방법 논문

본래 동맥의 내피 층에서 산화 질소와 활성 산소의 욕실 얼굴 인식

DOI:

10.3791/53718

⸱

2016년 2월 25일

 ,  ,  ,  , 
1Cardiovascular and Aging Research, Department of Medicine, Division of Physiology, Faculty of Science, University of Fribourg, 2Kidney Control of Homeostasis, Swiss National Centre of Competence in Research, 3System Physiology, Department of Medicine, Division of Physiology, Faculty of Science, University of Fribourg

이 논문에서

요약

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

이 문서에서 우리는 형광 염료를 엉 얼굴 동시 탐지 및 세포 내 산화 질소의 시각화 (NO)과 슈퍼 옥사이드 음이온 (O 2 diaminofluorescein-2 디 아세테이트 (DAF-2DA) 및 dihydroethidium (DHE)를 사용하여 적응 상대적으로 쉬운 방법을 설명 .- )는 각각 갓에 비만 마우스 모델을 그대로 대동맥을입니다.

초록

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

내피 NO-합성 효소 (eNOS의)에서 생산 내피 세포에서 파생 된 질소 산화물 (NO) 심장 혈관 생리학에서 가장 중요한 vasoprotective 분자의 하나입니다. eNOS의의 언 커플 링이 슈퍼 옥사이드 음이온에서 NO 생체 이용률 및 증가 감소 리드로 장애 eNOS의 예 (O 2 .-) 생산, 차례로 심혈관 질환을 촉진한다. 따라서, 내피 세포에서 NO와 O 2 .- 수준의 적절한 측정이 심혈관 질환과 합병증에 대한 연구를위한 중요한 있습니다. 때문에 NO와 O 2 .-의 매우 불안정한 특성 때문에 NO 측정하고, O 2 .- 직접 혈관에 어렵다. 수많은 방법은 NO 측정 및 O 2 .- 생산하기 위해 개발되었습니다. 이것은, 그러나, 어느 둔감 또는 비특이적 또는 기술적으로 요구하고, 특수 장비를 필요로한다. 여기에 우리가 적응을 설명얼굴의 동시 검출 및 세포 NO와 O 2의 시각화 도중에 .- 유도 비만 마우스 모델을 그대로 대동맥에 각각 세포 투과성 diaminofluorescein -2- 아세테이트 (DAF-2DA) 및 dihydroethidium (DHE)를 사용하는 형광 염료 방법 높은 지방 다이어트 먹이로. 제어 린 마우스에 비해 우리는 비만 마우스의 갓 고립 그대로 대동맥 2 .- 수준을 세포 내 NO 감소 O를 향상 것을 보여줍니다 수 있습니다. 우리는이 방법은 직접 검출 및 시각화 NO와 O 2를위한 쉬운 기술 .- 그대로 혈관에 널리 (물리 치료사) 병리학 적 조건에서 내피 (DYS) 함수의 조사를 위해 적용 할 수 있다는 것을 보여줍니다.

서론

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

혈관 내피 세포는 혈관 활성 인자 1을 해제하여 혈관 기능 및 구조적 무결성을 유지합니다. 이러한 요인 중 내피 NO 신타 제 (eNOS의)를 통해 L 아르기닌으로부터 생성 내피 - 유도 질소 산화물 (NO)이 심혈관 생리학에서 가장 중요하고 가장 특징 요소이다. NO 따라서 혈관 질환 개발 3 보호에 피하 공간으로 혈소판 응집 및 염증 세포의 부착 및 침윤을 억제 평활근 이완을 유발하고 세포 증식을 억제한다. 등 노화, 고혈압, 당뇨병, 고지혈증, 등 많은 생리 학적 및 병리학 적 조건에서 특징 내피 기능 장애는 NO 생체 이용률을 감소하지 않고 O 2 .- 생산이 존재하고 동맥 경화증 2의 발병을 촉진 증가했다. 최근의 연구에서 eNOS의 언 커플 링이를이 있음을 입증다양한 상기 조건 1,4에서 eNOS의 효소는 O 2를 생성하는 내피 기능 장애, .- 대신 NO의 중요한 메커니즘. 따라서, 혈관 내피 기능의 분석, 특히 NO 생산 내피없고 O 2 .- 생성 심혈관 질병 및 합병증에 대한 실험적 연구에 중요한 것이다.

분석 및 생물학적 샘플에서 NO 생성을 측정하지하기 위해 개발 된 다양한 방법 론적 접근 방법이있다. 및 NO 3 - - 때문에 쉽게 NO 2로 산화되어 NO의 매우 불안정한 특성으로 3 초 6의 반감기, 어떠한 직접 측정하지 어렵다. / NO 3 - - NO 2 판정 따라서 유체 시료는 세포 나 조직을 5 NO 방출의 지표로서 사용 하였다. 절차가 비교적 용이하지만, 상기 방법은, 그러나, EA/ NO 3 - - 솔루션에 포함 된 sily 안정 NO 2의 높은 배경에 의해 영향을. NO가 클릭 구아노 신 모노 포스페이트 (cGMP) 6을 생산하는 가용성 구 아닐 레이트 사이 클라 제를 자극하기 때문에, 세포의 cGMP 수준은 NO 릴리스 7 견적 않음 결정되었다. 다시이 간접적 인 추정 및 C 형 나트륨 이뇨 펩티드 (CNP) 일부 내피 세포 유래 인자는 입자상 아닐 레이트 시클 라제의 활성화를 통해 8의 cGMP 수준을 향상 할 수 있기 때문에, 특정하지 않을 수있다. NO 부산물 (9), L - 시트룰린 생산의 측정 따라서도 NO 생성을 추정하지하는 간접적 인 방법으로 사용되는로 L - 시트룰린의 생성과 L 아르기닌에서 생산되지 않습니다. 이 방법의 주요 단점은 방사성 그것은 생체 활성 NO 수준을 측정하지 않도록하고, O 2 NO 빠르게 불 활성화 될 수있는 해제 이후 .-; 또한, L - 시트룰린은 L- 재활용 할 수있다10 아르기닌. 이러한 화학 발광 검출 (11), 전자 스핀 공명 (12), 또는 전기 포르피린 NO 센서 (13)를 같은 다른 화학적 방법은 여러 연구자에 의해 사용됩니다. 이 방법은 일반적으로 검출 절차 운영에 쉽지 않다 및 특수 장비가 필요합니다. 그것은 많은 연구 또는 내피 기능을 평가하고 간접적으로 내피 세포 유래 NO 매개 혈관 이완을 측정 할 수있는 내피없이 격리 된 혈관과 장기 목욕 실험을 적용 할 것을 언급 할 수도있다. 그것은 주로 생리 학적 상황에 가까운, 그러나 있지만 그러나이 방법은, 엄격하게 말을, 어떠한 기능을 측정하지 않습니다, 오히려의 생산 eNOS의 기능의 순 효과를 반영 일반적으로 내피 세포 매개 성 혈관 운동 반응을 평가 다른 내피 세포 유래 휴식 계수 및 내피 - 유도 수축 인자 O 2 .-의 생산 및 평활근 세포의 응답도이러한 요인이다. eNOS의 기능 또는 NO 생산의 구체적인 분석은 일반적으로 3 필요합니다.

우리 포함한 많은 연구 그룹은 NO 14-19 세포의 생산을 검출하는 형광 염색 방법을 사용 최근있다. 이 방법에서, 세포 투과 형광 표시 diaminofluorescein -2- 아세테이트 (DAF-2DA)은 시험 관내 또는 생체의 조직과 세포를 살아있는 무료 NO 및 NOS 함수를 측정 하였다. 원리는 살아있는 세포에서 DAF-2DA는 비 형광 4,5-diaminofluorescein에 세포 내 에스 테라 제에 의해 탈 아세틸되는 것을 다음 NO와 반응하여 DAF-2 트리아 졸 (DAF-2T)를 형광등으로 전환되었다 (DAF-2) . DAF-2T에서 형광을 형광 현미경 또는 형광 공 초점 현미경 (14)으로 관찰 할 수있다. 세포 내 형광 강도 따라서 세포에서 세포 내 NO의 생산 그대로 혈액 vesse에서의 내피 세포를 반영엘. 이러한 dihydroethidium (DHE)와 같은 특정 형광 염료와 조합 한 동시에 세포 또는 혈관 (14)에 세포 NO와 O 2 .- 발생을 평가할 수있다. 마찬가지로 DHE는 세포 투과성 O 2에 의해 산화되는 화합물 .- 균체 내에하고 핵산과하게 인터 형광 현미경, 형광 ​​공 촛점 현미경으로 정량적 검출 밝은 적색을 방출하는 산화 생성물도이다. 그것은 본질적으로 슈퍼 옥사이드 라디칼 감지 세포에 의해 잘 유지되고, 심지어 가벼운 고정 (20)를 허용 할 수 있으므로 DHE는 O 2 .- 생물학적 시료에서의 검출을위한 매우 구체적인 염료이다. 이 형광 염색 방법의 장점 중 하나는 검출에 직접 생체 혈관 내피 손상 층 en 얼굴 NO 및 / 또는 O 2 .- 가시화한다는 것이다.

본 논문에서는,우리는이 형광 염료 NO를 감지하는 방법 및 O 2 .- 우리가 얼굴 NO의 검출 및 O 2 욕실 개조 한 설명 .- 높은 지방 다이어트 (HFD) 공급에 의해 유도 된 비만 마우스 모델을 그대로 대동맥에서. 우리는이 방법이 성공적으로 안정적 NO와 O 2 .- 수준을 측정하고 비만에서 갓 고립 그대로 마우스 대동맥의 내피 층에서 eNOS의 (DYS) 기능을 평가할 수 있다는 것을 보여줍니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

프로토콜

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

동물 작품은 프리 부르, 스위스의 수의학 사무실의 윤리위원회에 의해 승인되었다. 이 프로토콜은 우리 기관에서 동물 관리 및 실험에 대한 가이드 라인을 따른다.

격리 된 동맥의 배양을위한 셋업 1. 준비

  1. 37 ° C로 가열하고, 탄소 가스 탱크 95 % O 2, 5 % CO 2 통기 될 수 기관 욕 시스템을 구축.
  2. 다음 조성물의 농도가 필요한만큼 크렙스 - 링거 중탄산 버퍼 준비 (118 mM의 염화나트륨, 4.7 mM의 KCl을 2.5 mM의 CaCl2를 1.2 mM의 황산, 1.2 mM의 KH 2 PO 4, 25 mM의 NaHCO3을, 0.026 mM의 EDTA, 11.1 mM의 글루코오스 D).
  3. 얼음에 주식 버퍼를 유지하고 95 % O 2 5 % CO 2와 버퍼를 공기에 쐬다.
  4. 오르간 조 시스템 스위치는 37 ° C의 온도를 설정 한 각 실에 즉시 사용 완충액 5 mL를 추가95 %의 O 2 5 % CO 2와 버퍼를 폭기 유지.
  5. 30 분 동안 크렙스 - 링거 버퍼에 한 번 실을 씻으십시오.
  6. 각 실에 5 ml의 크렙스 - 링거 버퍼를 추가하고 증발을 방지하기 위해 챔버 커버.

마우스 대동맥 2. 분리

  1. 마우스를 희생 150 밀리그램 / kg의 농도로 복강 0.9 % 염화나트륨에 용해 펜토 바르 비탈을 주사.
  2. 수술 보드 드러 마우스를 놓습니다.
  3. 위생 및 습기의 목적 70 % 에탄올로 가슴 영역 모피 스프레이.
  4. 리브 주위에 절단 엽니 다 흉강은 심장과 폐를 노출하고, 폐를 제거합니다.
  5. 종이 티슈로 부드럽게 흉강에 혈액을 제거합니다.
  6. 집게로 조심스럽게 마음을 잡고 수술 가위로 대동맥과 척추 사이의 혈관 주위 지방 조직을 절단하여 흉부 대동맥을 분리합니다.
  7. 즉시도 ë 몰입얼음 감기 (4 °에 C) 크렙스 - 링거 버퍼 전자 조직.
  8. 해부 현미경으로 심장과 대동맥 궁을 제거하고 버퍼에 흉부 대동맥 세그먼트를 유지합니다.
  9. 수술 가위와 집게와 현미경으로 혈관 주위 조직을 준수없는 대동맥을 해부하다.
  10. 집게와 대동맥의 끝 가장자리를 잡고 조심스럽게 26 G × 1 / 2" 주사기 크렙스 - 링거 버퍼를 세척하여 혈관 내강의 혈액을 멀리 세척합니다.
  11. 3mm 길이 세그먼트로 청소 대동맥 고리를 잘라.
    참고 : 내피 층을 손상하지 않도록이 단계에서주의를 기울이십시오.

3. DHE와 DAF-2DA 염색

  1. 37 ° C에서 크렙스 - 링거 버퍼 가득 기관 목욕 챔버에 집게로 청소 대동맥 세그먼트를 이동시켜 95 % O 2, 5 % CO 2 폭기.
    집게로 대동맥 반지의 터치 만 외막 측과 B를 고정하지 않습니다 참고들 (100d) 선박.
  2. 30 분 기관 욕 실 동맥 평형.
  3. 최종 농도 1 μM의 장기 욕조에 아세틸 콜린 (ACH)를 추가하고 10 분 동안 동맥을 품어.
  4. 1.5 ml의 microcentrifuge 관에 미리 예열 크렙스 - 링거 버퍼 (1,000 × 재고에서 희석 된 각 염료의 5 μM) DHE / DAF-2DA 용액 1 ㎖를 준비합니다. 빛의 노출을 피하기 위해 알루미늄 호일로 microcentrifuge 관을 감싸.
  5. 자극 후, 37 ° C에서 마이크로 원심 튜브 DHE / DAF-2DA 용액 오르간 조로부터 대동맥 고리를 전송할 95 % O 2, 5 % CO 2 통기하고, 30 분간의 대동맥 고리를 배양한다.
    참고 :이 단계에서, 어둠 속에서 항상 대동맥을 유지합니다.
  6. 세척 크렙스 - 링거 버퍼와 새로운 microcentrifuge 관에 대동맥 고리를 전송하고 1 분 이내에 세탁을 세 번 반복한다.
  7. 30 고정 용 4 % 파라 포름 알데히드 용액으로 대동맥 링을 이동시켜분.
  8. 준비 1 ml의 4 ', 인산염 완충 생리 식염수 (PBS)를 1.5 ml의 microcentrifuge 관에서 버퍼 (1,000 × 재고에서 희석 300 nm의) 6-diamidino-2-페닐 인돌 (DAPI) 솔루션입니다. 3 분 동안 대동맥을 Counterstain과.
  9. 1 분 동안 세척 PBS 버퍼 새로운 microcentrifuge 관에 대동맥을 전송합니다. 세탁 세 번 반복합니다.
    주 : 대동맥 고리를 고정 또는 내피 층이 손상되지 않도록주의를 기울이십시오.

설치 4. 욕실 얼굴

  1. 슬라이드에 매체를 장착 한 방울을 추가합니다.
  2. 겹쳐서 대동맥이 평평하고 유리 슬라이드 아래로 향하게 내피 세포와 설치 매체에 얼굴 엉 마운트, 현미경 미세 수술 가위로 길이 방향으로 대동맥 고리를 잘라. 앞뒤로 대동맥를 이동하지 마십시오.
  3. 커버 슬립과 슬라이드를 덮고 매니큐어와 슬라이드를 밀봉.
  4. 빛 보호 아래 공기 건조 후, 무서운 이미징에 대한 슬라이드를 사용ctly 또는 시간 이내에 다음 몇 일 동안 -20 ° C에 저장합니다.

5. 공 초점 현미경 이미징

  1. 형광 신호를 검출하는 공 초점 레이저 주사 현미경을 사용한다. 시스템에서 스위치 및 확대, 스캔 속도, 해상도, Z-스택으로 이미지 설정을 최적화 할 수 있습니다.
    1. 이 프로토콜의 경우, 024 × 024 픽셀의 200 Hz의 스캔 속도, 해상도 및 0.25 ㎛ 인 Z-스텝 크기를 사용한다. 반면 514 nm에서 DHE에서 형광을 흥분과 605 nm의 방출에 감지, 488 nm의 아르곤 레이저로 DAF-2DA에서 형광을 자극하고 515 nm에서 검출한다.
  2. DAPI 신호가 자외선 선명해질 때까지 샘플에 초점을 10 배 배율을 사용하고 40X 배율로 목표를 조정합니다.
  3. 조작부 Z 위치를 조정함으로써 내피 층의 범위를 정의한다. DAPI 염색 핵의 신호 내피 층 타원형 또는 둥근 점이다.
  4. 상단에서 스캔내피 세포 신호 및 기록 이미지의 전체 두께를 통해 샘플의 (루멘 국경에 내피 층). 각각의 샘플을 스캔 적어도 3 개의 필드를 선택합니다.

이미지 6. 분석

  1. 공 초점 현미경으로 스캔 데이터를 엽니 소프트웨어를 사용합니다. 분석을 위해 필드 당 세 개의 연속 이미지를 선택하고 샘플 당 적어도 3 가지 분야를 평가한다. 선택한 이미지를 내보내고 JPEG 파일로 저장합니다.
  2. 이미지 처리 소프트웨어로 염색 DAF-2DA, DHE 및 DAPI에서 이미지를 정량화. DAPI 염색의 이미지를 들어, '플러그인'을 선택 → DAPI 긍정적 인 핵의 수를 계산 → '셀 카운터를'분석 '.
    1. DAF-2DA 및 DHE 염색에서 이미지의 경우, 신호의 강도를 분석 → '측정'을 '분석'을 선택하고, 상대적 신호 강도로 '평균'값을. DAF-2DA의 비율로 존재 그 결과DAPI 긍정적 인 핵 또는 DAPI에 DHE의 비율. 각 샘플에 대해, 각 필드 화상의 평균값을 취.
  3. 배 변화를 얻을 대조군의 평균으로 모든 샘플의 결과를 나눈다. 통계 분석은 던넷 또는 페로 니 사후 테스트와 짝이 학생 t 테스트 또는 ANOVA를 수행 하였다. SEM ± 평균과 같은 데이터를 제공합니다. P <0.05 14에서 상당한으로 평균값의 차이를 고려한다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

결과

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

비만은 허혈성 심장 질환의 주요 위험 인자와 관련된 어떠한 생물학적, 동맥 경화성 혈관 질환 (21)의 특징 내피되지 감소된다. -eNOS의 언 커플 링 (22), 죽상 동맥 경화증, 비만 14 노화 등 다양한 생리 학적 및 병리학 적 상태에서 혈관 내피 기능 부전의 중요한 메커니즘으로 도시되었다. 따라서, 우리가 대표 NO의 결과와 O 2 .- 대동맥의 수준을 보여 마른 비만 쥐를 비교합니다.

10.6 %, 지방 27.6 %의 단백질, 57 %의 탄수화물, 섬유 4.8 % 에너지 함량 7 주 세의 나이에 시작, 수컷 생쥐 (C57BL / 6J)는 중 정상 우 (NC 14 주 동안 무료로 액세스 권한을 부여했다 ) 또는 고지방식이 (HFD 에너지 함량 : 55 %...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

토론

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

NO 또는 O (2)의 검출 .- 형광 염료 자주 조직 저온부 (23)에 또한 배양 된 내피 세포에서 많은 연구에 사용 하였다. 여기에서 우리는 얼굴 NO의 검출 및 O 2 .-, 비교적 간단하고 직관적 인 효과가 각각 DAF-2DA 및 DHE,와 내피 층의 수준 도중, 즉 그대로 살아있는 혈관에이 방법을 확장했다. 동맥 미디어 탄성 섬유, 특히 저온부에서 대동맥 특정 NO 또는 O이 방해 할 수있는 매우 강한 형광도 신호를주고 이후 혈관 저온부의 방법에 비해,이 방법은 낮은 배경 프로그램 등 정량적이다. - 내피 세포에서 생성 된 신호. 또한, 내측 평활근 세포의 NADPH 산화 효소 또는 다른 효소에 의해 특이 O 2 .- 생성은 방해 할혈관 저온부와 방법의 문제점을 나타내는 부분의 혈관에서 혈관 내피...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

공개 사항

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

이해 상충이 선언되지 않았습니다.

감사의 글

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

이 연구는 스위스 국립과학재단(310030_141070/1), 스위스심장재단, 스위스 국립연구역량센터(NCCR-Kidney.CH)의 지원을 받았습니다. Yu Yi는 중국 장학금 위원회의 지원을 받고 있습니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
디 하이드로 에티듐 (DHE)InvitrogenD 1168DMSO로 5  mmol/L을 1,000x 재고로 저장, -20 에 저장; &데그; C
Diaminofluorescein-2 Diacetate (DAF-2DA)Calbiochem251505DMSO로 용해 5  mmol/L을 1,000x 재고로 저장, -20 에 저장; &데그; C
4',6-디아미디노-2-페닐린돌 (DAPI)InvitrogenD 1306물로 300  &마이크로; mol/L을 1,000x 재고로 4 에 저장; &데그; C
장착 매체벡터 노동. (리액톨랩)H-1000
Nω -Nitro-L-arginine methyl ester hydrochloride (L-NAME)Sigma-aldrichN5751
PentobarbitalSigma-aldrichP3636
다중 근사진 시스템 덴마크 Myo Technology A/S모델 610M
현미경NikonSMZ800
컨포칼 현미경 라이카 DM6000 
이미지 처리 소프트웨어National Institute of Health (NIH)Image J 
수술용 가위 에스& T AGSDC-11
미세수술용 가위 F.S.T15000-01
겸자S& T AGJF-5
커버슬립 원형 직경 15  mmVWR631-1579
팁 1 mlVWRRFL-1200c 
팁 200 μ lVWR613.0659
Eppendorf Safe-Lock Tubes 1.5 mlEppendorf 
아세틸 콜린 클로라이드시그마 알드리치A-6625
은 은 30120086

참고문헌

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Yang, Z., Ming, X. F. Arginase: the emerging therapeutic target for vascular oxidative stress and inflammation. Front Immunol. 4, 149(2013).
  2. Forstermann, U., Sessa, W. C. Nitric oxide synthases: regulation and function. Eur Heart J. 33 (7), 829-837 (2012).
  3. Yang, Z., Ming, X. F. Recent advances in understanding endothelial dysfunction in atherosclerosis. Clin Med Res. 4 (1), 53-65 (2006).
  4. Kietadisorn, R., Juni, R. P., Moens, A. L. Tackling endothelial dysfunction by modulating NOS uncoupling: new insights into its pathogenesis and therapeutic possibilities. Am J Physiol Endocrinol Metab. 302 (5), 481-495 (2012).
  5. Green, L. C., Wagner, D. A., Glogowski, J., Skipper, P. L., Wishnok, J. S., Tannenbaum, S. R. Analysis of nitrate, nitrite, and [15N]nitrate in biological fluids. Anal. Biochem. 126 (1), 131-138 (1982).
  6. Knowles, R. G., Palacios, M., Palmer, R. M., Moncada, S. Formation of nitric oxide from L-arginine in the central nervous system: a transduction mechanism for stimulation of the soluble guanylate cyclase. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 86 (13), 5159-5162 (1989).
  7. Ishii, K., Sheng, H., Warner, T. D., Forstermann, U., Murad, F. A simple and sensitive bioassay method for detection of EDRF with RFL-6 rat lung fibroblasts. Am. J. Physiol. 261 (2), 598-603 (1991).
  8. Guo, H. S., et al. Inhibitory effect of C-type natriuretic peptide on spontaneous contraction in gastric antral circular smooth muscle of rat. Acta Pharmacol Sin. 24 (10), 1021-1026 (2003).
  9. Palmer, R. M., Ashton, D. S., Moncada, S. Vascular endothelial cells synthesize nitric oxide from L-arginine. Nature. 333 (6174), 664-666 (1988).
  10. Hecker, M., Sessa, W. C., Harris, H. J., Anggard, E. E., Vane, J. R. The metabolism of L-arginine and its significance for the biosynthesis of endothelium-derived relaxing factor: cultured endothelial cells recycle L-citrulline to L-arginine. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 87 (21), 8612-8616 (1990).
  11. Kikuchi, K., Nagano, T., Hayakawa, H., Hirata, Y., Hirobe, M. Detection of nitric oxide production from a perfused organ by a luminol-H2O2 system. Anal. Chem. 65 (13), 1794-1799 (1993).
  12. Zweier, J. L., Wang, P., Kuppusamy, P. Direct measurement of nitric oxide generation in the ischemic heart using electron paramagnetic resonance spectroscopy. J. Biol. Chem. 270 (1), 304-307 (1995).
  13. Malinski, T., Mesaros, S., Tomboulian, P. Nitric oxide measurement using electrochemical methods. Methods Enzymol. 268, 58-69 (1996).
  14. Yu, Y., Rajapakse, A. G., Montani, J. P., Yang, Z., Ming, X. F. p38 mitogen-activated protein kinase is involved in arginase-II-mediated eNOS-Uncoupling in Obesity. Cardiovasc Diabetol. 13 (1), 113(2014).
  15. Nakatsubo, N., et al. Direct evidence of nitric oxide production from bovine aortic endothelial cells using new fluorescence indicators: diaminofluoresceins. FEBS Lett. 427 (2), 263-266 (1998).
  16. Hink, U., et al. Mechanisms underlying endothelial dysfunction in diabetes mellitus. Circ Res. 88 (2), 14-22 (2001).
  17. Okuda, M., et al. Expression of glutaredoxin in human coronary arteries: its potential role in antioxidant protection against atherosclerosis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 21 (9), 1483-1487 (2001).
  18. Cortese-Krott, M. M., et al. Human red blood cells at work: identification and visualization of erythrocytic eNOS activity in health and disease. Blood. 120 (20), 4229-4237 (2012).
  19. Nunez, C., et al. Discrepancies between nitroglycerin and NO-releasing drugs on mitochondrial oxygen consumption, vasoactivity, and the release of NO. Circ Res. 97 (10), 1063-1069 (2005).
  20. Guzik, T. J., et al. Mechanisms of increased vascular superoxide production in human diabetes mellitus: role of NAD(P)H oxidase and endothelial nitric oxide synthase. Circulation. 105 (14), 1656-1662 (2002).
  21. Yang, Z., Ming, X. F. mTOR signalling: the molecular interface connecting metabolic stress, aging and cardiovascular diseases. Obes Rev. 13 (Suppl 2), 58-68 (2012).
  22. Yepuri, G., et al. Positive crosstalk between arginase-II and S6K1 in vascular endothelial inflammation and aging. Aging Cell. 11 (6), 1005-1016 (2012).
  23. Matsuno, K., et al. Nox1 is involved in angiotensin II-mediated hypertension: a study in Nox1-deficient mice. Circulation. 112 (17), 2677-2685 (2005).

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재인쇄 및 허가

이 JoVE 논문의 텍스트 또는 그림 재사용 허가 요청

허가 요청

태그

En FaceeNOS

관련 논문