방법 논문

사용 예쁜 꼬마 선충 다세포 생물의 단백질 항상성을 연구하는 모델 시스템으로

DOI:

10.3791/50840

⸱

2013년 12월 18일

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Life Sciences, National Institute for Biotechnology in the Negev, Ben-Gurion University of the Negev

이 논문에서

요약

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

단백질 항상성, 스트레스 및 노화 사이의 관계를 연구하기 위해 유전적으로 다루기 쉬운 후생동물인 Caenorhabditis elegans를 모델 시스템으로 사용하여 단백질 기능 장애, 세포 내 단백질 국소화 및 유기체, 세포 및 단백질 수준에서의 단백질 안정성을 추적하여 단백질 접힘의 변화를 모니터링했습니다.

초록

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

단백질의 접힘과 조립은 단백질 기능, 세포의 장기적인 건강 및 유기체의 수명에 필수적입니다. 역사적으로 단백질 접힘의 기능과 조절은 시험관 내, 분리된 조직 배양 세포 및 단세포 유기체에서 연구되었습니다. 최근 연구에서는 단백질 항상성(단백질분해), 신진대사, 발달, 노화 및 온도 감지 사이의 연관성을 밝혀냈습니다. 이러한 발견은 모델 메타 동물 유기체 Caenorhabditis elegans에서 단백질 접힘을 모니터링하기위한 새로운 도구의 개발로 이어졌습니다. 저희 실험실에서는 단백질의 잘못 접힘을 모니터링하기 위해 온도에 민감하거나 자연적으로 발생하는 준안정 단백질을 접힘 환경의 센서로 사용하여 행동 분석, 이미징 및 생화학적 접근 방식을 결합합니다. 특정 단백질의 잘못된 접힘과 관련된 행동 분석은 단백질 접힘에 대한 간단하고 강력한 판독값을 제공하여 접힘을 조절하는 유전자 및 조건을 빠르게 스크리닝할 수 있습니다. 마찬가지로, 이러한 잘못된 접힘은 세포의 단백질 오국소화와 관련될 수 있습니다. 따라서 단백질 국소화를 모니터링하면 다양한 발달 단계와 변화하는 조건에 직면하여 서로 다른 조직에서 발생하는 세포 접힘 용량의 변화를 강조할 수 있습니다. 마지막으로, 생화학적 도구를 ex vivo 사용하여 단백질의 안정성과 형태를 직접 모니터링할 수 있습니다. 따라서 행동 분석, 이미징 및 생화학 기술을 결합함으로써 각각 유기체, 세포 및 단백질의 해상도에서 단백질 잘못 접히는 것을 모니터링할 수 있습니다.

서론

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

단백질 접힘, 전좌 및 조립/분해뿐만 아니라 mRNA 전사, 처리 및 번역과 같은 단백질 생합성의 다양한 단계의 상호 작용은 기능을 위해 세포 단백질 품질 관리 기계에 의존하는 준안정 단백질의 부하를 결정합니다1. 따라서 단백질 품질 관리 기계의 부재 또는 오작동은 다양한 유형의 세포 기계의 기능 저하와 단백질 잘못 접힘 질환의 발병을 초래할 수 있습니다2-7. 단백질 접힘 및 제거 기계의 용량이 준안정 단백질의 부하와 균형을 이룰 때 단백질 항상성(proteostasis)이 달성되며, 이는 궁극적으로 잘못 접힌 단백질의 축적과 세포 내 응집을 방지하는 상태6입니다. 잘못 접힌 단백질의 축적은 열 충격 인자(HSF-1)와 같은 스트레스 유도 전사 인자를 활성화하고 세포 보호 스트레스 반응을 활성화하는 신호로 생각됩니다6,8.

후생동물에서 단백질분해 네트워크의 기능에 대한 우리의 이해는 대부분 체외 재구성 연구와 조직 배양 세포 및 단세포 유기체에 대한 관찰에서 파생되었습니다9. 예를 들어, 단백질 손상을 예방하고 해결하는 분자 샤페론에 대한 연구는 샤페론 매개 단백질 접힘, 분해 및 전좌 메커니즘에 대한 생화학적 및 세포 생물학적 연구에 중점을 두었습니다10-13. 이에 비해 후생동물의 서로 다른 세포와 조직에 있는 다양한 단백질분해 성분의 통합 기능에 대한 정보는 "정상적인" 성장 조건과 스트레스에 대한 반응에 대한 제한된 정보만 얻을 수 있습니다11. 예쁜꼬마선충(C. elegans)에서 세포 단백질의 품질 관리는 세포를 비자율적으로 조절할 수 있다는 발견은, 온도를 감지하는 두 뉴런의 돌연변이가 열 충격 반응의 활성화를 차단하고 내열성을 감소시킬 수 있다는 것을 보여주는 실험에서 반영된 바와 같이, 다세포 유기체의 단백질 단백 조절을 연구할 필요성을 보여주었습니다14-17. 그러나 다양한 분자 샤페론 패밀리(molecular chaperone family)와 같은 단백질분해 네트워크(proteostasis network)가 온전한 후생동물(metazoan)의 조직에서 어떻게 기능하는지, 그리고 이러한 네트워크가 발달 및 노화 과정에서 얼마나 역동적인지에 대한 응집력 있는 그림이 빠져 있습니다. 이 목표를 달성하기 위해서는 발달 및 노화 과정에서 다세포 유기체의 다양한 세포의 단백질 생성 능력을 결정하기 위해 살아있는 동물의 단백질체 유지 관리를 모니터링하기 위한 신뢰할 수 있는 센서가 필요합니다.

주어진 단백질이 세포 프로테오스타시스(cellular proteostasis)의 센서로 기능하기 위해서는 세포 내 관련 없는 단백질의 접힘을 최소한으로만 방해하면서 세포 접힘 환경의 변화에 반응해야 합니다. 살아있는 유기체에서 세포 단백질화(proteostasis)의 유지 및 회복을 탐구하기 위해 접힘 센서에 의존하는 두 가지 보완적인 접근 방식을 취할 수 있습니다. 첫 번째는 반딧불이 루시페라제18-20 또는 degron21-24로 태그된 GFP와 같은 단백질 단백 분해 기계에 의존하는 것으로 알려진 실험적으로 확인된 준안정 단백질을 기반으로 설계된 접힘 센서에 의존합니다. 두 번째 접근법에서는 세포 환경의 점진적인 변화에 반응하는 온도에 민감한 단백질(ts) 또는 연령 의존적 응집 단백질과 같은 내인성 준안정 단백질을 추적하여25-27. 설계된 접힘 센서는 필수적인 생물학적 기능을 제공하지 않지만 GFP 표지 단백질과 같은 강력한 보고 분석법으로 검출할 수 있는 이점을 제공하며 다양한 세포 및 동물 모델에 사용할 수 있습니다18. 그러나, 단일 외래 단백질을 도입하는 것은 접힘 환경에 영향을 미칠 수 있기 때문에(27), 이러한 폴리펩티드는 세포 단백질화 기계에 과부하를 일으킬 수 있다. 대안적으로, 그들이 보고하는 세포에 고유하지 않은 설계된 접힘 센서는 세포의 단백질 작용 용량의 변화에 영향을 받지 않을 수 있습니다. 예를 들어, 하나의 GFP 표지된 프로테아솜 리포터 기질은 표현형이 검출되기 전에 프로테아솜의 ~90%가 억제되어야 했습니다23. 대조적으로, 세포의 단백질 단백질(proteostasis machineries)에 의존하는 내인성 준안정 단백질은 세포 민감도 범위 내에 있다는 이점을 제공합니다. 그러나 이러한 단백질의 잘못된 접힘과 관련된 기능 상실은 세포 기능과 유기체의 생존력에도 영향을 미칠 수 있습니다. 여기에서는 내인성 C. elegans 접는 센서의 사용에 중점을 둘 것입니다.

C. elegans는 발달 및 노화 연구를 위한 잘 정립된 후생동물 모델로, 많은 보존된 생물학적 경로를 활용하고 세포 생물학, 생화학 및 유전적 접근법의 조합을 사용하여 세포의 단백질 접힘을 추적하는 데 사용할 수 있습니다. 우리는 준안정 단백질을 표현형, 국소화 및 안정성의 변화를 모니터링하여 단백질 발식 능력의 프로브로 사용했습니다. 또한 간단한 행동 분석을 통해 다양한 단백질 기능을 연구할 수 있습니다. 마찬가지로, 단백질의 실질적인 국소화 오소화(mislocalization)는 세포 단백질 품질 관리 네트워크가 세포의 요구에 적응하지 못할 때 발생합니다. 단백질은 형광 표지된 단백질을 사용하거나 면역 염색을 통해 살아있는 동물의 세포에서 쉽게 시각화할 수 있습니다. 마지막으로, ex vivo 방법을 사용하여 단백질 발현 및 안정성을 모니터링할 수 있습니다. 이를 통해 단백질 국소화 및 안정성에 대한 심층 분석과 함께 행동 및 생리학적 변화를 빠르고 간단하게 스크리닝할 수 있어 단백질 단백질 변형제(proteostasis modifier)를 모니터링할 수 있습니다. 이러한 다양한 방법을 결합하면 세포의 단백질 접힘 환경에 대한 광범위한 관점을 얻을 수 있습니다. 실제로, 이 전략은 예쁜꼬마선충(C. elegans), 효모, 조직 배양 및 박테리아15,25-35에서 프로테오스타시스 섭동을 모니터링하는 데 성공적으로 사용되었습니다.

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프로토콜

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살아있는 유기체의 단백질 접힘을 모니터링하기 위한 행동 분석 사용

1. 행동 분석을 위한 동물 동기화

  1. 예쁜꼬마선충36의 유지를 위한 배지 및 플레이트 준비, 음식 준비 및 동물 성장 조건을 포함한 표준 방법을 따르십시오. 온도(15-25 °C), 개체군 크기 및 식량 가용성을 포함한 재배 조건을 신중하게 제어하십시오. 박테리아 또는 곰팡이 오염이 보이는 접시는 버리십시오.
  2. 15-30개의 배아를 선택하여 새 플레이트로 옮기고 실험 기간 동안 원하는 온도(15-25°C)에서 성장합니다. 또는 접시에 10-20마리의 육식 성체를 놓고 30-60분 동안 알을 낳게 한 다음 접시에서 꺼냅니다. 배아를 직접 채취하는 것과 임신 성체를 설정하는 것 모두 연령(±6시간)에 약간의 변동성을 줄 것입니다. 이러한 변동성을 줄이려면 특정 단계(예: 쉼표 단계)에서 배아를 선택하거나 이제 막 알을 낳기 시작한 성인 10-20명(성인기 2일차)을 설정합니다. 이 치료법은 스트레스가 많고 단백질화에 영향을 줄 수 있으므로 가능하면 표백을 통한 동기화를 피하십시오.
  3. 동기화된 동물을 선택하고 채점을 위해 분석 플레이트로 옮긴 다음 폐기합니다.

2. 이동 분석

동기화 된 동물을 선택하고 움직임 점수 (15-25 ° C)를 위해 원하는 온도에서 깨끗한 플레이트로 옮깁니다. 각 생물학적 복제에 대해 >20마리의 동물을 채점하고 실험 조건당 최소 3회 반복 분석을 수행합니다. Wilcoxon Mann-Whitney 순위합 검정을 사용하여 두 개의 독립적인 실험 조건을 비교할 수 있습니다.

  1. 가벼운 운동 장애를 분석하기 위해 깨끗한 박테리아 잔디밭 중앙에 5-7마리의 동물을 함께 놓고 동물들이 접시 위에서 2분 동안 움직이도록 합니다. 이 시간 간격은 야생형 동물의 90%가 1cm 원을 지우는 데 걸린 시간을 기준으로 결정되었습니다.
  2. 2분 이내에 1cm 원을 지우지 않은 동물의 수(예: 설정된 지점에서 반경 1cm 이내에 남아 있는 동물)를 조정되지 않은 것으로 계산합니다.
  3. 심각한 운동 장애를 분석하려면 동물을 깨끗한 박테리아 잔디밭에 놓으십시오.
  4. 시간 0(t=0)과 5분 후(t=5)에 여러 동물을 촬영합니다. 5분 후에도 몸길이가 하나도 움직이지 않은 동물을 마비된 것으로 점수를 매깁니다.

3. 내열성

  1. >20마리의 동기화된 동물을 선택하여 450μl 열 충격(HS) 완충액이 포함된 24웰 플레이트로 옮깁니다(표 1). 각 생물학적 복제에 대해 >20마리의 동물에 점수를 매기고 실험 조건당 최소 4회 반복 분석을 수행합니다.
  2. 24웰 플레이트를 가열된 수조에 옮깁니다. HS 온도와 지속 시간은 성장 조건, 특히 재배 온도에 크게 좌우됩니다.
  3. HS 완충액에 SYTOX 오렌지 9μl를 보충합니다.
  4. TXR 필터가 있는 형광 입체경을 사용하여 염료 흡수를 모니터링하여 동물의 생존 점수를 매깁니다. 염료를 섭취한 동물들은 죽었다. Wilcoxon Mann-Whitney 순위합 검정을 사용하여 두 개의 독립적인 실험 조건을 비교할 수 있습니다.

면역염색 및 태그가 지정된 단백질을 사용하여 특정 세포의 단백질 접힘 모니터링

4. 면역염색을 통한 단백질 국소화 모니터링

  1. 필요한 단계에서 최소 30마리의 동물을 M9 buffer36이 들어있는 Eppendorf tube로 옮깁니다.
  2. 짧은 저속 원심분리 단계(3,000rpm/900 x g, 2분)를 수행하고 다시 현탁하여 M9 버퍼로 동물을 몇 번 세척합니다.
  3. 튜브를 얼음 위에 몇 분 동안 올려 식히십시오.
  4. 여분의 액체를 제거하고 500μl의 얼음처럼 차가운 4% 파라포름알데히드 용액으로 배양합니다(표 2). 배양 시간은 검사한 각 단백질에 대해 보정해야 하며 실온에서 약 5-30분이어야 합니다. 4°C에서 장기간 배양을 수행할 수도 있지만 이는 샘플 투과성을 손상시킬 수 있습니다.
  5. 원심분리(3,000rpm, 1-2분)로 PBS-Tween(pH 7.2) 완충액으로 고정 동물을 3회 세척합니다. 이 단계에서 동물은 4 ° C에서 몇 주 동안 보관할 수 있습니다.
  6. 원심분리(3,000rpm, 1-2분)로 동물을 수집합니다.
  7. 후드에서 대부분의 상층액을 제거하고 펠릿을 1ml β-메르캅토에탄올(β-ME) 용액에 재현탁합니다(표 2).
  8. 37°C에서 밤새 배양하고 너트레이터에서 부드럽게 흔듭니다.
  9. 후드에서 PBS-Tween(pH 7.2) 버퍼로 동물을 3번 세척합니다.
  10. 동물을 50-100 μl의 PBS-Tween (pH 7.2)에 재현탁시킵니다. 이 단계에서 동물은 4 ° C에서 몇 주 동안 보관할 수 있습니다.
  11. 원심분리(3,000 rpm, 1-2분)로 동물을 수집하고 PBS-Tween 완충액의 대부분을 제거합니다.
  12. 각 튜브에 100-150 μl의 콜라겐 분해 효소 용액을 추가하고 37 ° C에서 강한 교반으로 배양합니다 (Thermo-mixer 또는 진탕 인큐베이터 사용).
  13. 부화 5분 후부터 실체현미경으로 동물을 자주 검사합니다. 동물의 20%가 망가졌을 때, 얼음 위에 튜브를 올려 반응을 멈춥니다. 이 단계는 매우 민감합니다! 치료 기간은 고정 조건에 따라 다르며 균주에 따라 크게 다를 수 있습니다. 장기간의 부화는 동물의 완전한 퇴화를 초래할 수 있습니다. 사용된 각 효소 배치에 대해 조건을 보정해야 하며 분해를 주의 깊게 모니터링해야 합니다.
  14. PBS-Tween(pH 7.2)에서 동물을 두 번 세척한 다음 원심분리(3,000rpm, 1-2분)로 동물을 수집하고 PBS-Tween 완충액의 대부분을 제거합니다.
  15. 1ml의 AbA 용액(표 2)을 넣고 실온에서 1시간 동안 부드럽게 흔들어 배양합니다. 이 단계에서 동물은 4 ° C에서 몇 주 동안 보관할 수 있습니다.
  16. 원심분리(3,000rpm, 1-2분)로 동물을 수집하고 200μl AbA에 재현탁합니다.
  17. 1:100-1:1,000으로 희석된 1차 항체를 AbA 용액에 넣고 부드럽게 흔들어 배양합니다. 배양 온도와 기간은 항체마다 다를 수 있으며 검사하는 각 단백질에 대해 보정해야 합니다. 우리는 실온에서 하룻밤 배양으로 시작합니다.
  18. 원심분리(3,000rpm, 1-2분)로 동물을 씻습니다.
  19. AbA 완충액(1ml)을 추가하고 실온에서 15-60분 동안 부드럽게 혼합하여 배양합니다. 이 단계에서 동물은 4 ° C에서 몇 주 동안 보관할 수 있습니다.
  20. 선택 사항: 샘플은 형광 염료로 염색할 수도 있습니다. 이를 위해 염료(예: DAPI(2mg/ml) 또는 Phalloidin(1:100))을 200μl AbA에 첨가하고 최대 1시간 동안 부드럽게 배양합니다. 이 단계는 2차 항체를 세척하는 단계 중 하나 중에 수행할 수 있습니다.
  21. 4.18-4.19단계를 반복하여 동물을 3번 씻깁니다.
  22. 100μl AbA에 적절한 형광 표지된 2차 항체를 1:100으로 희석하여 추가합니다.
  23. 샘플을 덮고(또는 어두운 튜브에) 실온에서 몇 시간 동안 흔들면서 배양합니다.
  24. AbA 완충액(1ml)에서 배양하고 실온에서 15-60분 동안 부드럽게 혼합한 후 원심분리(3,000rpm, 1-2분)하여 동물을 3회 세척합니다. 이 단계에서 동물은 4 ° C에서 몇 주 동안 보관할 수 있습니다.
  25. 슬라이드에 동물을 장착하려면 모든 액체를 제거하고 동일한 완충액 10μl에 재현탁합니다.
  26. 동물이 깎이지 않도록 피펫 끝의 끝을 자르고 샘플의 1-2 μl를 슬라이드로 옮깁니다.
  27. 1:1 비율로 장착 매체를 추가합니다.
  28. 커버슬립으로 슬라이드를 부드럽게 덮고 매니큐어로 밀봉합니다. 슬라이드를 즉시 모니터링하지 않으면 슬라이드를 -20°C에서 장기간 보관할 수 있습니다.

5. 태그가 지정된 단백질의 국소화 모니터링

  1. 필요한 단계에서 슬라이드의 M9 버퍼 10ml 드롭에 최소 15마리의 동물을 수집합니다.
  2. "지렁이 선택"을 사용하여 동물을 파라포름알데히드 용액 10ml 방울(4%)(표 2)로 옮기고 모든 동물이 움직임을 멈출 때까지 기다립니다(약 5분).
  3. "웜 픽(worm pick)"을 사용하여 동물을 M9 버퍼 2ml 드롭과 장착 매체(1:1)로 이동합니다(표 2).
  4. 커버 슬립으로 동물을 부드럽게 덮고 매니큐어로 밀봉하십시오.

단백질 접힘 및 안정성을 모니터링하기 위해 ex vivo 분석 사용

6. 부분 분해

  1. 마이크로분리 튜브에 1-2ml M9 완충액을 사용하여 15개의 플레이트(60mm)에서 동물을 세척합니다. 동물이 붐비지 않아야 하며 실험 기간 동안 충분한 음식을 구할 수 있어야 합니다.
  2. 원심분리(3,000rpm, 2분)하고 동물을 다시 매달아 M9 버퍼로 동물을 몇 번 씻습니다.
  3. 마지막 회전 후 100μl M9 완충액에 동물을 다시 현탁시킵니다.
  4. 액체 N에서 급속 동결2. 샘플은 -80°C에서 보관할 수 있습니다.
  5. 냉각된 유봉과 전동 드릴(휴대용 조직 배양 드릴도 사용할 수 있음)을 사용하여 샘플을 분쇄합니다. 샘플을 얼음 위에 보관하고 과열을 피하십시오.
  6. 분쇄가 완료되었는지 확인하기 위해 실체 현미경으로 동물을 자주 검사합니다. 온전한 동물이 남아 있으면 절차를 반복하십시오.
  7. 웜 추출물을 피펫팅하여 부피를 추정합니다.
  8. (2x) 웜 용해 용액을 1:1 비율로 추가합니다(표 3). 어떤 종류의 프로테아제 억제제도 사용하지 마십시오.
  9. 얼음 위에서 15분 동안 배양합니다.
  10. 예냉각된 원심분리기(4°C)에서 원심분리(1,000 x g에서 2분 동안)로 이물질을 제거합니다.
  11. 상층액을 깨끗한 마이크로분리 튜브에 옮깁니다. 시료는 직접 사용하거나 -80°C에서 보관할 수 있습니다.
  12. 키모트립신 용액(표 3)을 준비하고 사용할 때까지 얼음에 보관합니다.
  13. Bradford 분석을 사용하여 총 단백질 농도를 측정합니다.
  14. 필요한 경우 총 단백질 농도가 3-3.5 mg/ml가 되도록 샘플을 희석합니다.
  15. 총 단백질 용해물(1:1,200)에 키모트립신 용액을 추가합니다.
  16. 배양 시간을 결정하기 위해 60분 동안 chymotrypsin으로 샘플을 배양합니다. 다른 시점(예: 0, 5, 20, 40 및 60분)에서 샘플에서 20μl 분취액을 제거하고 즉시 SDS 샘플 버퍼와 혼합하고 96°C에서 5분 동안 끓입니다. *또는 다른 농도의 chymotrypsin으로 샘플을 배양하고 SDS 샘플 버퍼를 추가하고 5분 동안 끓여서 특정 시간 후에 반응을 중지합니다. 96 °C에서.
  17. SDS-PAGE 젤에서 샘플을 실행합니다.
  18. 단백질의 상대적 안정성을 결정하기 위해 적절한 항체를 사용하여 웨스턴 블롯 분석을 수행합니다.
  19. 시료 간에 유의미한 변화를 보이는 최적의 조건(키모트립신 농도 및 분해 시간)을 결정하고 이러한 조건을 향후 실험에 사용합니다.
  20. NIH 이미지 겔 모듈과 같은 밀도 측정 소프트웨어를 사용하여 다양한 분해 산물(저분자량 분절)의 강도를 측정합니다.

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결과

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손상된 접힘 환경은 단백질의 잘못된 접힘 및 응집으로 이어질 수 있습니다. 단백질 잘못 접힘은 변형된 형태와 관련이 있으며 단백질 기능의 상실을 초래합니다. 당사는 보완적인 접근법을 사용하여 온전한 동물, 특정 세포 및 단백질 추출물에서 단백질 접힘과 기능을 모니터링합니다. 그런 다음 알려진 불안정한 돌연변이와 관련된 강력한 행동 및 세포 표현형을 기반으로 하는 접힘 센서를 지능적으로 선택하여 단백질 접힘 환경의 변화를 모니터링하는 데 사용할 수 있습니다. 온도에 민감한 내인성 돌연변이 단백질의 예로는 두꺼운 근육 필라멘트 단백질인 파라마이신(C. elegans UNC-15)의 L799F 돌연변이가 있습니다37. 미스센스 돌연변이는 coiled-coil 상호 작용에 영향을 미쳐 paramyosin(ts)가 제한 온도에서 근육 육종 대신 paracrystalline assembly로 잘못 접히고 잘못 국소화됩니다. 이러한 국소화 오류(mislocalization)는 두꺼운 필라멘트 형성을 방해하...

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토론

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세포 단백질 정체 용량의 프로브는 접힘 환경의 변화에 매우 민감해야 하며 단백질 접힘 품질 관리 기능을 실시간으로 평가할 수 있도록 쉽게 모니터링할 수 있어야 합니다. 준안정 단백질을 단백질 정체 능력의 프로브로 사용하여 표현형, 세포내 단백질 국소화 및 단백질 형태의 변화를 모니터링했습니다. 여기에 제시된 프로토콜은 운동성, 근육 필라멘트 조직 및 미오신 안정성을 포함한 근육 단백질 관련 표현형에 중점을 둡니다. 그러나 이러한 프로토콜은 다른 접이식 센서를 모니터링하기 위해 수정할 수 있습니다. 행동 표현형의 경우 유기체 수준에서 단백질 기능을 결정하기 위한 간단하고 강력한 분석을 설계하는 것이 중요합니다. 예를 들어, dyn-1 의 ts 돌연변이는 제한 조건에서 엔도사이토시스 및 시냅스 소포 재활용의 급속한 손실로 이어집니다. 결과적으로, 체강액으로 분비된 GFP의 흡수 또는 GFP(SNB-1::GFP)로 태그된 시냅스 단백질인 시냅스토브레빈-1의 국소화에 의해 각각 모니터링될 수 있습니다28

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공개 사항

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저자는 경쟁하는 금전적 이해관계가 없음을 선언합니다.

감사의 글

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

이 작업에 사용된 모든 선충 균주는 NIH National Center for Research Resources(NCRR)의 자금 지원을 받는 Caenorhabditis Genetics Center에서 제공했습니다. H.F. 엡스타인(H.F. Epstein)이 개발한 단클론 항체는 NICHD의 후원 하에 개발되고 아이오와 대학교 생물학과에서 유지 관리하는 발달 연구 하이브리도마 은행(Developmental Studies Hybridoma Bank)에서 얻었습니다. N. Shemesh는 Fay and Bert Harbour 상의 지원을 받았습니다. A.B.-Z. 이스라엘 고등교육위원회 알론 펠로우십(Alon Fellowship), 마리 퀴리 국제 재통합 보조금, 양국 과학 재단 및 이스라엘 과학 재단(보조금 번호 91/11)의 보조금의 지원을 받았습니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
항체 staning 및 fiaxtion파라포름알데히드Merc8187151000
Tween-20 Bio-Rad1706531
콜라겐 분해 효소시그마C5138-100MG
DABCOMerc8034560100
Triton X-100Alfa AesarA16046
β -MESigma8057400250
BSADi Cam000-40-100
  부분 다이제스트 ChymotrypsinSigmaC4129-250MG
내열성SYTOX 오렌지InvitrogenS11368
콜레스테롤Amaresco0433-250G
장비
M165 FC 형광 입체경LeicaTXR 필터
EXi 블루 형광 현미경 카메라QImagingEXI-BLU-R-F-M-14-C
ConfoCor 3/510 META 컨포칼 현미경Zeiss
펠릿 유봉SigmaZ359947-100EA
펠릿 유봉 무선 모터KontesK749540-0000
MicroCL 17 마이크로 원심분리기 시리즈열75002455냉장, , 230 V 50/60 Hz, ClickSeal 생물 봉쇄 뚜껑이 있는 24x 1.5/2.0 ml 로터 포함

참고문헌

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