBrickTM K398030: BBa_R0040-BBa_B0034-ALDH 생명공학 부서 또는 표준 생물학적 부품등록부의 Delft University of TechnologyBBa_K398030ALDH 생성기
저항: Chloramphenicol
BioBrickTM K398326: pCaiF 델프트 공과 대학 생명 공학 부서 또는 표준 생물학 부품 등록부BBa_K398326pCaiF promoter
Resistance: Chloramphenicol
BioBrickTM K398331: pCaiF-BBa_B0032-BBa_I13401Delft University of Technology 생명공학 부서 또는 표준 생물학 부품 등록부BBa_K398331pCaiF 측정 장치
저항: Chloramphenicol
BioBrickTM K398406: BBa_J23002-BBa_J61107-phPFDα -BBa_J61107- 델프트 공과 대학 생명 공학 부서 또는 표준 생물 부품 등록부BBa_K398406용매 내성 클러스터
내성: 클로람페니콜

참고문헌

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