방법 논문

만성 신장 질환 환자에서 혈관 기능의 평가

DOI:

10.3791/51478

⸱

2014년 6월 16일

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Division of Renal Diseases and Hypertension, University of Colorado, Denver, 2Department of Integrative Physiology, University of Colorado, Boulder

이 논문에서

요약

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혈관 장애 및 생리 학적 기전에 기여하는 정도는 상완 동맥 흐름 중재 팽창 대동맥 맥파 속도, 혈관 내피 세포의 단백질 발현을 측정함으로써, 만성 신장 질환을 가진 환자에서 평가 될 수있다.

초록

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만성 신장 질환 (CKD) 환자는 크게 일반 인구에 비해 심혈관 질환 (CVD)의 위험이 증가하고,이 부분적으로 만 기존의 CVD 위험 요인에 의해 설명된다. 혈관 장애는 혈관 내피 기능 장애 (가장 일반적으로 장애인 내피 세포에 의존하는 팽창 [EDD]로 평가)과 큰 탄성 동맥의 경직을 특징으로 중요한 비 전통적인 위험 요소입니다. 다양한 기술이 EDD 큰 탄성 동맥 강성을 평가하기 위해 존재하지만 가장 일반적으로 각각 상완 동맥 흐름 중재 팽창 (FMD의 BA)와 대동맥 맥파 속도 (대동맥 맥파 속도를 통하여 간접적가) 있습니다 사용. 혈관 장애의 이러한 비 침습적 측정 모두와 신장 질환이없는 환자에서 미래의 심혈관 질환의 독립적 인 예측 인자이다. CKD 환자는 모두 장애인 FMD BA을 설명하고, 대동맥 맥파 속도를 통하여 간접적 증가했다. 반면에 의한 정확한 메커니즘 혈관 부전 deve을CKD에서의 해양 생물이 불완전하게 이해하고, 증가 된 산화 스트레스 및 산화 질소 (NO) 생체 이용률의 후속 감소는 중요한 기여자이다. 산화 스트레스의 세포 변화는 전주 정맥 혈관 내피 세포를 수집하고 면역을 사용하여 산화 스트레스의 마커 단백질 발현을 측정하여 평가 될 수있다. 우리는 FMD BA, 대동맥 맥파 속도를 통하여 간접적, 혈관 내피 세포의 단백질 발현을 측정하기 위해 여기에이 방법에 대한 설명을 제공한다.

서론

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만성 신장 질환 (CKD)는 단독 1 미국에서 ~ 인구의 11.5 %에 영향을 미치는 전염병 비율에 도달하였습니다 주요 공중 보건 관심사입니다. CKD 환자에서 심혈관 사망 또는 심장 혈관 사건의 위험은 크게 일반 인구의 2 ~ 4에 비해 증가한다. CKD 환자는 기존의 심장 혈관 위험 요소의 높은 유병률을 나타내고 있지만, 이것은 단지 심혈관 질환의 자신의 발생률이 증가 (CVD) 5의 일부를 설명합니다. 혈관 장애는 신장 6-9의 분야에서 증가 인정 받고 중요한 비 전통적인 심혈관 질환의 위험 요인이다.

많은 변화 가능성 동맥 부전의 발전에 기여하는 반면, 큰 관심사들 사이에서 가장 일반적으로 손상된 내피 의존성 팽창 (EDD)로 평가 혈관 내피 기능 장애의 발달, 그리고 LA의 경직 아르RGE 탄성 동맥 10. 다양한 기술 및 EDD 큰 탄성 동맥 경화를 평가하기 위해 존재하지만, 가장 일반적으로 사용되는 각각 상완 동맥 흐름 중재 팽창 FMD BA 및 대동맥 맥파 속도 (대동맥 맥파 속도를 통하여 간접적)이다. EDD을 평가하기 위해 일반적으로 사용되는 또 다른 기술은 정맥 폐색 혈량 측정법 (plethysmography) (11, 12)을 사용하여 아세틸 콜린 등의 약물 에이전트에 팔 혈류 반응을 측정한다. 그러나,이 방법은 FMD BA보다 더 많은 침략과 CKD 환자에서 금기 할 수있다 상완 동맥의 도관이 필요합니다. 동맥 경화를 평가하기 위해 대체 기술이 널리 이용되거나 대동맥 맥파 속도를 통하여 간접적으로 21 임상 종점으로 확인되지 않지만, 경동맥 동맥 로컬 컴플라이언스 (강성의 역수)를 측정하는 것이다.

CKD 환자는 손상 한 FMD BA 14-16 증가 대동맥 맥파 속도 AP를 모두 보여웨스트 버지니아 13,17,18도 전에 투석을 필요로합니다. 중요한 임상 적 관점에서, 혈관 기능 장애의 이러한 비 침습적 조치 모두 CKD 19-21뿐만 아니라 다른 인구 22 ~ 26의 환자에서 모두 미래의 심혈관 사건과 사망률의 독립적 인 예측 인자이다. 이 기술은 CKD 환자 등의 CVD 위험이 다양한 인구를 공부에 적용 할 수 있습니다.

동맥 부전 CKD에서 개발하는 정확한 메커니즘은 불완전하게 이해된다; 그러나, 감소 된 산화 질소 (NO) 생체 이용률은 중요한 기여를 27-30과 장애인 EDD 모두의 일반적인 메커니즘 증가 동맥 경화 10,31입니다. CKD에서, 산화 스트레스가 증가하고, NO 생체 이용률 32-34의 감소에 기여한다. 산화 스트레스는 항산화 방어에 상대적인 반응성 산소 종 (ROS)의 과다 생물학적으로 정의된다. 생리적 인 자극, INC염증 신호를 건의 Luding, 산화 효소 시스템을 촉진 슈퍼 옥사이드 음이온 (O 2 ● -)를 포함하여, ROS를 생산하는 (예를 들면, 산화 효소 NADPH 산화 효소.) 35. 슈퍼 옥사이드의 생산은 궁극적으로 산화 질소 (NO)의 생체 이용률을 감소로 연결됩니다.

내피 기능 장애는 사건의 CKD (36)의 독립적 인 예측대로 손상 NO 생체 이용률은 차례로, CKD의 발전에 기여할 수 없다. 이 동물 데이터 eNOS의 억제는 고혈압 (전신 및 사구체)를 유도하는 것을 나타내는과 일치, 사구체 국소 빈혈, 사구체 경화증 및 tubulo 간질 부상 37. 실제로, NO 생체 이용률이 인간의 CKD (38, 39)의 내피 기능 장애에 대한 중요한 역할을 제안, 인간의 질병을 모방 실험 신장 질환의 개발과 진행에 필요한 나타납니다 감소.

혈관 산화 스트레스의 마커는 V에서 평가 될 수있다원래 콜롬보 등. (40)에 의해 개발 및 씰 등 41-43 수정 기술을 사용하여, 인간의 연구 대상에서 수집 내피 세포를 ascular. 2 멸균 J-선을 사용하여, 세포가 전주 정맥에서 수집, 복구 고정하고, 나중에 긍정적으로 내피 세포로 확인하고 면역을 사용하여 관심의 단백질의 발현을 분석 하였다.

우리는 여기에) 측정 FMD의 BA에 사용할 수있는이 방법에 대한 설명을 제공한다; b)는 대동맥 맥파 속도를 통하여 간접적 측정; C) 산화 스트레스의 마커의 혈관 내피 세포의 단백질 발현을 측정합니다. 초점은 만성 투석을 필요로하지 않는, CKD 환자에 있습니다.

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프로토콜

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이 프로토콜은 콜로라도 여러 기관 검토위원회 (COMIRB)의 지침을 따릅니다.

테스트 세션 1. 준비

  1. 참가자가 가장 정확한 측정을 위해 이러한 제한을 따라야합니다 : 음식과 카페인 빠른 12 시간을, 운동, 흡연 12 시간의 구속에서 12 시간의 억제는 약물의 적용> 4 반감기 억제는 가능하면 (에 가능하지 않을 수 있습니다 경우 이러한 CKD 환자와 같은 인구), 그리고 폐경 전 여성이 일 호르몬의 영향을 최소화하기 위해 월경주기의 1-7에서 테스트해야합니다.
  2. 인산 완충 식염수 (PBS)의 476.8 ml로에 2 ㎖ M 0.5의 에틸렌 디아민 테트라 아세트산 (EDTA), 헤파린 (180 USP 단위 / mg)을 0.05 g, 및 소 혈청 알부민 2.5 g을 첨가하여 해리 완충액 500 ㎖를 준비 7.4의 산도. 이것은 몇 달 동안 4 ° C에 저장할 수 있습니다.
  3. 초음파, 컴퓨터 및 비 침습성 혈역학을 켭니다워크 스테이션 (NIHem, 동맥 강성 장비). 컴퓨터 R-파 트리거 박스에 초음파를 출력 케이블을 연결합니다.

혈관 내피 세포의 2. 수집 및 처리

  1. 훈련을받은 간호사 또는 의사는 수집을 수행 (2.2-2.5, 2.7 단계) 및 연구원 와이어를 수집하고 처리 (2.6, 2.8-2.19 단계)
  2. , 국소 소독제와 전주 사이트를 예비 학교에 지혈대를 적용, 정맥 찾은 18 G 카테터와 cannulate. IV의 끝에 heplock 어댑터를 놓습니다.
  3. 멸균 장갑을 착용하고 사이트를 통해 불임의 fenestration 있음을 넣어.
  4. 커튼에 2 J-선을 배치합니다. 두 전선에서 "J"모양을 풀다하는 "J"의 아크를 당깁니다.
  5. heplock를 덮개를 벗기다 및 정맥 약 8cm로 J-와이어를 공급. 와이어를 제거하기 전에 앞뒤로 여러 번 누릅니다. 와이어에 심한 혈액을 피하십시오.
  6. 그들이에 들어갈 수 있도록 전선을 싹둑 전선 절단기를 사용하여해리 버퍼 ~ 30 ㎖를 포함하는 50 ML 원뿔 관
  7. 두 번째 와이어 2.5 단계를 반복합니다.
  8. 두 번째 와이어 단계 2.6를 반복합니다. 젖은 실험실에 튜브를 반환합니다.
  9. 포셉 한 쌍의 전선을 걸쇠와 관의 내부에 전선을 보유하지만, 상기 용액. 10 분 동안 반복해서 50 ML 원뿔 튜브에서 분리 버퍼를 수집하는 전동 피펫을 사용하고 관에 전선에서 과잉 유동성을 흔들어 다음, 전선을 씻어 진동하는 전선의 길이를 아래로 실행되도록 놓습니다.
  10. 400 XG에 7 분, 4 ℃에서 원심 분리
  11. 100 ml의 포름 알데히드 용액 + 900 ㎖의 PBS를 결합하여 호일 커버 튜브에 포름 알데히드 용액을 준비합니다.
  12. 천천히, 원심 분리기에서 튜브를 제거하고 진공 펌프를 켭니다, 흡입 호스의 끝 부분에 피펫 팁을 배치하고 펠렛을 방해하지 않고 나머지를 진공 청소기로 청소, 튜브 ~ 400 ㎖에 둡니다.
  13. 박 및 피펫 1 ㎖ 포름 알데히드 용액에 커버샘플을 해결하기 위해 관. 재현 탁하지 마십시오. 실온에서 10 분 동안 배양한다.
  14. 제목과 연구 방문 정보 표시와 아빠 펜으로 각각의 슬라이드에 타원을 그려 8 슬라이드를 준비합니다.
  15. 15 ML 400 XG에서 5 분, 4 ° C.에 대한 PBS,에 resuspend, 원심 분리기 추가
  16. 단계를 반복 2.15, 12 ML 400 XG에 6 분 4 ° C.에 대한 PBS,에 resuspend, 원심 분리기를 추가
  17. 천천히, 원심 분리기에서 튜브를 제거하고 진공 펌프를 켭니다, 흡입 호스의 끝 부분에 피펫 팁을 배치하고 펠렛을 방해하지 않고 나머지를 진공 청소기로 청소, 튜브 ~ 2 ㎖를 둡니다.
  18. 균등하게 타원형 지역에있는 8 슬라이드에서 재현 탁 피펫.
  19. 5 시간 동안 37 ° C에서 다음 (샘플이 몇 년 동안 잘 될 것입니다) 분석을위한 준비가 될 때까지 -80 ° C에서 보관 인큐베이터에있는 장소.

FMD BA와 대동맥 맥파 속도를 통하여 간접적 3. 평가

  1. 일회용 팬티에 대한 연구 제목 변경을하고 시간이조용하고, 희미한, 기후 제어 방에서 메신저 / 그녀의 거짓말 부정사.
  2. 해당 특정 초음파 및 동맥 경화 장치에 대한 ECG의 수 (이 절차는 비 침습성 혈역학 워크 스테이션 [NIHem] 4 전극을 필요로 동맥 강성을 측정하는 데 사용), 그리고 주제에 혈압 커프를 놓습니다.
  3. 20 분 후, 혈압 판독을 시작한다. 적어도 3을 수행하고 측정이 5 mmHg로 내 때까지 각 읽기 사이에 2 분 휴식, 반복합니다.
  4. 상완 동맥의 맥박에 대한 부위를 촉진 및 소프트웨어 프로그램을 사용하여 상완 파형을 기록 안압계를 배치하여 안압계를 시작한다.
  5. , 반경 대퇴 및 경동맥에 대해 반복합니다.
  6. 줄자 (상완 요골과 경동맥) 및 사용자 정의 자 / 캘리퍼스 (대퇴골)를 사용하여 supersternal 노치에서 각 사이트까지의 거리를 측정한다.
  7. 소프트웨어 프로그램을 사용하여 경동맥, 상완, 경동맥 레이디 얼, 경동맥 - 대퇴 (대동맥 맥파 속도를 통하여 간접적)를 계산합니다.
  8. 장소모드를 트리거하도록 설정 혈관 소프트웨어 주두 처리 및 기록 기준선 상완 동맥 초음파 영상 및 혈액 유속 측정의 적어도 10 심장 사이클 바로 원위 팔뚝 혈압 커프. 기계 팔 원한다면 초음파 프로브를 견고하게하기 위해 사용될 수있다.
  9. 250 mmHg로에 팔 혈압 커프를 팽창시키고 타이머를 시작합니다. 매우 여전히 남아있는 참가자를 지시합니다.
  10. 타이머 4:45을 읽을 때 모드를 실행하기 위해 혈관 소프트웨어 세트와 기록 속도를 시작합니다. 트리거는 5시에 커프를 해제하고 시계는 5:10 읽을 때 B-모드 (직경) 이미지를 기록하는 초음파를 변경합니다.
  11. 시계가 7시 될 때까지 녹음을 계속합니다.
  12. 모드를 실행하도록 설정 혈관 소프트웨어를 기본 상완 동맥 초음파 영상의 기록을 최소 10 심장주기.
  13. 피사체의 혈압을 가라. 만약 수축기 혈압> 100 mmHg로, 다 제목하에 설하 니트로 글리세린 0.4 mg의 배치 및# 39;의 혀와 환자가 다른 금기 사항이 없으면, 타이머를 시작합니다.
  14. 시계 모드를 실행하도록 설정 혈관 소프트웨어와 3시 읽을 때 B-모드 (직경 이미지) 기록을 시작합니다.
  15. 시계는 8:00 읽을 때 녹음을 중지합니다.
  16. 이 기준에 반환 될 때까지 혈압을 모니터

4. 인간 제대 정맥 내피 세포를 준비 (HUVEC) 제어 슬라이드

  1. 통로 5-6 된 HUVEC 성장과 ~ 80 %의 포화 상태.
  2. 3 트립신의 ML 또는 어떤 요리 / 플라스크에 필요한과를 Trypsinize.
  3. 트립신 중화 용액 동량을 사용하여 트립신을 중화.
  4. ~ 5 분 200 XG에 원심 분리기와 진공 청소기를 이용하여 트립신과 중화 솔루션을 제거합니다.
  5. 씻어 ~ 10 ㎖의 PBS를에 재현 탁.
  6. 200 XG ~ 5 분 원심 분리기. PBS를 제거합니다.
  7. PBS를 제거하고 1800 μL PBS + 200 ㎕의 포름 알데히드에 고정합니다.
  8. PBS (~ 10 ml)에 재현 탁.
  9. ~ 200 XG에 원심 분리기5 분. 슬라이드 당 ~ 200 μl를 추가 할 수있는 적절한 볼륨 PBS,에 resuspend를 제거합니다.
  10. -80 ° C에서 보관 슬라이드 분석을위한 준비가 될 때까지 (샘플 몇 년 동안 잘 될 것입니다).

혈관 내피 세포의 5. 염색

  1. -80 ° C의 냉장고에서 슬라이드를 타고 (이 절차는 한 HUVEC 제어 슬라이드를 포함, 10 슬라이드의 배치입니다) 실온에서 5 분을 기다립니다.
  2. 섬세한 작업 와이프 ​​(슬라이드의 중앙을 터치하지 않음)을 가진 과잉의 물을 닦아.
  3. 각 슬라이드에 변경 PBS를 추가하여 슬라이드를 다시하는 것은 수화물 10 분을 둡니다.
  4. 슬라이드 서있는 동안, 5 % 당나귀 혈청 및 기타 솔루션을 준비합니다.
    1. 최대 10 개의 슬라이드를 위해 (7.4의 pH로) 변경된 PBS의 5,700 μL에 당나귀 혈청 300 μl를 추가하여 5 % 당나귀 혈청을 준비한다 (더이 양을 증가).
    2. 5 % 혈청의 1,000 μL에 대한 관심의 기본 항체를 희석. 예를 들어, nitrotyrosine와 NADPH를 위해산화 효소 (1:300과 1:1,500)는 산화 스트레스의 지표로 사용할 수 있습니다.
    3. 5 % 혈청 1500 μll에 AF568의 5 μl를 희석하여 보조 AF568를 준비합니다.
    4. 준비의 2 μl를 희석하여 cadherin의 VE 5 % 혈청의 1,000 μL에 카데 린을 VE.
    5. 5 μl를 희석하여 AF488 준비는 5 % 혈청의 1,000 μL에 카데 린을 VE.
    6. AF568를 유지, 전체 과정을 통해 포일에서 헤린과 AF488 VE와 슬라이드를 준비하는 동안 다음 4 ° C 냉장고에 로커에 배치합니다.
  5. 재수의 10 분 후, 섬세한 작업 건조 슬라이드를 닦아냅니다.
  6. 60 분 동안 5 % 당나귀 혈청을 추가하고 화학 물질의 완전한 범위를 보장하기 위해 원으로 지역에 플라스틱 파라핀 필름의 조각을 배치합니다.
  7. 섬세한 작업과 플라스틱 파라핀 필름 건조 슬라이드를 폐기 닦아냅니다. 세척하지 마십시오. 60 분 동안 차 항체를 추가하고 보장하기 위해 원으로 지역에 플라스틱 파라핀 필름의 조각을 배치화학 물질의 전체 범위.
  8. 물총 병에서 변형 된 PBS로 세척하고 5 분 동안 슬라이드 열의 흡수, 플라스틱 파라핀 필름을 폐기하십시오. 슬라이드를 적시는 동안, 어두운 방으로 이동합니다. 나머지 모든 단계에 대한 어둠 속에서 작업 할 수 있습니다.
  9. 킴 와이프 ​​건조 슬라이드, 45 분 AF568 (차 항체)를 추가하고, 화학 물질의 완전한 범위를 보장하기 위해 원으로 지역에 플라스틱 파라핀 필름의 조각을 배치합니다. 빛에서 커버.
  10. 생물 학적 폐기물 용기의 플라스틱 파라핀 필름을 폐기하십시오. 물총 병에서 변경된 PBS와 린스, 다음 5 분 동안 열을 담가.
  11. 킴 와이프 ​​건조 슬라이드, 다음, 추가 60 분 cadherin의를 VE 및 화학 물질의 완전한 범위를 보장하기 위해 원으로 지역에 플라스틱 파라핀 필름의 조각을 배치합니다. 빛에서 커버.
  12. 생물 학적 폐기물 용기의 플라스틱 파라핀 필름을 폐기하십시오. 물총 병에서 변경된 PBS와 린스, 다음 5 분 동안 열을 담가.
  13. 건조 슬라이드섬세한 작업은 30 분 AF488를 추가하고 화학 물질의 완전한 범위를 보장하기 위해 원으로 지역에 플라스틱 파라핀 필름의 조각을 배치 닦아냅니다. 빛에서 커버.
  14. 생물 학적 폐기물 용기의 플라스틱 파라핀 필름을 폐기하십시오. 물총 병에서 변경된 PBS와 린스, 다음 5 분 동안 열을 담가.
  15. 섬세한 작업을 건조 슬라이드를 닦아 슬라이드를 20 분 동안 건조 할 수 있습니다. 빛에서 커버.
  16. 각 슬라이드에 4 매체를 장착 만 fluoroshield 한 방울 ', 6 diamidino -2 - 페닐 인돌 염산염 (DAPI)을 추가하고 커버 슬립 각을 커버합니다.
  17. 호일로 덮여 4 ° C 냉장고에 슬라이드를 놓습니다. 영상은 48 시간 이내에 완료해야합니다.

6. 이미징 및 혈관 내피 세포의 분석

  1. 특정 현미경의 사양에 따라 스테인드 내피 세포 이미징을위한 현미경을 준비합니다. 하나의 눈을 멀게 기술자는 박쥐에 특정 단백질을 분석해야세포의 채널.
  2. 체계적으로 슬라이드를 검사합니다. cadherin의를 VE 및 DAPI에 대한 긍정적 인 염색으로 핵 완전성을 확인하기 위해 긍정적 인 염색에 의해 내피 세포를 식별합니다.
  3. 나중에 분석을위한 슬라이드 당 이미지 30 세포. HUVEC을 포함, 스테인드 일괄 처리의 각 슬라이드에 대해 반복합니다.
  4. 질적 인 소프트웨어를 사용하여 그 차 항체에 대한 염색의 강도를 분석합니다.
  5. 다른 염색 세션, HUVEC에서 동일한 단백질 발현에 수집 된 내피 세포에있는 단백질 발현의 비율로보고 값 사이의 강도 염색의 차이 가능한 혼란 효과를 최소화하기 위해.

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결과

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FMD BA 반응성 충혈 다음 상완 동맥의 직경 피크 변화로 정량화된다. 따라서, 나머지의 직경은 5 분의 혈압 수갑을 폐쇄 기간 (그림 1)의 끝에 다음과 같은 직경과 비교된다. 패널은 상완 동맥의 대표적인 초음파 영상을 보여주고, 상용 소프트웨어를 사용하여 얻은 패널 B는 다음 2 분에 팔 릴리스에서 직경 R-웨이브 게이트 변화의 그래프를 표시합니다. 변화는 (그림 1의 변화가 4.8 %이다)는 종종 아주 최소한으로, 측정의 작은 차이가 결과에 큰 영향을 미칠 수 있습니다. 상업적으로 이용 가능한 자동 에지 검출 소프트웨어의 사용은 높은 측정 44, 45의 편견과 오류 가능성을 최소화하는 것이 좋습니다. 반응성 충혈 동안 팽창에 대한 자극이 그룹 또는 비교되는 조건에 따라 상이 할 수 있음으로, 전단 속도는 도플러 혈류를 이용하여 계산되어야속도 및 FMD BA는 46, 47 적용의 차이...

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토론

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FMD BA 및 대동맥 맥파 속도를 통하여 간접적에 대한 정확한 결과를 얻기 각각 높은 품질의 초음파 영상 및 압력 파형을 획득해야합니다. 이 핵심은 운영자 (44)에 의해 각 기술의 적절하고 지속적인 교육 및 사용하는 것입니다. 또, 테스트 세션 (예를 들면, 이전 12 시간 단식, 온도 조절 실 등) (44,45)를 표준화하여 가능한 결과에 영향을 미칠 수만큼 외부 변수에 대한 제어가 중요하다. 위에서 언급 한 바와 같이, 상업적으로 R-웨이브 게이트 수집 소프트웨어 및 에지 감지 소프트웨어의 사용은 높은 측정 44, 45의 편견과 오류 가능성을 최소화하는 것이 좋습니다. FMD의 BA가 손상되면, 이는 내피 세포로부터 방출을 손상하지 또는 인해 NO 출시 혈관 평활근의 장애 대응으로 하나가 될 수 있습니다. 설하 니트로 글리세린은 부드러운의 응답에 대한 제어 관리합니다FMD BA에

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공개 사항

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저자는 더 경쟁 재정적 이익이 없다는 것을 선언합니다.

감사의 글

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

저자는 그녀의 기술 지원을 니나 프레스톤 감사합니다. 이 작품은 미국 심장 협회 (12POST11920023)와 NIH (K23DK088833, K23DK087859)에 의해 지원되었다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
J-wireSt. Jude4045842개당
컬렉션 일회용 반바지 (MediShorts)Quick Medical4507
비침습적 혈역학 워크스테이션 (NIHem)심혈관 공학N/A사용자 정의 자 포함.  대체 시스템은 Sphygmocor
UltrasoundG.E.입니다.모델: Vivid7 Dimension우리는 G.E.를 사용하지만, 많은 회사와 모델이
있습니다. 혈관 소프트웨어 (Vascular Imager) 의료 이미징 애플리케이션N/A
R-wave 트리거 박스의료 이미징 애플리케이션N/A맞춤 제작
빠른 커프 인플레이션 시스템Hokanson모델: Hokanson E20
팔뚝 혈압 커프HokansonN/A커스텀 커프 6.5 x 34 cm 블래더 
HUVECsInvitrogrenC-015-5C
당나귀 세럼Jackson017-000-121
Pap penResearch Products International195505
VE CadherinAbcamab33168
AF568Life TechnologiesA11011마이크로스코프의 사양에 따라 다릅니다.
AF488Life TechnologiesA11034마이크로스코프의 사양에 따라 다릅니다.
니트로티로신 항체 Abcamab7048
NADPH 산화효소 항체Upstate07-001
DAPI 벡터H-1200
섬세한 작업 와이프 (Kimwipe) Fisher Scientific06-666-A
플라스틱 파라핀 필름(파라필름) Fisher Scientific13-374-10
컨포칼 현미경 올림푸스모델: FV1000 FCS/RICS많은 옵션이 존재합니다 
은 는 에는

참고문헌

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Levey, A. S., et al. A new equation to estimate glomerular filtration rate. Ann Intern Med. 150, 604-612 (2009).
  2. Foley, R. N., Parfrey, P. S., Sarnak, M. J. Epidemiology of cardiovascular disease in chronic renal disease. J Am Soc Nephrol. 9, (1998).
  3. Parfrey, P. S., Harnett, J. D. Cardiac disease in chronic uremia. Pathophysiology and clinical epidemiology. Asaio J. 40, 121-129 (1994).
  4. Schiffrin, E. L., Lipman, M. L., Mann, J. F. Chronic kidney disease: effects on the cardiovascular system. Circulation. 116, 85-97 (2007).
  5. Sarnak, M. J., et al. Cardiovascular disease risk factors in chronic renal insufficiency. Clin Nephrol. 57, 327-335 (2002).
  6. Kendrick, J., Chonchol, M. B. Nontraditional risk factors for cardiovascular disease in patients with chronic kidney disease. Nat Clin Pract Nephrol. 4, 672-681 (2008).
  7. Bellasi, A., Ferramosca, E., Ratti, C. Arterial stiffness in chronic kidney disease: the usefulness of a marker of vascular damage. Int J Nephrol. 2011, (2011).
  8. vander Zee, S., Baber, U., Elmariah, S., Winston, J., Fuster, V. Cardiovascular risk factors in patients with chronic kidney disease. Nat Rev Cardiol. 6, 580-589 (2009).
  9. Malyszko, J. Mechanism of endothelial dysfunction in chronic kidney disease. Clinica chimica acta; international journal of clinical chemistry. 411, 1412-1420 (2010).
  10. Lakatta, E. G., Levy, D. Arterial and cardiac aging: major shareholders in cardiovascular disease enterprises: Part I: aging arteries: a "set up" for vascular disease. Circulation. 107, 139-146 (2003).
  11. Seals, D. R., Jablonski, K. L., Donato, A. J. Aging and vascular endothelial function in humans. Clin Sci (Lond). 120, 357-375 (2011).
  12. Jablonski, K. L., et al. Dietary sodium restriction reverses vascular endothelial dysfunction in middle-aged/older adults with moderately elevated systolic blood pressure. J Am Coll Cardiol. 61, 335-343 (2013).
  13. Briet, M., et al. Arterial stiffness and enlargement in mild-to-moderate chronic kidney disease. Kidney Int. 69, 350-357 (2006).
  14. Thambyrajah, J., et al. Abnormalities of endothelial function in patients with predialysis renal failure. Heart. 83, 205-209 (2000).
  15. Ghiadoni, L., et al. Effect of acute blood pressure reduction on endothelial function in the brachial artery of patients with essential hypertension. J Hypertens. 19, 547-551 (2001).
  16. Yilmaz, M. I., et al. The determinants of endothelial dysfunction in CKD: oxidative stress and asymmetric dimethylarginine. Am J Kidney Dis. 47, 42-50 (2006).
  17. Wang, M. C., Tsai, W. C., Chen, J. Y., Huang, J. J. Stepwise increase in arterial stiffness corresponding with the stages of chronic kidney disease. Am J Kidney Dis. 45, 494-501 (2005).
  18. Shinohara, K., et al. Arterial stiffness in predialysis patients with uremia. Kidney Int. 65, 936-943 (2004).
  19. Karras, A., et al. Large artery stiffening and remodeling are independently associated with all-cause mortality and cardiovascular events in chronic kidney disease. Hypertension. 60, 1451-1457 (2012).
  20. Pannier, B., Guerin, A. P., Marchais, S. J., Safar, M. E., London, G. M. Stiffness of capacitive and conduit arteries: prognostic significance for end-stage renal disease patients. Hypertension. 45, 592-596 (2005).
  21. Yilmaz, M. I., et al. Vascular health, systemic inflammation and progressive reduction in kidney function; clinical determinants and impact on cardiovascular outcomes. Neprhol Dial Transplant. 26, 3537-3543 (2011).
  22. Sutton-Tyrrell, K., et al. Elevated aortic pulse wave velocity, a marker of arterial stiffness, predicts cardiovascular events in well-functioning older adults. Circulation. 111, 3384-3390 (2005).
  23. Tanaka, H., DeSouza, C. A., Seals, D. R. Absence of age-related increase in central arterial stiffness in physically active women. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 18, 127-132 (1998).
  24. Mitchell, G. F., et al. Arterial stiffness and cardiovascular events: the Framingham Heart Study. Circulation. 121, 505-511 (2010).
  25. Yeboah, J., Crouse, J. R., Hsu, F. C., Burke, G. L., Herrington, D. M. Brachial flow-mediated dilation predicts incident cardiovascular events in older adults: the Cardiovascular Health Study. Circulation. 115, 2390-2397 (2007).
  26. Shechter, M., et al. Long-term association of brachial artery flow-mediated vasodilation and cardiovascular events in middle-aged subjects with no apparent heart disease. Int J Cardiol. 134, 52-58 (2009).
  27. Baylis, C. Nitric oxide deficiency in chronic kidney disease. Am J Physiol Renal Physiol. 294, (2008).
  28. Wever, R., et al. Nitric oxide production is reduced in patients with chronic renal failure. Arterioscler Thromb Vasc. 19, 1168-1172 (1999).
  29. Endemann, D. H., Schiffrin, E. L. Endothelial dysfunction. J Am Soc Nephrol. 15, 1983-1992 (2004).
  30. Hasdan, G., et al. Endothelial dysfunction and hypertension in 5/6 nephrectomized rats are mediated by vascular superoxide. Kidney Int. 61, 586-590 (2002).
  31. Chue, C. D., Townend, J. N., Steeds, R. P., Ferro, C. J. Arterial stiffness in chronic kidney disease: causes and consequences. Heart. 96, 817-823 (2010).
  32. Dupont, J. J., Farquhar, W. B., Townsend, R. R., Edwards, D. G. Ascorbic acid or L-arginine improves cutaneous microvascular function in chronic kidney disease. J Appl Physiol. 111, (2011).
  33. Oberg, B. P., et al. Increased prevalence of oxidant stress and inflammation in patients with moderate to severe chronic kidney disease. Kidney Int. 65, 1009-1016 (2004).
  34. Cachofeiro, V., et al. Oxidative stress and inflammation, a link between chronic kidney disease and cardiovascular disease. Kidney Int Suppl. (111), (2008).
  35. Vila, E., Salaices, M. Cytokines and vascular reactivity in resistance arteries. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 288, (2005).
  36. Perticone, F., et al. Endothelial dysfunction and subsequent decline in glomerular filtration rate in hypertensive patients. Circulation. 122, 379-384 (2010).
  37. Zatz, R., Baylis, C. Chronic nitric oxide inhibition model six years on. Hypertension. 32, 958-964 (1998).
  38. Nakagawa, T., Johnson, R. J. Endothelial nitric oxide synthase. Contrib Nephrol. 170, 93-101 (2011).
  39. Muller, V., Tain, Y. L., Croker, B., Baylis, C. Chronic nitric oxide deficiency and progression of kidney disease after renal mass reduction in the C57Bl6 mouse. Am J Nephrol. 32, 575-580 (2010).
  40. Colombo, P. C., et al. Biopsy coupled to quantitative immunofluorescence: a new method to study the human vascular endothelium. J Appl Physiol. 92, 1331-1338 (2002).
  41. Donato, A. J., Black, A. D., Jablonski, K. L., Gano, L. B., Seals, D. R. Aging is associated with greater nuclear NFkappaB, reduced IkappaBalpha, and increased expression of proinflammatory cytokines in vascular endothelial cells of healthy humans. Aging Cell. 7, 805-812 (2008).
  42. Donato, A. J., et al. Direct evidence of endothelial oxidative stress with aging in humans: relation to impaired endothelium-dependent dilation and upregulation of nuclear factor-kappaB. Circ Res. 100, 1659-1666 (2007).
  43. Jablonski, K. L., Chonchol, M., Pierce, G. L., Walker, A. E., Seals, D. R. 25-Hydroxyvitamin D deficiency is associated with inflammation-linked vascular endothelial dysfunction in middle-aged and older adults. Hypertension. 57, 63-69 (2011).
  44. Corretti, M. C., et al. Guidelines for the ultrasound assessment of endothelial-dependent flow-mediated vasodilation of the brachial artery: a report of the International Brachial Artery Reactivity Task Force. J Am Coll Cardiol. 39, 257-265 (2002).
  45. Harris, R. A., Nishiyama, S. K., Wray, D. W., Richardson, R. S. Ultrasound assessment of flow-mediated dilation. Hypertension. 55, 1075-1085 (2010).
  46. Donald, A. E., et al. Methodological approaches to optimize reproducibility and power in clinical studies of flow-mediated dilation. J Am Coll Cardiol. 51, 1959-1964 (2008).
  47. Widlansky, M. E. Shear stress and flow-mediated dilation: all shear responses are not created equally. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 296, (2009).
  48. Stewart, A. D., Millasseau, S. C., Kearney, M. T., Ritter, J. M., Chowienczyk, P. J. Effects of inhibition of basal nitric oxide synthesis on carotid-femoral pulse wave velocity and augmentation index in humans. Hypertension. 42, 915-918 (2003).
  49. Lantelme, P., Mestre, C., Lievre, M., Gressard, A., Milon, H. Heart rate: an important confounder of pulse wave velocity assessment. Hypertension. 39, 1083-1087 (2002).
  50. Jablonski, K. L., Seals, D. R., Eskurza, I., Monahan, K. D., Donato, A. J. High-dose ascorbic acid infusion abolishes chronic vasoconstriction and restores resting leg blood flow in healthy older men. J Appl Physiol. 103, 1715-1721 (2007).

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