여기에서는 실험용 쥐의 뒷다리, 긴 뼈(대퇴골 및 경골)를 해부하는 프로토콜을 제시합니다. 또한 골수 공간에서 골수를 제거하기 위해 원심분리를 사용하는 이러한 뼈에서 골수를 신속하게 분리하는 기술에 대해 설명합니다.
방법 논문
여기에서는 실험용 쥐의 뒷다리, 긴 뼈(대퇴골 및 경골)를 해부하는 프로토콜을 제시합니다. 또한 골수 공간에서 골수를 제거하기 위해 원심분리를 사용하는 이러한 뼈에서 골수를 신속하게 분리하는 기술에 대해 설명합니다.
뼈와 골수에 대한 연구는 기초 뼈 생물학, 면역학, 혈액학, 암 전이, 생체 역학 및 줄기 세포 생물학을 포함한 많은 연구 분야에서 매우 중요합니다. 그러나 건강하고 병리적인 상태에서 뼈의 중요성에도 불구하고 뼈 해부 및 골수 분리에 대한 전문 지식이 부족하기 때문에 대체로 연구가 부족한 기관입니다. 마우스는 뼈와 골수에 미치는 영향을 연구하는 일반적인 모델 유기체이므로 대규모 실험 코호트 처리를 위한 긴 뼈 절개 및 골수 분리를 위한 표준화되고 효율적인 방법이 필요합니다. 우리는 대퇴골과 경골을 제거하기 위한 간단한 해부 절차를 설명하며, 이는 조직 형태학적 분석 및 강도 테스트를 포함하되 이에 국한되지 않는 다운스트림 응용 분야에 적합합니다. 또한 취급 시간이 제한된 원심분리를 통해 긴 뼈에서 골수를 신속하게 분리하는 절차를 간략하게 설명하며, 이는 세포 분류, 일차 세포 배양 또는 DNA, RNA 및 단백질 추출에 이상적입니다. 이 프로토콜은 실험 오류를 제한하기 위해 시료를 신속하게 처리할 수 있도록 간소화되었으며, 사용자 간 변동성을 최소화하도록 표준화되었습니다.
긴 뼈와 골수의 세포에 대한 연구는 뼈 생물학, 암 생물학, 면역학, 혈액학 및 생체 역학을 포함하되 이에 국한되지 않는 수많은 연구 분야의 중심입니다. 뼈는 연골과 함께 골격을 형성하여 내부 장기의 하중을 기계적으로 지지하고 보호하는 매우 역동적인 기관입니다. 또한 뼈의 미네랄 성분은 중요한 신호 분자인 칼슘과 인뿐만 아니라 다른 요인을 저장하는 흡수원입니다1. 마지막으로, 뼈는 골수를 수용하며, 대사 활동이 활발한 뼈 형성 조골세포 및 뼈 흡수 파골세포와 함께 조혈 세포 및 림프 세포 집단을 유지하는 데 필요한 줄기세포 틈새를 제공합니다.
뼈와 골수는 많은 질환에 영향을 미치며, 종종 골수 기능 장애, 심한 뼈 통증 및 병리학적 골절로 이어집니다. 뼈는 많은 고형 종양, 특히 유방암과 전립선암에서 흔히 발생하는 전이 부위로, 종양 세포가 골수 틈새와 직접 접촉하여 뼈 전이의 악순환을 시작하고 조혈 줄기세포를 대체하는 곳입니다2,3. 골수종과 백혈병을 포함한 조혈 악성 종양은 골수 기능 장애와 건강한 뼈 리모델링의 조절 저하를 특징으로 한다1. 다른 비악성 골격계 질환도 골관절염, 골다공증, 척추측만증 및 구루병과 같은 활발한 연구 분야입니다. 건강한 사람이라도 뼈의 생체역학적 결함은 고통스러운 골절로 이어집니다. 이러한 모든 질환은 이환율과 사망률을 줄이기 위한 새로운 예방 조치와 치료 요법을 식별하는 것을 목표로 하는 활발한 연구 분야를 나타냅니다.
생리학적, 병리학적 조건 하에서 뼈와 골수의 과다한 역할을 연구하기 위해서는 연구자들이 대규모 생체 내 실험의 신속한 처리를 위해 쥐의 긴 뼈를 해부하는 간단하고 효율적인 표준화된 방법을 갖는 것이 중요합니다. 여기에 설명된 해부 프로토콜은 체외 이미징, 조직학, 조직 형태 측정 및 강도 테스트를 포함한 모든 긴 뼈 분석에 적합합니다. 마찬가지로, 골수 세포 회수율이 높고 사용자 간 변동성이 낮은 표준화된 골수 분리 방법은 형광 활성화 세포 분류(FACS) 또는 정량 PCR(qPCR)과 같은 실험 분석뿐만 아니라 골수 세포의 일차 세포 배양과 같은 다운스트림 응용 분야에 중요합니다.
모든 동물 작업은 미국 국립보건원(National Institutes of Health)의 실험실 동물 관리 및 사용 가이드(Guide for the Care and Use of Laboratory Animals)에 요약된 권장 사항에 따라 기관 동물 관리 및 사용 위원회(Institutional Animal Care and Use Committee)의 승인을 받았습니다.
1. 뒷다리 긴 뼈 해부
2. 골수 분리를 위한 긴 뼈 준비
3. 골수 격리
여기에 설명된 프로토콜은 뼈 조직의 손상을 최소화하면서 쥐의 대퇴골과 경골을 빠르게 해부하는 데 최적화되어 있습니다. 이 기술은 생체 역학 연구, 조직 형태 측정법(그림 1A - B) 및 조직학(그림 1C)을 포함한 여러 다운스트림 분석에 적합합니다.4,7. 대표적인 조직학적 micoCT 3D 재구성(그림 1A - B)은 해면골과 피질 껍질이 모두 유지되어 섬유주 수, 두께 및 간격을 포함한 뼈 조직 형태 측정을 위한 표준화된 구조 매개변수의 정확한 정량화가 가능함을 보여줍니다. 뼈 부피; 그리고 피질 두께, 다른 측정방법 8. 대표적인 조직학적 절편은 H&E 염색 포르말린 고정 및 석회질 처리된 경골을 보여줍니다(그림 1C). 이 이미지는 조직학적 분석을 위해 석회화된 뼈와 세포 골수 모두의 무결성을 보여줍니다.
골수 분리 절차는 골수 공간의 무균 상태를 유지하고, 오염을 줄이기 위해 취급이 적으며, 긴 뼈를 절단할 필요가 없으므로 골수 수율 손실을 줄입니다. 이 골수는 유세포 분석5 및 PCR 분석을 포함한 많은 다운스트림 응용 분야에 적합합니다. 또한, 이 절차는 파골세포와 파골세포를 포함한 골수 세포의 일차 세포 배양을 위해 골수를 분리하는 데 사용할 수 있습니다(그림 2A - B)4,6.

그림 1. Mouse Long Bone의 조직 형태 학적 및 조직 학적 분석. (A) 외피질 껍질과 (B) 섬유주뼈(비늘 막대 = 0.5mm)를 보여주는 쥐 경골의 3차원 microCT 재구성. (C) 석회질 처리 및 절편화된 경골의 조직학적 H&E 염색(4x). 이미지 제공: Katherine Weilbaecher, Washington University School of Medicine, USA. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 2. osteocleblasts와 osteoblasts의 분화를 위한 1차 골수 세포 배양. (A) 파골세포생성 배지에서 7일 후 다핵 파골세포에 대한 TRAP 염색(4x). (B) 골세포에 대한 알칼리성 인산가수분해효소(자주색) 및 골형성 배지에서 21일 후 광물화를 위한 알리자린 레드(빨간색) 염색. 이미지 제공: Katherine Weilbaecher, Washington University School of Medicine, USA. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
우리는 마우스 뒷뼈 제거 및 후속 골수 분리를 위한 간단하고 효율적인 방법을 제시합니다. 이 방법은 뼈와 골수의 높은 구조적 및 세포적 완전성을 유지하고 처리 시간이 짧아 다운스트림 분석에 영향을 미칠 수 있는 사용자 유발 골절 또는 뼈 채점 가능성을 최소화합니다. 또한, 골수를 분리하는 원심분리법은 골수 공간을 노출시키기 위해 뼈를 절단하거나 골수를 세척하기 위해 체액을 절단할 필요가 없어 잠재적인 오염 지점을 줄일 수 있습니다. 또한 원심분리기 기술은 다른 방법보다 실습 시간이 짧고 처리량이 상대적으로 높아 처리 시간이 단축됩니다.
높은 변이는 높은 마우스 간 표현형 변이로 인해 생체 내 마우스 연구에 내재되어 있습니다. 비용이 많이 들고 노동 집약적인 마우스 연구의 연구 효과를 극대화하기 위해서는 기술적 실험 오류를 최소화하는 것이 중요합니다9,10. 동물 희생에서 다운스트림 분석 또는 조직 고정까지의 시간은 미묘한 변화를 극복하고 그룹 간의 큰 차이를 줄일 수 있는 실험적 변화를 도입합니다. 따라서 정확한 데이터 분석을 위해서는 샘플의 신속한 처리가 필수적입니다. 여기에 설명된 장골 해부 및 골수 분리 기술은 기술적 변동을 줄이기 위해 동물 및 샘플의 신속한 처리에 최적화되어 있습니다.
이 프로토콜은 뼈 조직 자체의 조사 또는 골수 세포의 조사를 포함하여 많은 연구 분야에 널리 적용될 수 있습니다. 또한, 긴 뼈 해부에 대한 이러한 간단한 접근 방식을 통해 관련 분야의 연구자들은 제대로 연구되지 않은 병리에서 골수 기능 장애에 대한 지식을 확장하기 위해 뼈 기여도를 직접 조사할 수 있습니다.
저자는 공개할 것이 없습니다.
이 작업은 NCI 보조금 번호 U54CA143803, CA163124, CA093900 및 K.J.P.에 대한 CA143055의 지원을 받았습니다. 저자는 Weilbaecher 연구실의 전현직 구성원, 특히 Katherine Weilbaecher, Michelle Hurchla, Hongju Deng과 Brady Urological Institute의 구성원, 특히 원고를 비판적으로 읽어준 Pienta 실험실의 구성원에게 감사를 표합니다.
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