방법 논문

신경 회로 토대 메모리 형성을 해부에 대한 신생아 흰쥐의 편측 냄새 학습 모델

8.4K 조회수

⸱

DOI:

10.3791/51808

⸱

2014년 8월 18일

 ,  ,  , 
1Division of Biomedical Sciences, Faculty of Medicine, Memorial University, 2Division of Medical Sciences, University of Victoria

* These authors contributed equally

이 논문에서

요약

이 프로토콜은 급성 단일 나리스 폐색을 사용하여 쥐에서 측면화된 조기 냄새 선호 학습을 소개합니다. 수평적 학습은 동일한 동물 내에서 행동 결과를 조사하고 생물학적 메커니즘을 뒷받침할 수 있도록 하여 동물 간 설계로 인한 분산을 줄입니다. 이 프로토콜은 조기 냄새 학습을 뒷받침하는 분자 메커니즘을 조사하는 데 사용할 수 있습니다.

초록

중요한 출생 후 기간(≤ 10일) 동안의 새끼 쥐들은 모성 보살핌을 모방한 자극과 관련된 냄새를 쉽게 선호합니다. 이러한 선호 기억은 훈련 매개변수에 따라 몇 시간에서 며칠, 심지어 평생 동안 지속될 수 있습니다. 조기 냄새 선호 학습은 자연적 형태의 학습에 대한 중요한 변화가 후각 회로에서 발생하는 모델을 제공합니다. 기억 과정 분석을 위한 강력한 도구가 되는 또 다른 기능은 조기 냄새 선호 학습이 임계 기간 내에 단일 나리스 폐색을 통해 측면화될 수 있다는 것입니다. 이것은 이 어린 나이에 후각 반구의 성숙한 전방 연결이 부족하기 때문입니다. 이 작업은 코 플러그를 사용하여 측면화된 냄새 학습을 위한 행동 프로토콜을 간략하게 설명합니다. 급성 가역적 나리스 폐색은 장기간의 폐색 및 소작과 같은 보다 공격적인 방법과 관련된 조직 및 신경 손상을 최소화합니다. 측면화된 냄새 학습 모델은 동물 내 비교를 허용하므로 동물 간 설계에 비해 분산을 크게 줄일 수 있습니다. 이 방법은 훈련에 의해 생성된 후각 시스템의 회로 변화를 조사하는 데 성공적으로 사용되었습니다. 향후 방향에는 이 측방화 학습 모델을 사용하여 냄새 기억의 분자 토대를 탐색하는 것이 포함됩니다. 생리적 변화를 기억력 및 지속 기간과 연관시킵니다.

서론

후각은 성공적으로 탐색하거나 자신의 환경에서 살아남을 수 없을 것이다없이 설치류의 기본 감각 양상이다. 그것은 일을 공급하기 위해 자신의 어머니를 찾기 위해 후각을 사용하여, 첫번째 산후 주 동안 참조되지도들을 수 있습니다 둘 신생아 새끼에 특히 중요합니다. 결과적으로, 신생아 래트 새끼가 간단한 조작으로 실험을 선호하는 냄새 조절 될 수있다. 자극의 다양한 중첩 환경 2,3, 우유, 유아 4-6, 쓰다듬어 촉각 자극 7-을 포함하여 신생아에서 새로운 냄새에 대한 조건 반응 (조건 자극, CS)를 유도하는 무조건 자극 (UCS)로 사용되어왔다 12, 꼬리 핀치 (13), 산모의 타액 13, 가벼운 발 충격 14-18, 두개 내 뇌 자극 19. 본 연구는 잘 설립 초기 냄새 환경 패러다임을 고용하고있어서,이 경우 박하의 냄새,, 난박하 24 시간 후 10,11,20에 대한 선호를 생산하기 위해 촉각 자극과 결합 될 수있다. 이 냄새의 기억은 주로 후각 전구 (OB) 21 ~ 23과 전방 배 모양의 피질 (APC) (24, 25)를 포함하여, 그대로 후각 회로에 따라 달라집니다.

초기 냄새 환경 학습의 실험 연구 심화 및 포유 동물 메모리의 분자 및 생리 학적 토대에 대한 우리의 이해를 넓혔다. 이 포유 동물 모델은 메모리 메커니즘을 연구하는 여러 가지 장점이 있습니다. 먼저, UCS 신호의 소스는 신경 확인되었다. 위에서 언급 한 바와 같이 다양한 자극 차례로 22,27,28 학습 지원 세포 및 생리 학적 효과를 일으키는 원인이되는 OB와 APC에서 여러 아드레날린 수용체를 활성화 궤적 coeruleus 노르 에피네프린 릴리스 26를 자극한다. 둘째, 메모리지지 메커니즘은 잘 정의 된 층류 신경 구조에서 일어난다.신생아 쥐의 후각 회로의 단순 시냅스 가소성과 관련된 복잡한 프로세스를 발견 할 수와 이상적인 프레임 워크와 연구자를 제공합니다. 다른 구조 29 중 OB와 ipsilaterally 측면 후각 기관 (LOT)를 통해 배 모양의 피질 (PC) 차례 프로젝트에서 이러한 승모판 / 술 세포에서 승모판 / 술 세포 상에 후각 상피 프로젝트의 후각 감각 뉴런 (OSN). OSN의 OB (30, 31)에서 시냅스와 LOT는 APC에서 (24, 25)을 시냅스 모두 시냅스 학습 지원 변경 및 메모리에 중요한 서식처로 확인되었습니다. 셋째, 쥐의 초기 시대에, 후각 입력은 쉽게 편측 할 수 있습니다. 각 APC는 한 번이 흰색 물질이 완전히 산후 12 일 (PD12) (32)에 형성되고, 전방 교련을 통해 양국 간 냄새 정보에 액세스 할 수 있습니다. PD 12 전에 냄새 입력은 하나의 콧 구멍 폐쇄 24,25,31,33,34 <을 통해 OB와 APC를 ipisilateral하기 위해 분리 할 수있다/ SUP>. 단일 콧 구멍 폐쇄 오픈 콧 구멍에서 냄새가 기억 형성을 허용하고, 12 (33) PD하기 전에 가려 콧 구멍에서 동일한 메모리를 방지 할 수 있습니다. 냄새의 기억은 모두 OB 및 APC를 포함한 동측 반구에 격리됩니다. 따라서 각 쥐 강아지 학습 및 생리학의 토대에 대한 자신의 제어 할 수 있습니다.

본 연구에서는, 편측 이른 악취 기본 학습 프로토콜이 도입된다. 이 방법은 이에 필요한 동물의 수와 일반적인 편차 모두를 줄일 인트라 동물 24,25,31 제어를 제공하여 악취를 뒷받침 신경망 학습 메카니즘을 연구하기위한 강력한 도구로서 기능한다. 나리스 폐쇄는 그리스 나 코 플러그가 적용되는 최소한의 스트레스 또는 동물의 손상으로 제거 할 수 있다는 점에서 가역적이다. 여기에서, 첫째, 초기 악취 환경 교육 및 테스트의 자세한 절차는 번호와 함께 하나의 콧 구멍 폐쇄를 사용하여 편측 프로토콜을 중심으로 설명되어 있습니다전자 플러그. 그런 다음 결과는 냄새 입력을 분리하고 편측 냄새 메모리를 생산하는 하나의 콧 구멍 폐쇄의 효과를 보여주기 위해 제공됩니다. 마지막으로, 모두가 학습 및 지원 메모리 표현을 생성 후각 시스템의 생리적 변화를 연구하기 위해 편측 학습 모델을 사용의 가능성이 논의된다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

프로토콜

남녀의 스프 라그 돌리 쥐 (찰스 리버) 새끼가 사용된다. 새끼는 (출생 PD0 인) PD1에 12 도태된다. 댐은 음식과 물에 대한 광고 무제한으로 액세스 할 수있는 12 시간 명 / 암주기에 유지됩니다. 실험 절차는 기념 대학의 기관 동물 관리위원회에 의해 승인되었습니다.

1 코 플러그 건설

참고 :.이 절차는 적응 커밍스 외로부터 수정 (1997) 35.

  1. Aquire 폴리에틸렌 20 튜브 3-0 실크 봉합사 실.
  2. 약 0.8 mm에 폴리에틸렌 20 튜브의 작은 조각을 잘라.
  3. 스레드는 튜브 섹션의 양쪽에 존재하도록 제조 된 튜브를 통해 달기 실크 봉합사.
  4. 플러그의 외부 실의 한쪽 끝에서 스레드에서 매듭을 묶어.
  5. 실의 매듭을 통해 아래로 튜브의 섹션을 당깁니다. 매듭은 튜브 내부에 제출해야한다.
  6. 스레드 ~ 2mm가 튜브의 일단 부로부터 돌출되도록 실의 양단을 트림 (도 1a 참조).

교육 전에 2 나리스 폐쇄

  1. 일반 침구로 덮여 안전한 접시에 댐과 장소에서 강아지를 제거합니다.
  2. 콧 구멍에 국소 마취제 젤리, 2 % Xylocaine을 가볍게 두 드리하는면 팁 응용 프로그램을 사용하는 폐색합니다.
  3. 강아지가 ~ 3 분 동안 접시에 휴식을 허용합니다.
  4. 비 지배적 인 손에 부드럽게 안전하게 강아지를 잡으십시오.
  5. 지배적 인 손을 사용하여, 코 플러그를 픽업 스레드가 돌출되어 있지 않은부터 팁 주위 같은​​ 국소 마취제 젤리를 두드려. 이 플러그 삽입과 관련된 약간의 통증이 모두 마취제 역할을하고 콧 구멍 안쪽에 윤활제 역할을합니다. 참고 : Xylocaine의 효과는 몇 분 내에 시작하고 20 ~ 30 분 동안 지속됩니다. xylocaine 젤리 사용 후 플러그 삽입의 일반적인 쇼 좋은 내성 새끼 (minimum 어려움을 겪고와 발성).
  6. 조심스럽게 단단히 강아지를 들고와 플러그가 완전히 삽입 만 2mm 스레드가 콧 구멍에서 돌출 될 때까지 천천히 아주 부드러운 푸시와 플러그를 회전하여 코 플러그를 삽입합니다 (그림 1B 참조). 이 과정에서 두 콧 구멍에서 더 출혈이 없어야합니다. 코 플러그 삽입시 출혈 새끼 제외하고 댐으로 돌아갑니다
  7. 동물이 플러그에 길들하기 위해 5 분 동안이 접시에 휴식을 허용합니다.
  8. 습관화 요리에서 강아지를 제거하고 에어컨 패러다임 (24)를 시작합니다.

figure-protocol-1
코 플러그의 그림 1 건설. A) 회로도 코 플러그의 제조 단계를 도시. 스레드는 폴리에틸렌 튜브를 당겨; 매듭이 만들어 PUL된다이를 차단하는 튜브 중앙으로 이끄는; 두 끝)가 호스. B 중 한 쪽 끝에서 2mm의 잔류와 함께 전면 및 한 콧 구멍에 코 플러그가있는 쥐의 측면보기를 잘립니다.

3 향기 침구 준비

  1. 새 장갑을 착용하고, 악취 오염을 방지 비닐 봉지에 우드 칩 침구 500 ㎖에 배치 할 흄 후드.
  2. 0.3 ml의 박하 추출물을 그릴 주사기를 사용하고, 비닐 봉투에있는 침구를 통해이 스프레이.
  3. , 가방 차단 타이 적극적으로 가방을 흔들어 침구는 5 분 동안 가방에 휴식을 할 수 있습니다.
  4. 사용하기 전에 5 분 동안 흄 후드에서 발견 명확한, 얕은, 아크릴 훈련 상자 (20 × 20 × 5cm 3, 그림 2A)에서 냄새가 침대를 배치합니다. 침구가​​ 준비되면,이 장갑을 폐기하고,이 장갑은 동물과 접촉하지 않도록하십시오.
  5. 동일한 투명한 플라스틱 상자에 무향 침대를 놓고 엉이 향수 침구 또는 사용 장갑에 접촉하지 않는지 확인하십시오.

4 냄새 컨디셔닝 패러다임 (그림 2A에서 그림 참조)

새끼는 PD 6, 또는 여러 시험 세션 (하루에 하나의 세션, PD 3-6)에, 하나 하나의 조화 세션을받을.

  1. 냄새가 침대에 길들여 강아지를 놓습니다. 제어 냄새 만 (O / S -)의 경우 새끼, 다음 4.5 단계로 이동, 10 분 동안 침대에서이 새끼를 둡니다. 실험 냄새 + 스트로크 (O / S +) 새끼는,이 섹션에서 다음 단계를 계속합니다.
  2. 스트로크 30 초 동안 강아지는 작은 붓을 사용. 주로 강아지의 뒷다리 지역 주위에 빠른 원형 동작을 사용합니다.
  3. 강아지가 30 초 동안 휴식을 허용합니다.
  4. 반복 4.2 및 10 분의 총 4.3 (쓰다듬어 + 냄새 즉, 10 페어링) 단계를 반복합니다.
  5. 컨디셔닝 상자에서 강아지를 제거 코 플러그를 제거하고 댐에 강아지를 반환합니다.

5. 편측 냄새 환경 테스트 (그림 2B에서 그림 참조)

테스트는 최종 트레이닝 세션 다음 다양한 시점 (예를 들면, 24 또는 48 시간)에서 발생한다. 테스트는 2cm 중성 영역으로 구분이 훈련 박스 (훈련 박스 3.4에서 설명된다)의 상단에 배치되는 스테인리스 테스트 실 (30 X 20 X 18cm 3)에서 수행된다. 다른 상자가 깨끗하고, 무향의 침대를 포함하는 동안 하나의 훈련 상자가 박하 향기 침구가 포함되어 있습니다. 테스트 챔버의 바닥은 플라스틱 메쉬 분리형 시트 (도 2b)에 의해 커버되는 금속 격자이다.

  1. 한 박하와 제 3 당 한 무향 침구를 준비하고, 2cm 간격 테스트 챔버의 양측에서 각 상자를 배치합니다. 테스트 챔버의 금속 격자 층에있는 플라스틱 메시를 놓습니다.
  2. 댐에서 강아지를 제거하고 콧 구멍에 무취 실리콘 그리스의 회사 명인를 배치그는 훈련 기간 동안 폐색된다. 재 적용 필요에 따라 제 1 검사 절차 내내 그리스. 참고 : 교육 및 테스트하는 동안 임의 콧 구멍 폐쇄는 편견을 피하기 위해 고려 될 수있다.
  3. 테스트 챔버의 중립 영역에 강아지를 놓습니다.
  4. 강아지가 챔버의 양측 지출 한 시간을 기록, 강아지가 1 분 동안 챔버를 탐험 할 수 있도록 허용 (예 : 박하 또는 중립적 향기 침구 이상).
  5. 강아지가 덮여 플라스틱 보유 챔버에서 1 분 동안 휴식을 허용합니다.
  6. 반복은 10 분의 총 5.2 & 5.3 단계 (즉, 5 나머지 실험에 의해 분리 실험 5 실험) 방향 선호도에 대해 제어하기 위해 챔버 내에서 강아지의 초기 방향 전환.
  7. 즉시 시험 다음, 콧 구멍에서 그리스를 닦아.
  8. 2 절에 따라 반대 콧 구멍에 폴리에틸렌 noseplug를 삽입하고 동물이 10 분 동안 휴식을 할 수 있습니다.
  9. 에서와 같이 다시 한번 강아지를 테스트 5.3 -5.6는 플러그를 제거하고 댐에 강아지를 반환합니다. 제거하고 95 % 에탄올로 테스트 챔버의 플라스틱 메쉬를 청소하고 액체가 증발 할 수있다. 다음 강아지를 테스트하기 전에 다시 메시를 놓습니다.
    참고 : 테스트 중 첫 번째 콧 구멍 폐쇄에 실리콘 그리스를 적용 출혈과 코의 플러그 삽입과 관련된 스트레스의 가능성을 방지 할 수 있습니다.

figure-protocol-2
그림 2 초기 악취 환경 교육 및 테스트. 패러다임을 쓰다듬어 + 냄새를 사용하여 A) 초기 악취 환경 교육. B) 한면에 박하 침구와 함께 두 개의 선택 냄새 환경 테스트, 반대편에 무향 침대를 제어 할 수 있습니다. 2cm 중립 영역은 사이에 배치됩니다.

(6) 단일 나리스 폐쇄의 효과를 테스트

NT는 ">이 실험은 하나의 콧 구멍 폐쇄가 후각 시스템의 편측 활성화로 연결 여부를 결정하기 위해 수행된다.
  1. 2 절에 설명 된대로 PD 6 또는 7 새끼에 일방적 콧 구멍의 폐색을 수행합니다.
  2. ~ 5 분의 습관화 후, 해당 플라스틱 용기에 강아지를 배치하고 10 분 동안 조직의 조각에 담가 30 ㎕의 순수 박하유에 노출.
  3. 즉시 박하 냄새에 노출 된 후, 복강 내 (IP) 클로 랄 전신 마취로 수화물 (400 ㎎ / ㎏), 또는 pentobarbitol (150 ㎎ / ㎏)와 강아지를 주입.
  4. 완전히 (꼬리 부분 또는 발 핀치에 대한 응답을 보여주는) 마취 후 transcardially 0.1 M 인산 완충 용액, PBS에 용해 파라 포름 알데히드 (4 % 다음에 ~ 1 분 식염수 (0.9 %)의 얼음처럼 차가운 솔루션 강아지, 관류 ).
  5. 다음 트랜스, 파라 포름 알데히드 관류 10 분 후 뇌를 수집하고 4 ° C에서 하룻밤 파라 포름 알데히드에 배치추가로 24 시간 동안 자당 용액 (PBS에서 20 %)로 뇌를 FER.
  6. 저온 유지 장치와 30 μm의 두께로 관상 뇌 조각을 잘라. OB와 PC 조각을 수집하고 pCREB 항체 21,25,30 표준 면역 조직 화학 염색 뒤에 젤라틴 코팅 슬라이드에 탑재합니다.

7 단일 나리스 폐쇄의 가역성 테스트

차단 효과는 코 플러그를 제거 다음 24 시간에서 뒤집을 수 있는지 여부를이 실험 테스트합니다.

  1. 2 절에 설명 된대로 PD 6 또는 7 새끼에 일방적 콧 구멍의 폐색을 수행합니다.
  2. (훈련 중에 콧 구멍 폐쇄의 기간에 해당 - 5 분​​의 습관화 + 10 분 교육) 15 분 후, 코 플러그를 제거하고 댐에 강아지를 반환합니다.
  3. 6.2에 설명 된대로 24 시간 후, 10 분 동안 덮여 플라스틱 용기에 박하 냄새에 강아지를 노출합니다.
  4. 종파에서 동일한 단계를 수행6.3-6.6를 이온.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

결과

여기에서 우리는 냄새 입력을 분리하고 하나의 반구 학습에 콧 구멍 폐쇄의 효과 및이 방법의 가역성을 보여주기 위해 이전에 설정된 결과 (24)의 일부를 검토합니다.

초기 냄새 환경 설정 훈련 도중 단일 콧 구멍 폐쇄는 편측 냄새 메모리 (24)에 연결됩니다. 메모리 스페어 나리스 (그림 3)으로 제한됩니다. 강아지가 훈련 도중으로 폐색 같은 콧 구멍으로 냄새 기본 설정에 대해 테스트 할 때, 그들은 에어컨 냄새 (예를 들어, 박하)에 대한 기본 설정을 보여줍니다. 새끼 가려 반대 콧 구멍에서 테스트 할 때, 그들은 에어컨 냄새에 대한 선호를 표시하지 않습니다. 함께, 이러한 결과는 냄새 기본 메모리 만 형성과 연관 조화를 쓰다듬어 + 냄새를 시행 아끼지 콧 구멍을 통해 표현하는 것이 좋습니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

토론

중요한 시간 창 내 쥐 새끼의 편측 냄새 학습과 기억 모델은 첫번째 홀과 동료들에 의해 설립되었습니다. 연구 33,34,36의 시리즈, 그들은 냄새 기본 메모리가 쥐 새끼에서 PD 6에 하나의 콧 구멍으로 냄새 + 우유 짝에 의해 편측 될 수 있음을 보여 주었다. 기본 설정 메모리는 같은 콧 구멍 교육 및 시험 동안 열려있을 때 강력한했지만, 폐쇄 된 콧 구멍이 차단을 해제하고 테스트 때 관찰되지. 더 이상했을 정도로 그러나, 전방 후각 피질 앞쪽에 교련 연결 기능 (32)가 PD (12)에서, 교육을받지 않은 콧 구멍 혼자 전방 교련의 6 병변이 편측 메모리를 복원 PD에서 획득 한 냄새 환경의 발현을 지원할 수 없었다 훈련받지 않은 콧 구멍 (33)에서 액세스 할 수. 이 편측 학습 모델이 성공적으로 패러다임 24,25,31를 쓰다듬어 + 냄새로 복제되었습니다. 냄새 + 하나의 콧 구멍의 OCC와 교육을 쓰다듬어PD에 lusion는 PD에 편측 ...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

공개 사항

저자는 공개할 것이 없습니다.

감사의 글

이 작업은 Q. Y에 대한 CIHR 운영 보조금(MOP-102624)의 지원을 받았습니다. 연구 전반에 걸쳐 유익한 토론을 해주신 Carolyn Harley 박사님, 기술 지원을 해주신 Qinlong Hou 박사님, Amin Shakhawat 박사님, Andrea Darby-King 박사님께 감사드립니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
Polythylene 20 tubingIntramedic427406Non-radiopage, Non-toxic
3-0 Silk 봉합사 실SynetureSofsilkNon-absorbent
Silicone greaseWarner Instrument64-0378무취
2% Xylocaine gelAstraZenecaProd. No 061Lidocaine hydrochloride jelly, 현지 약국에서 구입
페인트 브러시Dynasty206R유사한 크기/다른 브랜드도 작동합니다
페퍼민트 추출물Sigma-AldrichW284807다른 브랜드도 괜찮습니다
트레이닝 박스맞춤형N/A아크릴 상자(20 x 20 x 5 cm3), 그림 2A 참조. 상자의 매개 변수와 재질은 중요하지 않으며 수정할 수 있습니다. 사용된 재료는 무취여야 하며 냄새를 흡수하지 않아야 합니다
테스트 챔버맞춤형N/A스테인리스강(30 x 20 x 18cm3), 그림 2B 참조. 챔버의 매개변수와 재료는 중요하지 않으며 수정할 수 있습니다. 예를 들어, 스테인리스강 챔버 대신 아크릴 챔버를 사용할 수 있습니다
pCREB 항체Cell Signaling9198Ser 133 (87G3) Rabbit mAb
Chloral hydrateSigma-AldrichC8383N/A
ParaformaldehypeSigma-AldrichP6148N/A
SucroseSigma-AldrichS9378N/A
:

참고문헌

  1. Gregory, E. H., Pfaff, D. W. Development of olfactory-guided behavior in infant rats. Physiol Behav. 6, 573-576 (1971).
  2. Alberts, J. R., May, B. Nonnutritive, thermotactile induction of filial huddling in rat pups. Dev Psychobiol. 17, 161-181 (1984).
  3. Galef, B. G., Kaner, H. C. Establishment and maintenance of preference for natural and artificial olfactory stimuli in juvenile rats. J Comp Physiol Psychol. 94, 588-595 (1980).
  4. Johanson, I. B., Hall, W. G. Appetitive learning in 1-day-old rat pups. Science. 205, 419-421 (1979).
  5. Johanson, I. B., Hall, W. G. Appetitive conditioning in neonatal rats: conditioned orientation to a novel odor. Dev Psychobiol. 15, 379-397 (1982).
  6. Johanson, I. B., Teicher, M. H. Classical conditioning of an odor preference in 3-day-old rats. Behav Neural Biol. 29, 132-136 (1980).
  7. McLean, J. H., Darby-King, A., Sullivan, R. M., King, S. R. Serotonergic influence on olfactory learning in the neonate rat. Behav Neural Biol. 60, 152-162 (1993).
  8. Moore, C. L., Power, K. L. Variation in maternal care and individual differences in play, exploration, and grooming of juvenile Norway rat offspring. Dev Psychobiol. 25, 165-182 (1992).
  9. Pedersen, P. E., Williams, C. L., Blass, E. M. Activation and odor conditioning of suckling behavior in 3-day-old albino rats. J Exp Psychol Anim Behav Process. 8, 329-341 (1982).
  10. Sullivan, R. M., Hall, W. G. Reinforcers in infancy: classical conditioning using stroking or intra-oral infusions of milk as UCS. Dev Psychobiol. 21, 215-223 (1988).
  11. Sullivan, R. M., Leon, M. Early olfactory learning induces an enhanced olfactory bulb response in young rats. Brain Res. 392, 278-282 (1986).
  12. Weldon, D. A., Travis, M. L., Kennedy, D. A. Posttraining D1 receptor blockade impairs odor conditioning in neonatal rats. Behav Neurosci. 105, 450-458 (1991).
  13. Sullivan, R. M., Hofer, M. A., Brake, S. C. Olfactory-guided orientation in neonatal rats is enhanced by a conditioned change in behavioral state. Dev Psychobiol. 19, 615-623 (1986).
  14. Camp, L. L., Rudy, J. W. Changes in the categorization of appetitive and aversive events during postnatal development of the rat. Dev Psychobiol. 21, 25-42 (1988).
  15. Moriceau, S., Wilson, D. A., Levine, S., Sullivan, R. M. Dual circuitry for odor-shock conditioning during infancy: corticosterone switches between fear and attraction via amygdala. J Neurosci. 26, 6737-6748 (2006).
  16. Roth, T. L., Sullivan, R. M. Endogenous opioids and their role in odor preference acquisition and consolidation following odor-shock conditioning in infant rats. Dev Psychobiol. 39, 188-198 (2001).
  17. Roth, T. L., Sullivan, R. M. Consolidation and expression of a shock-induced odor preference in rat pups is facilitated by opioids. Physiol Behav. 78, 135-142 (2003).
  18. Sullivan, R. M. Developing a sense of safety: the neurobiology of neonatal attachment. Ann N Y Acad Sci. 1008, 122-131 (2003).
  19. Wilson, D. A., Sullivan, R. M. Olfactory associative conditioning in infant rats with brain stimulation as reward. I. Neurobehavioral consequences. Brain Res Dev Brain Res. 53, 215-221 (1990).
  20. Sullivan, R. M., Wilson, D. A., Leon, M. Associative Processes in Early Olfactory Preference Acquisition: Neural and Behavioral Consequences. Psychobiology. , 29-33 (1989).
  21. McLean, J. H., Harley, C. W., Darby-King, A., Yuan, Q. pCREB in the neonate rat olfactory bulb is selectively and transiently increased by odor preference-conditioned training. Learn Mem. 6, 608-618 (1999).
  22. Sullivan, R. M., Stackenwalt, G., Nasr, F., Lemon, C., Wilson, D. A. Association of an odor with activation of olfactory bulb noradrenergic beta-receptors or locus coeruleus stimulation is sufficient to produce learned approach responses to that odor in neonatal rats. Behav Neurosci. 114, 957-962 (2000).
  23. Yuan, Q., Harley, C. W., McLean, J. H. Mitral cell beta1 and 5-HT2A receptor colocalization and cAMP coregulation: a new model of norepinephrine-induced learning in the olfactory bulb. Learn Mem. 10, 5-15 (2003).
  24. Fontaine, C. J., Harley, C. W., Yuan, Q. Lateralized odor preference training in rat pups reveals an enhanced network response in anterior piriform cortex to olfactory input that parallels extended memory. J Neurosci. 33, 15126-15131 (2013).
  25. Morrison, G. L., Fontaine, C. J., Harley, C. W., Yuan, Q. A role for the anterior piriform cortex in early odor preference learning: evidence for multiple olfactory learning structures in the rat pup. J Neurophysiol. 110, 141-152 (2013).
  26. Nakamura, S., Kimura, F., Sakaguchi, T. Postnatal development of electrical activity in the locus ceruleus. J Neurophysiol. 58, 510-524 (1987).
  27. Harley, C. W., Darby-King, A., McCann, J., McLean, J. H. Beta1-adrenoceptor or alpha1-adrenoceptor activation initiates early odor preference learning in rat pups: support for the mitral cell/cAMP model of odor preference learning. Learn Mem. 13, 8-13 (2006).
  28. Shakhawat, A. M., Harley, C. W., Yuan, Q. Olfactory bulb alpha2-adrenoceptor activation promotes rat pup odor-preference learning via a cAMP-independent mechanism. Learn Mem. 19, 499-502 (2012).
  29. Isaacson, J. S. Odor representations in mammalian cortical circuits. Curr Opin Neurobiol. 20, 328-331 (2010).
  30. Lethbridge, R., Hou, Q., Harley, C. W., Yuan, Q. Olfactory bulb glomerular NMDA receptors mediate olfactory nerve potentiation and odor preference learning in the neonate rat. PLoS One. 7, e35024 (2012).
  31. Yuan, Q., Harley, C. W. What a nostril knows: olfactory nerve-evoked AMPA responses increase while NMDA responses decrease at 24-h post-training for lateralized odor preference memory in neonate rat. Learn Mem. 19, 50-53 (2012).
  32. Schwob, J. E., Price, J. L. The development of axonal connections in the central olfactory system of rats. J Comp Neurol. 223, 177-202 (1984).
  33. Kucharski, D., Hall, W. G. New routes to early memories. Science. 238, 786-788 (1987).
  34. Kucharski, D., Johanson, I. B., Hall, W. G. Unilateral olfactory conditioning in 6-day-old rat pups. Behav Neural Biol. 46, 472-490 (1986).
  35. Cummings, D. M., Henning, H. E., Brunjes, P. C. Olfactory bulb recovery after early sensory deprivation. J Neurosci. 17, 7433-7440 (1997).
  36. Kucharski, D., Hall, W. G. Developmental change in the access to olfactory memories. Behav Neurosci. 102, 340-348 (1988).
  37. Brunjes, P. C. Unilateral odor deprivation: time course of changes in laminar volume. Brain Res Bull. 14, 233-237 (1985).
  38. Kass, M. D., Pottackal, J., Turkel, D. J., McGann, J. P. Changes in the neural representation of odorants after olfactory deprivation in the adult mouse olfactory bulb. Chem Senses. 38, 77-89 (2013).
  39. Kim, H. H., Puche, A. C., Margolis, F. L. Odorant deprivation reversibly modulates transsynaptic changes in the NR2B-mediated CREB pathway in mouse piriform cortex. J Neurosci. 26, 9548-9559 (2006).
  40. Korol, D. L., Brunjes, P. C. Rapid changes in 2-deoxyglucose uptake and amino acid incorporation following unilateral odor deprivation: a laminar analysis. Brain Res Dev Brain Res. 52, 75-84 (1990).
  41. Leung, C. H., Wilson, D. A. Trans-neuronal regulation of cortical apoptosis in the adult rat olfactory system. Brain Res. 984, 182-188 (2003).

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재인쇄 및 허가

이 JoVE 논문의 텍스트 또는 그림 재사용 허가 요청

허가 요청

태그

beddingCREB

관련 논문