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방법 논문

SeqA-DNA 단지의 결정에 대한 DNA의 Duplexes의 최적화를 반복

9.5K 조회수

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DOI:

10.3791/4266

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2012년 11월 1일

 , 

이 논문에서

요약

단백질 DNA 단지의 결정 구조는 단백질 기능, 메커니즘뿐만 아니라, 특정 상호 작용의 성격에 대한 통찰력을 제공 할 수 있습니다. 여기, 우리는 함께 공동 결정의 길이, 순서 및 이중 DNA의 끝을 최적화하는 방법을보고 대장균 SeqA, 복제 개시의 네거티브 레귤레이터.

초록

에스 케리 키아 대장균 SeqA 복제 1의 기원에서 sequestering hemimethylated GATC 클러스터의 조기 reinitiation 이벤트를 방지 DNA 복제의 부정적인 레귤레이터입니다. 원산지 외에도 SeqA은 복제 포크, 그것이 높은 명령 구조로 새로 복제 된 DNA를 구성 2 발견됩니다. SeqA 동료는 약하게 하나의 GATC 시퀀스로하지만, 여러 GATC 사이트를 포함하는 DNA의 duplexes 높은 친화 단지를 형성한다. SeqA의 최소한의 기능 및 구조 단위는이를 hemimethylated DNA 3 고친 화성 단지를 ​​형성하는 적어도 두 개의 GATC 시퀀스의 요구 사항을 설명하고, 이량 체입니다. 또한, oligomerization과 유연한 링커로 구분하여 DNA 결합 도메인 SeqA 아키텍처, 3 나선형 회전까지로 구분 GATC 반복에 바인딩 할 수 있습니다. 따라서, 분자 수준에서 SeqA의 기능을 이해하는 것은 구조적 아나가 필요합니다SeqA의 용해는 여러 GATC 시퀀스에 바인딩. 단백질 DNA의 결정에서 DNA는 단백질과 DNA의 상대적인 크기와 건축에 따라 포장의 상호 작용에 탁월한 효과 하나도 없다. 단백질은 DNA 나 발자국 DNA의 대부분을보다 큰 경우, 크리스탈 포장은 주로 단백질 단백질 상호 작용에 의해 중재됩니다. 반대로, 단백질이 DNA보다 같은 크기 또는 작은 또는 만 DNA, DNA-DNA 및 DNA-단백질 상호 작용의 일부를 포함 할 때 크리스탈 포장을 지배. 따라서, 단백질 DNA 단지의 결정은 DNA의 길이 4 DNA 종료 (둔기 나 오버행) 5-7의 체계적인 심사가 필요합니다. 이 보고서에서, 우리는 설계, 최적화, 정화 및 구조 결정에 적합한 결정을 얻을 수 SeqA의 dimeric 변형 (SeqAΔ (41-59) - A25R)으로 단지에 나란히 GATC 반복을 포함 hemimethylated의 DNA duplexes을 결정화하는 방법에 대해 설명합니다.

프로토콜

1. 단백질 정제

연결 유연 링커 N-(oligomerization)와 C-터미널 (DNA 바인딩) SeqA 에이즈 DNA에 1-3 회전으로 ​​구분 hemimethylated GATC 반복의 인식 도메인입니다. 본 연구의 경우, 우리는 더 oligomerization과에 의해 독점적으로 구분 직렬 GATC에게 구속력 DNA 반복을 제한 단축 링커을 방지 N-터미널 도메인의 점 돌연변이로 SeqA의 dimeric 변종 (SeqAΔ (41-59) A25R)를 사용 DNA 하나 턴 (그림 1) 2,8.

  1. T7 프로모터의 제어 아래에있는 플라스미드 인코딩 SeqA와 BL21 (DE3) 세포를 변환,
  2. 판 100 μg / ML 암피실린 등의 LB-한천 플레이트의 변환 반응
  3. 소규모 밤 문화를 예방하기 위해 혼합 식민지를 선택 (LB 미디어를 100 μg / ML 암피실린과)
  4. 다음날 아침은 overni의 1:100 희석을 사용하여 미디어 1 L의 예방ght 문화,
  5. ~ 0.7의 OD 600 세포를 성장, 1 mm의 최종 농도에 이소 프로필 β-D-1-thiogalactopyranoside (IPT....

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토론

macromolecular X-선 결정학에서 가장 큰 도전 중 하나는 회절 품질 결정을 획득하고 있습니다. 단백질 또는 단백질 DNA 단지의 경우,이 도전은 최적화되어야합니다 추가 변수로 인해 악화됩니다. 그것은 널리 DNA의 길이와 끈적 overhangs의 존재가 더 이상 가상 이중의 주요 매개 변수를 최적화하는 것입니다에 인접한 DNA 분자의 연결을 강화하기 졌다고합니다. 그러나, 우리는 이러한 overhangs의 특성과 길이가 단백질 DNA 복합 크리스탈 포장에 대한 추가 효과를 가질 수 것으로 나타났습니다. 이 프로토콜은 SeqA-DNA의 복잡한 DNA의 길이, 순서 및 끝의 최적화를 구체화하기 위해 고안되었지만 모든 DNA-단백질 단지의 결정에 대한 oligonucleotides의 합리적인 설계를위한 일반적인 프레임 워크를 제공합니다.

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공개 사항

관심 없음 충돌이 선언 없습니다.

감사의 글

저자는 DNA 정화와 관련하여 도움이 데이터 수집 및 모니카 Pillon 동안 도움을 NSLS (브룩 헤이븐 국립 연구소)에서 PXRR 직원을 감사하고 싶습니다. 이 작품은 건강 연구의 캐나다 연구소 (걸레 67189)에 의해 지원되었다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
시약의 이름 회사 카탈로그 # 코멘트 (선택 사항)
트리스 Bioshop TRS003.5
Ethylenediaminetetraacetic 산 (EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산)) 피셔 과학 E478-500
Dithiotheitrol (DTT) 바이오 기본 주식회사 DB0058
NaCl Bioshop SOD002.10
글리세린 Caledon 5350-1
자당 시그마 - 알드리치 S5016-500G
나트륨 dodecyl 황산 (SDS) Bioshop SDS001.500
요소 Bioshop URE001.5
40% 29:1 BIS / 아크릴 아미드 바이오 기본 주식회사 A0007-500ml 4에 저장 ° C
붕산 EMD BX0865-1
크실렌 cyanol FF 바이오 RAD 161-0423
Bromophenol 블루 Bioshop BR0222
이중 조절 수직 젤 시스템 CBC 과학 회사 주식회사 DASG-250
인덱스 결정화 화면 햄튼 연구 HR2-144 4에 저장 ° C
마법사 I의 결정 화면 에메랄드 BioSystems EBS-마법사-1 4에 저장 ° C
마법사 II의 결정 화면 에메랄드 BioSystems EBS-마법사-2 4에 저장 ° C
클래식 결정 화면 Qiagen 130701 4에 저장 ° C
Intelliplate 트레이 예술 로빈스 악기 102-0001-00

솔루션

단백질 정화 버퍼 : 100 MM 트리스 산도 8, 2 MM EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산), 2 MM DTT와 5 % 글리세롤.

단백질 저장 버퍼 : 20 MM 트리스 산도 8, 150 MM NaCl, 5 MM DTT, 0.5 MM EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) 및 5 % 글리세롤.

젤 로딩 믹스 : autoclaved ddH 2 O.의 70 ML에 자당의 20g, bromophenol 파란색의 25 밀리그램, 크실렌 cyanol FF의 25 밀리그램, 10 % w / V SDS의 1 ML과 10X TBE의 10 ML을 추가 자당이 용해 될 때까지 약한 난방 저어 및 최종을 조절볼륨 100 autoclaved ddH 2 O.있는 ML 4 ° C.에 저장

2X로드 버퍼 : 젤 로딩 믹스의 10 ML에 요소의 11g을 추가합니다. 요소가 해소 될 때까지 뜨거운 접시에 젓는다. 4 2 ML 튜브 및 매장에서 나누어지는 ° C.

10X PAGE 믹스 : 믹스 요소의 420.4 g, 10X TBE의 100 ML (autoclaved), 40 % 250 ML 29:1 ddH 2 O.에서 BIS / 아크릴 아미드 완전히 용해 될 때까지 저어 및 1리터에 볼륨을 조정할 수 있습니다. 4 ° C.에서 어두운 병에 저장

10X TBE : 디졸브 108g 트리스, ddH 2 O. 1 리터에 붕산의 55g과 EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) 9.3 g의 상온에서 압력솥 및 매장.

용출 버퍼 : ddH 2 O. 200 ML 5 M NaCl, 1 M 트리스 산도 7.5, 0.5 M EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) 산도 8 0.4 ML 2 ML의 희석 8 ML 상온에서 압력솥 및 매장.

참고문헌

  1. Campbell, J. L., Kleckner, N. E. coli oriC and the dnaA gene promoter are sequestered from dam methyltransferase following the passage of the chromosomal replication fork. Cell. 62, 967-979 (1990).
  2. Guarné, A.

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